30.06.2020

מחזור התא והסדרתו. מדריך לימוד: מנגנונים מולקולריים של ויסות מחזור התא של התחדשות רקמות


תָאִי שִׂגשׂוּג- עלייה במספר התאים על ידי מיטוזה,

מה שמוביל לצמיחת רקמות, בניגוד לדרך אחרת להגדיל אותה

מסות (למשל, בצקת). תאי עצב אינם מתרבים.

באורגניזם הבוגר, תהליכי ההתפתחות הקשורים

עם חלוקת תאים והתמחות. תהליכים אלה יכולים להיות או

קטן פיזיולוגי, ומטרתו לשחזר את או-

גניזם עקב פגיעה בשלמותו.

המשמעות של ריבוי ברפואה נקבעת על פי יכולת התאים

זרם של רקמות שונות לחלוקה. תהליך הריפוי קשור לחלוקת תאים.

ריפוי פצעים ותיקון רקמות לאחר פעולות כירורגיות.

התפשטות תאים עומדת בבסיס התחדשות (התאוששות)

חלקים אבודים. בעיית ההתחדשות מעניינת

תרופות, לניתוחים משחזרים. להבחין בין פיזיולוגי

התחדשות מתקנת ופתולוגית.

פִיסִיוֹלוֹגִי- שיקום טבעי של תאים ורקמות ב

אונטוגניה. לדוגמה, השינוי של תאי דם אדומים, תאי אפיתל בעור.

תיקון- התאוששות לאחר נזק או מוות של דבק

זרם ורקמות.

פתולוגי- ריבוי רקמות שאינן זהות לרקמות בריאות

יאממ. לדוגמה, הצמיחה של רקמת צלקת במקום של כוויה, סחוס - ב

אתר שבר, ריבוי תאי רקמת חיבור באתר שלנו

רקמת צוואר הרחם של הלב, גידול סרטני.

לאחרונה נהוג לחלק תאי רקמת בעלי חיים לפי

יכולת חלוקה ל-3 קבוצות: לאבילית, יציבה וסטטית.

ל לאבילייםכוללים תאים המתעדכנים במהירות ובקלות

במהלך חיי האורגניזם (תאי דם, אפיתל, ריר

לעצור את מערכת העיכול, האפידרמיס וכו').

ל יַצִיבכוללים תאים מאיברים כגון כבד, לבלב

בלוטות, בלוטות רוק וכו', המזהות מוגבל

יכולת חלוקה חדשה.

ל סטָטִיכוללים תאים של שריר הלב ורקמות העצבים, אשר

שיפון, לפי רוב החוקרים, לא חולקים.

חקר הפיזיולוגיה של התא חיוני להבנתו.

הרמה הטוגנטית של ארגון החיים ומנגנוני הוויסות העצמי

תאים המבטיחים את התפקוד ההוליסטי של האורגניזם כולו.

פרק 6

גנטיקה אֵיך המדע. סדירות

יְרוּשָׁה שלטים

6.1 נושא, משימות ושיטות גנטיקה

תורשה ושונות הם מאפיינים בסיסיים

יצורים חיים, שכן הם אופייניים ליצורים חיים מכל רמה של ארגון

שדרוג לאחור. המדע החוקר את דפוסי התורשה והשינוי

וסטי, נקרא גנטיקה.

גנטיקה כמדע חוקרת תורשה ותורשה

תנודתיות, כלומר, היא עוסקת שיתוף הַבָּא בעיות:

1) אחסון מידע גנטי;

2) העברת מידע גנטי;

3) יישום של מידע גנטי (השימוש בו בפרט

סימנים של אורגניזם מתפתח בהשפעת הסביבה החיצונית);

4) שינוי במידע הגנטי (סוגים וגורמים לשינויים,

מנגנונים).

השלב הראשון בהתפתחות הגנטיקה - 1900–1912 מאז 1900 - מחדש

מכסה את חוקי ג' מנדל על ידי המדענים H. De Vries, K. Correns, E. Cher-

פָּרָג. הכרה בהלכות ג' מנדל.

שלב שני 1912–1925 - יצירת תורת הכרומוזומים של טי מור-

גאנה. שלב שלישי 1925–1940 - גילוי של מוטגנזה מלאכותית ו

תהליכים גנטיים של אבולוציה.

שלב רביעי 1940–1953 - מחקר על בקרת גנים

תהליכים פיזיולוגיים וביוכימיים.

השלב החמישי מ-1953 ועד היום הוא התפתחות המולקולרית

ביולוגיה.

מידע נפרד על תורשה של תכונות היה ידוע

אולם זמן רב מאוד, הבסיס המדעי להעברת סימנים היה ראשון

קבע ג' מנדל ב-1865 בעבודה: "ניסויים בצמח

כלאיים." אלה היו מחשבות מתקדמות, אבל בני זמננו לא נתנו

את משמעות הגילוי שלו. המושג "גן" עדיין לא היה קיים באותה תקופה, ו-G. Men-

דל דיבר על "הנטיות התורשתיות" הכלולות בתאי המין

קה, אבל טבעם לא היה ידוע.

בשנת 1900, ללא תלות זה בזה, ה' דה פריס, א' צ'רמק וק' קור-

רנס גילה מחדש את חוקי ג' מנדל. שנה זו נחשבת לשנת הלידה

של גנטיקה כמדע. בשנת 1902, T. Boveri, E. Wilson וד. Setton יצרו

לאלי הציע את הקשר של גורמים תורשתיים עם כרומוזומים.

ב-1906 W. Betson הציג את המונח "גנטיקה", וב-1909 W. Johansen -

"גֵן". בשנת 1911, טי מורגן ועמיתיו ניסחו את העקרונות העיקריים

התיאוריה הכרומוזומלית של zheniya של תורשה. הם הוכיחו שגנים

ממוקם בלוקוסים מסוימים של כרומוזומים בסדר ליניארי,

סימן מסוים.

השיטות העיקריות של הגנטיקה: היברידיות, ציטולוגיות ו

מָתֵימָטִי. גנטיקה משתמשת באופן פעיל בשיטות של אחרים הקשורים

מדעים: כימיה, ביוכימיה, אימונולוגיה, פיזיקה, מיקרוביולוגיה וכו'.

פרק 1. סקירת ספרות

1.1. ויסות של שגשוג תאי גידול

1.1.1. מנגנוני ויסות עיקריים של פעילות שגשוג בתאי יונקים

1.1.2. תכונות של ויסות תהליכי שגשוג בתאי גידול

1.2. ויסות אפופטוזיס בתאי גידול

1.2.1. מאפייני תהליך האפופטוזיס, שלביו העיקריים ומנגנוני הוויסות שלו

1.2.2. חוסר ויסות של אפופטוזיס בתאי גידול

1.3. ויסות של ריבוי תאים ואפופטוזיס על ידי רדיקלים חופשיים

1.3.1. אפיון הצורות העיקריות של רדיקלים חופשיים במערכות חיות

1.3.2. רדיקלים חופשיים וקרצינוגנזה

1.3.3. מנגנוני רדיקלים חופשיים של פעילות אנטי-גידולית של אנטיביוטיקה אנתרציקלין

1.3.4. אנזימים נוגדי חמצון כמווסתים של ריכוז רדיקלים חופשיים בתאים

1.3.5. אנזימים נוגדי חמצון בסוגים שונים של תאי גידול

1.3.6. תפקידם של רדיקלים חופשיים ואנזימים נוגדי חמצון בוויסות פעילות שגשוג התאים

1.3.7. מנגנונים של השראת אפופטוזיס על ידי רדיקלים חופשיים

1.4. תפקידה של תחמוצת החנקן בוויסות פעילות שגשוג ואפופטוזיס של תאים

1.4.1. מאפיינים ומסלולים עיקריים של יצירת תחמוצת חנקן בתאי גידול

1.4.2. השתתפות תחמוצת החנקן בוויסות תהליכי שגשוג

1.4.3. התפקיד הכפול של תחמוצת החנקן בוויסות האפופטוזיס

1.4.4. השפעה משולבת של תחמוצת חנקן וחומרים רדיקלים חופשיים על שגשוג ואינדוקציה של אפופטוזיס של תאי גידול

פרק 2. חומר ושיטות מחקר

2.1. חומר ומושא לימוד

2.2. שיטות מחקר

פרק 3. תוצאות מחקר משלו והדיון בהם

3.1. מחקר על ההשפעה של מטבוליטי חמצן פעיל ותחמוצת חנקן על פעילות שגשוג של תאי גידול במבחנה 95 השפעת מטבוליטי חמצן פעילים על פעילות שגשוג של תאי גידול

השפעת תורמי תחמוצת החנקן על הפעילות השגשוגית של תאי הגידול

3.2. מחקר ההשפעה של מטבוליטי חמצן פעיל וחנקן אוקסיד על השראת אפופטוזיס בתאי גידול 106 מחקר על השפעת מטבוליטי חמצן פעיל על השראת אפופטוזיס בתאי גידול

מחקר על ההשפעה של תורמי תחמוצת החנקן על השראת אפופטוזיס בתאי גידול

3.3. מחקר הקינטיקה של האינטראקציה של חומרים אקסוגניים רדיקלים חופשיים עם תאי גידול

מחקר של פעילות אנטי-רדיקלית של סופרנטנטים של תאי גידול

3.4. מחקר תפקידה של חומצה ארכידונית בוויסות שגשוג תאי גידול 119 שילוב של חומצה α-ארכידונית בפוספוליפידים במהלך המעבר של תאי הגידול ממצב שגשוג למצב מנוחה

השפעת רדיקלים חופשיים ותחמוצת חנקן על התפוקה של חומצה ארכידונית ושילובה בתאי גידול ופוספוליפידים בודדים

ויסות הפעילות של אנזימים של חילוף החומרים של פוספוליפידים על ידי רדיקלים חופשיים

3.5. חקירת התלות של פעילות אנזימים נוגדי חמצון בחומרת תהליכי שגשוג בגידולים בניסוי

פעילות אנזימים נוגדי חמצון בקרצינומות של ארליך עם חומרה שונה של תהליכי שגשוג 147 פעילות אנזימים נוגדי חמצון בהתאם לאינדקס המיטוטי של גידולי שד שפירים וממאירים

3.6. מחקר של ההשפעה המשולבת של רדיקלים חופשיים וחנקן אוקסיד על שגשוג תאי גידול ואפופטוזיס 157 השפעה משולבת של תחמוצת חנקן וחומרי רדיקלים חופשיים על שגשוג תאי גידול 157 תפקידה של תחמוצת החנקן בוויסות אפופטוזיס של תאי גידול הנגרמת על ידי רדיקלים חופשיים

אפקט מווסת של תחמוצת החנקן על הפעילות האנטי-גידולית של דוקסורוביצין

מבוא לעבודה (חלק מהתקציר) בנושא "הסדרת שגשוג ואפופטוזיס של תאי גידול על ידי רדיקלים חופשיים"

ניאופלזמות ממאירות הן אחד מגורמי המוות המובילים ברוב המדינות המתועשות. ניתן לשפוט את הגודל העולמי של בעיית התחלואה והתמותה מסרטן על סמך הערכות מומחים שנערכה על ידי הסוכנות הבינלאומית לחקר הסרטן. כך, בשנת 2000, מספר מקרי הסרטן החדשים בעולם נאמד ביותר מ-10 מיליון בני אדם, ומספר מקרי המוות - ב-6.2 מיליון. ההערכה היא כי השכיחות של גידולים ממאירים תגדל ל-15 מיליון עד 2020, בעוד ששיעור התמותה יגדל ל-9 מיליון בשנה. התנאי החשוב ביותר להצלחת המאבק נגד הסרטן הוא הכרת מנגנוני הפתוגנזה של גידול ממאיר, הנחוץ ליצירת אסטרטגיה טיפולית נאותה. ההבנה המודרנית של האטיולוגיה ומנגנוני הסרטן, שהושגה באמצעות התקדמות ברפואה ובביולוגיה בסיסית, נותנת מושג על מספר תכונות בסיסיות שיש לגידולים ממאירים. הפרמטרים המרכזיים של צמיחת הגידול הם יכולת מוגברת להתרבות, אובדן יכולת הבחנה מלאה ומוות אפופטוטי, גדילה פולשנית וגרורות. בשל תכונות אלו, לתאי הגידול יש יתרון על פני תאים של רקמות תקינות במהלך גדילה והישרדות באותם תנאים. עם זאת, למרות המאמצים העצומים שנעשו ברחבי העולם וההצלחות שהושגו בתחום חקר הסרטן, בעיית האטיופתוגנזה של גידולים ממאירים נותרה בדרך כלל בלתי פתורה.

חקר מנגנונים תאיים ומולקולריים של ויסות שגשוג ואפופטוזיס של תאי גידול הוא אחד מתחומי העדיפות של האונקולוגיה המודרנית והפיזיולוגיה הפתולוגית. ברקמות בריאות נוצר איזון בין תהליכי התפשטות תאים ומוות תאים. לעומת זאת, גידול ממאיר מבוסס על שגשוג אוטונומי ובלתי מוגבל של התאים המרכיבים את רקמת הגידול. במקביל, מופיעה עמידות בפני השראת אפופטוזיס בתאים שעברו טרנספורמציה, שהיא גם אחד ממנגנוני המפתח להישרדותם. מנגנונים תאיים להפעלה והפעלה של אפופטוזיס משתבשים כתוצאה ממוטציות גנטיות, מה שמוביל לירידה ביכולתם של תאים שעברו טרנספורמציה להפעיל את תוכנית המוות של התא וקובע את התקדמות תהליך הגידול, ועשויים להיות גם אחד הגורמים לעמידות רב-תרופתית. חקר מנגנוני הוויסות של שגשוג ואפופטוזיס של תאי גידול חשוב לא רק מנקודת המבט של הבנת המאפיינים הפתוגנטיים של התפתחותם ותפקודם של גידולים, אלא גם מאפשר לנו לזהות אזורי טיפול חדשים בגידולים ממאירים. /

לאחרונה חלה התקדמות משמעותית בחקר תפקידן של מולקולות ממעמדות שונים בוויסות צמיחת התאים. מולקולות רגולטוריות, בעיקר הורמונים וגורמי גדילה, מקיימות אינטראקציה עם מבנים תאיים; גורמים מווסת גדילה כוללים גם אירועים המתרחשים בתוך תאים במהלך העברת אותות בהשתתפות מערכות מתווך. בהבנת המנגנונים השולטים על רביית התאים, תפקיד חשוב ממלא את טבעם של האותות התוך-תאיים האחראים על מעבר חילוף החומרים לרמה חדשה כאשר מצב הריבוי והמנוחה משתנה.

מטבוליטי חמצן פעילים (AKM), כגון רדיקלי אניון סופראוקסיד, רדיקלי הידרוקסיל, אלקוקסי ופרוקסיד, תחמוצת חנקן (NO) וכו', הם מרכיבים חיוניים לתפקוד תקין של תאים. הם ממלאים תפקיד חשוב בוויסות פעילות האנזים, שמירה על יציבות הממברנה, שעתוק של גנים מסוימים, מהווים מרכיבים חיוניים לתפקוד של מספר מערכות מתווכים ופועלים כמתווכים ביצירת התגובה התאית. זה מעורר עניין רב בחקר תפקידם של רדיקלים חופשיים בוויסות התפשטות תאי הגידול.

נתונים מצטברים בספרות על מנגנוני הפעולה המולקולריים של מולקולות שונות של רדיקלים חופשיים מעידים על השתתפותן בוויסות צמיחת תאים והתמיינות. רדיקל סופראוקסיד ומי חמצן בריכוזים נמוכים ידועים כממריצים חלוקת תאים. תחמוצת החנקן מעורבת גם בוויסות התפשטות של תאים שונים, כולל תאי גידול.

אנזימים נוגדי חמצון (AOF), על ידי שליטה בריכוז הרדיקלים, יכולים לפעול כמווסת התפשטות. הנחה זו מאושרת על ידי העובדה של מתאם הפוך בין קצב הגדילה של הפטומה לבין התוכן של Cu, ba - סופראוקסיד דיסמוטאז שבו. לפיכך, הפעילות הגבוהה של AOF היא לא רק גורם בעמידות של גידולים להשפעות של רדיקלים חופשיים, אלא יכולה גם לעכב את החלוקה הבלתי מוגבלת של תאי ניאופלזמה.

בפתוגנזה של מחלות אונקולוגיות, הפרה של מוות תאי מתוכנת (אפופטוזיס) היא בעלת חשיבות יוצאת דופן. הנתונים של מחקרים רבים מצביעים על כך שבשל פעילותם הכימית הגבוהה, AKM יכול לפגוע במבנים תוך תאיים ולהוות מעוררים ומתווכים של אפופטוזיס. גורמים בעלי אופי כימי ופיזיקלי, אשר, כאשר הם פועלים על תאים, גורמים ללחץ חמצוני, מעוררים גם אפופטוזיס. גורמים אלו כוללים קרינה מייננת וכמה תרופות אנטי-סרטניות (למשל אנטיביוטיקה אנתרצילין וציספלטין), שכאשר הן חודרות לתא, מובילות להיווצרות רדיקלים חופשיים. ההנחה היא שאופי הפעולה של AKM על תאים קשור לרמות התוך וחוץ-תאיות שלהם, אולם לא זוהו דפוסים ספציפיים, מה שהופך את זה לרלוונטי לחקור את השפעת רדיקלי החמצן על שגשוג ואפופטוזיס של תאי גידול בהתאם לריכוז.

תחמוצת החנקן, בהיותה מווסתת של תהליכים תוך-תאיים, מעורבת ישירות ביישום התוכנית האפופטוטית. מאמינים כי תחמוצת חנקן יכולה לשפר את הציטוטוקסיות של רדיקלים חופשיים, ותרכובות יוצרות NO, הנכנסות לתגובת חמצון של רדיקלים חופשיים, יכולות ליצור תרכובת רעילה עוד יותר - פרוקסיניטריט, אשר פוגעת ב-DNA וגורם לשינויים קוולנטיים של חלבונים בתא, ובכך מתחילה אפופטוזיס. עם זאת, במחקרים רבים, NO נחשב דווקא כנוגד חמצון המעכב התפתחות של תגובות חמצון רדיקליות. יחד עם זאת, אין תשובה חד משמעית לשאלה האם NO הוא מפעיל או מעכב אפופטוזיס.

מספר נושאים בסיסיים החשובים להבנת דפוסי האינטראקציה בין מולקולות רדיקלים חופשיים ותאי גידול והמנגנונים הרגולטוריים של התפשטות תאי הגידול נותרו בלתי נחקרו. אלה כוללים, במיוחד, בירור של אירועים ראשוניים ומכריעים באינטראקציה של תאי גידול עם הידרופרוקסידים אורגניים. נכון להיום, רק מחקרים בודדים לוקחים בחשבון את האפשרות והחשיבות של אפנון על ידי מטבוליטי חמצן פעילים של שלבים שונים של ויסות חלוקת התא: אינטראקציות ליגנד-קולטן, תפקוד מערכת ה"שליחים השניים", הפעלה ו/או עיכוב מולקולות תאי אפקטור. מנגנוני ההשפעה של AKM על מרכיבי המפתח של מערכת האיתות התוך תאית של תאי הגידול לא נחקרו מספיק. שאלת ההשפעה המשותפת של רדיקלי חמצן ו-NO על פוטנציאל ההתרבות של תאי הגידול נותרה בלתי נחקרה. הפתרון של סוגיות אלה יכול לשמש בסיס להבנת המנגנונים הפתוגנטיים של ניאובלסטומגנזה, וזה, בתורו, יכול לפתח גישות יעילות יותר לטיפול הפתוגנטי המורכב של ניאופלזמות ממאירות.

מטרת המחקר ומטרותיו.

מטרת מחקר זה הייתה לחקור את תפקידם של רדיקלים חופשיים, תחמוצת חנקן ואנזימים נוגדי חמצון במנגנוני ויסות של ריבוי ואפופטוזיס של תאי גידול.

כדי להשיג את המטרה, הוגדרו המשימות הבאות:

4. לחקור את תפקידה של חומצה ארכידונית במנגנוני ויסות של ריבוי ואפופטוזיס של תאי גידול. להעריך את ההשפעה של חומרים רדיקלים חופשיים על שחרור חומצה ארכידונית מפוספוליפידים של ממברנות תאי הגידול ולהראות את תפקידם של אנזימי חילוף החומרים של פוספוליפידים בתהליך זה.

חידוש מדעי

לראשונה בוצע מחקר מקיף של השפעתם של חומרים המייצרים רדיקלים חופשיים ותורמי תחמוצת חנקן בטווח רחב של ריכוזים על פעילותם של תהליכי שגשוג בתאים של קווי גידול ניסיוניים והשראת אפופטוזיס בהם. נמצא כי כיוון הפעולה של התרכובות שנחקרו משתנה בהתאם לריכוז, כלומר, עם ירידה במינון, ההשפעה המעכבת על שגשוג ואינדוקציה של אפופטוזיס פוחתת, וכאשר הריכוז מגיע ל-10-6 M או פחות, נצפה גירוי של רביית תאים.

הקינטיקה של האינטראקציה של פרוקסידים אורגניים עם תאי גידול נחקרה לראשונה, ונמצא ייצור חוץ-תאי של גלוטתיון פרוקסידאז ורכיבים במשקל מולקולרי נמוך עם פעילות אנטי-רדיקלית.

בפעם הראשונה הוצגה תלות הריכוז של השפעת הרדיקלים החופשיים על שחרור חומצה ארכידונית מפוספוליפידים ממברניים והקשר של תהליך זה עם התפשטות ואפופטוזיס של תאי גידול. הוכח כי בפעולה של ריכוזים גבוהים של AKM, המעכבים תהליכי שגשוג ומעוררים אפופטוזיס, יש שחרור משמעותי של חומצה ארכידונית מפוספוליפידים ממברניים ועיכוב שילובה בהם. לעומת זאת, AKM במינונים נמוכים מעוררי שגשוג מביאים לשחרור פחות בולט של חומצות שומן תוך שמירה על תיקון פוספוליפידים. הוכח ששחרור חומצה ארכידונית מפוספוליפידים קרומיים מתווכת על ידי הפעלה של פוספוליפאז A. השפעת תחמוצת החנקן על תהליכים אלו הייתה דומה, אך פחות בולטת.

התקבלו נתונים חדשים על תלות פעילותם של אנזימים נוגדי חמצון בחומרת תהליכי שגשוג בתאי גידול ניסיוני, גידולים שפירים וממאירים של השד האנושי. גידולים הגדלים במהירות מאופיינים בפעילות נמוכה של אנזימים נוגדי חמצון, בעוד שעם ירידה בחומרת תהליכי שגשוג, מתרחשת עלייה בפעילות של אנזימים נוגדי חמצון.

היכולת של תורמי תחמוצת החנקן (נתרן ניטריט, נתרן ניטרופרוסיד ו-L-ארגינין) להגן על תאי הגידול מפני פעולה רעילהרדיקלי פרוקסי ודוקסורוביצין. האפשרות להשתמש ב-NO תורם -nitrosoguanidine כדי להגביר את היעילות האנטי-גידולית של doxorubicin הוכחה בניסוי.

משמעות תיאורטית ומעשית

תוצאות המחקר מרחיבות באופן משמעותי את ההבנה הבסיסית של מנגנוני ויסות פעילות שגשוג ומוות אפופטוטי של תאי גידול. הוכח כי חומרים היוצרים רדיקלים חופשיים ותורמי תחמוצת החנקן, בהתאם לריכוז, יכולים להפעיל הן פעילות שגשוגית והן אפופטוזיס של תאי גידול, מה שמאשר את קיומה של מערכת ויסות תוך תאית משותפת לתהליכים אלו, שחלקם הם רדיקלי חמצן וחנקן.

התוצאות שהתקבלו יוצרות רעיונות חדשים לגבי הדפוסים הביוכימיים של האינטראקציה של תאי הגידול עם מטבוליטי חמצן פעילים, המוכיחות את האפשרות של ויסות חוץ-תאי של רמת חמצון הרדיקלים החופשיים והאינטראקציה של פרוקסידים עם מערכת האיתות התוך-תאית.

נתונים על הקשר בין פעילותם של אנזימים נוגדי חמצון ועוצמת תהליכי התפשטות יכולים לשמש בסיס לבחירת קריטריונים אינפורמטיביים נוספים בהערכת המאפיינים הביולוגיים של גידולים, בפרט, פעילות השגשוג שלהם, אשר, בתורו, יכולה לשמש כגורמים פרוגנוסטיים. הנתונים שהתקבלו מצביעים על כך שתרמי תחמוצת החנקן יכולים להגן על תאי הגידול מפני נזקי רדיקלים חופשיים ולפעול כגורמים להתפתחות עמידות לתרופות. כל זה אמור לתרום לבחירה קפדנית יותר של תרופות שיכולות לעורר יצירת תחמוצת חנקן וחמצן בגוף של חולים עם מחלות ממאירות בעת רישום כימותרפיה. בנוסף, העבודה מוכיחה באופן ניסיוני את האפשרות להשתמש בתורמי תחמוצת החנקן כדי להגביר את היעילות האנטי-גידולית של אנטיביוטיקה אנתרציקלין.

הצעות שיש להגן עליהן 1. תורמי סופראוקסיד רדיקלי, פרוקסידים אורגניים ותרמי תחמוצת חנקן, בהתאם לריכוז, יכולים להפגין פעילות ציטוטוקסית כנגד תאי גידול וגם לגרום לאפופטוזיס שלהם ולעורר את התפשטותם.

2. ההשפעה של תורמי פרוקסידים ותרמי תחמוצת החנקן על התפשטות ואפופטוזיס מתווכת על ידי אינטראקציה עם מערכת העברת אותות שומנים, לרבות חומצה ארכידונית.

3. פעילותם של אנזימים נוגדי חמצון מופחתת בשלב של צמיחה לוגריתמית מהירה של גידולים ניסיוניים בהשוואה לשלב של צמיחה נייחת איטית ובגידולים ממאירים של בלוטת החלב עם האינדקס המיטוטי הגבוה ביותר.

4. תורמי תחמוצת החנקן (נתרן ניטריט, נתרן ניטרופוסיד ו-L-ארגינין) מפחיתים את ההשפעה המעכבת של רדיקלי פרוקסי על שגשוג תאי הגידול ומעכבים את השראת האפופטוזיס במבחנה.

אישור עבודה

התוצאות העיקריות של העבודה דווחו בסימפוזיון של מדינות חבר העמים "היבטים קליניים וניסויים של איתות תאים" (מוסקבה, 28-29 בספטמבר, 1993), בוועידת V All-Russian Conference on Cell Pathology (מוסקבה, 29-30 בנובמבר, 1993), ב-VI Biochemistry, ב-6 באוקטובר, 9. הוועידה הבינלאומית השנייה על כימילומינסנציה קלינית (ברלין, גרמניה, 27-30 באפריל, 1996), בקונגרס השני של האגודה הביוכימית של האקדמיה הרוסית למדעים (מוסקבה, 19-32 במאי, 1997), בוועידה הבינלאומית "הסדרת תהליכים ביולוגיים על ידי רדיקלים חופשיים, תפקידם של רדיקלים חופשיים, נוגדי חמצון, ו-רדיקאלווסלבים" l, 10-13 במאי, 1998), בכנס המדעי האזורי "Actual Issues of Cardiology" (כרך sk, 14-15 בספטמבר, 2000), בקונגרס ה-ESACP השביעי (קאן, צרפת, 1-5 באפריל 2001), בוועידה הבינלאומית השביעית ב- 7th International Conferences in Bioactive inflammation, USA, USA 14-17 באוקטובר, 2001), בוועידה הבינלאומית VI "Bioantioxidant" (מוסקבה, 16-19 באפריל, 2002), בקונגרס 3 של אונקולוגים ורדיולוגים של מדינות חבר העמים (מינסק, 25-28 במאי, 2004).

פרסומים

מבנה והיקף עבודת הדוקטורט

עבודת הגמר מורכבת ממבוא, 3 פרקים, מסקנה, מסקנות ורשימת ספרות מצוטטת. העבודה מוצגת על פני 248 עמודים ומאוירת ב-29 דמויות ו-19 טבלאות. הביבליוגרפיה כוללת 410 מקורות ספרותיים, מתוכם 58 מקומיים ו-352 זרים.

תזות דומות בהתמחות "אונקולוגיה", 14.00.14 קוד VAK

  • מנגנוני ויסות של פעילות תאי מדכא טבעי בתנאים נורמליים ובמהלך גידול הגידול 2005, דוקטור למדעי הרפואה בלסקי, יורי פבלוביץ'

  • כמה מנגנונים של השפעת הגידול על תכונות מדכאות חיסוניות ואנטי-גידוליות של תאי מח עצם בניסוי 2002, מועמדת למדעי הרפואה Trofimova, יבגניה סרגייבנה

  • המנגנון היוני של ויסות גידול אוכלוסיות של תאים נורמליים וגידוליים בגוף 2011, דוקטור למדעי הביולוגיה Zamay, Tatyana Nikolaevna

  • תפקידן של הפרעות באינטראקציות בין-תאיות בפתוגנזה של פעולה מיאלוטוקסית של קסנוביוטיקה של אנתרציקלין 2007, דוקטור למדעי הביולוגיה יוליה אלכסנדרובנה אוספנסקאיה

  • מנגנוני רדיקלים חופשיים בפיתוח עמידות לתרופות בתאי גידול 2005, מועמדת למדעי הביולוגיה סולומקה, ויקטוריה סרגייבנה

מסקנת עבודת הדוקטורט על הנושא "אונקולוגיה", Kondakova, אירינה ויקטורובנה

1. השפעת הרדיקלים החופשיים על התפשטות תאי הגידול תלויה במינון. רדיקלי חמצן (רדיקל על חמצן, פרוקסידים אורגניים) ותורמי תחמוצת חנקן ברמות גבוהות

3 5 ריכוזים (10"-10" M) מעכבים שגשוג, ובריכוזים נמוכים (10"b-10"9 M) הם מפגינים פעילות מגרה גדילה כנגד תאי גידול מיימתים. יוצא דופן הוא nitrosoguanidine, שאינו מפעיל תהליכי שגשוג בתאי גידול בטווח הריכוזים הנחקרים.

2. מידת השראת האפופטוזיס של תאי הגידול על ידי פרוקסידים אורגניים ותורמי תחמוצת החנקן בולטת יותר עם עלייה בריכוז התרכובות בשימוש. מוות תאים מתוכנת מוגבר מלווה בעיכוב של פעילות ההתרבות שלהם.

3. הקינטיקה של האינטראקציה של פרוקסידים אקסוגניים עם תאי גידול מיימתים מאופיינת בדעיכה איטית יותר בהשוואה לתאים רגילים (לימפוציטים ואריתרוציטים).

4. תאי גידול מפרישים באופן חוץ-תאי גלוטתיון פרוקסידאז ותרכובות שאינן חלבוניות במשקל מולקולרי נמוך בעלות פעילות אנטי-רדיקלית.

5. מצב הפעילות השגשוגית של תאים שעברו טרנספורמציה מתאפיין בעלייה בחילוף החומרים של פוספוליפידים, המתבטאת בעלייה בשילוב חומצה ארכידונית לפוספוליפידים ממברניים, בעיקר לפוספטידילכולין וקרדיוליפין, בהשוואה לתאים במנוחה.

6. בפעולת רדיקלים חופשיים בריכוזים הממריצים שגשוג, נצפית עלייה פי שלושה בשחרור חומצה ארכידונית מהפוספוליפידים של תאי הגידול תוך שמירה על תהליכי שיקום בממברנות, ובפעולת מינונים רעילים - עליה של פי שבע, המלווה בעיכוב מוחלט של תהליכי תיקון הממברנה. ההשפעה של תורמי תחמוצת החנקן זהה, אך פחות בולטת. התפקיד העיקרי בשחרור חומצה ארכידונית מפוספוליפידים קרומיים ממלא פוספוליפאז A2.

7. במיימת וגידולים מוצקים של קרצינומה של ארליך, בשלב של צמיחה לוגריתמית מהירה, נצפית ירידה בפעילותם של אנזימים נוגדי חמצון (סופרוקסיד דיסמוטאז, גלוטתיון פרוקסידאז וגלוטתיון טרנספראז) בהשוואה לשלב הצמיחה הנייחת האיטית.

8. בפיברואדנומות בשד, פעילותם של אנזימים נוגדי חמצון עולה עם עלייה באינדקס המיטוטי של הגידול. לעומת זאת, ברקמות סרטן השד נצפית ירידה בפעילות של אנזימים נוגדי חמצון בערכים הגבוהים ביותר של האינדקס המיטוטי.

9. תורמי תחמוצת החנקן (סודיום ניטרופרוסיד, נתרן ניטריט, L-arginine) מפחיתים את מידת העיכוב של שגשוג תאי הגידול הנגרמת על ידי חומרים היוצרים רדיקלים פרוקסיים ומעכבים אפופטוזיס המושרה על ידי רדיקלים חופשיים.

10. שילוב של תורמי תחמוצת החנקן (נתרן ניטרופרוסיד, נתרן ניטריט, L-arginine) בריכוז של 10-4-10 "5 מ' ודוקסורוביצין

5 7 מוביל לירידה ברעילות הגידול של האנטיביוטיקה (10" - 10" M). נתרן ניטרופוסיד, נתרן ניטריט בריכוז של 10-3 M, וניטרוסוגואנידין בריכוז של 10-4 M מגבירים את ההשפעה הטומוסרית של דוקסורוביצין.

11. Nitrosoguanidine מגביר את היעילות הטיפולית של דוקסורוביצין בניסוי, מקטין את גודל הקרצינומה של ארליך פי 3 ומגביר את רמת השראת אפופטוזיס ונמק של תאי הגידול.

סיכום

הבסיס לגידול ממאיר הוא עלייה מתקדמת ואוטונומית במסת תאים לא יציבה גנטית, בה נבחרים כל הזמן תאים בעלי הפוטנציאל האגרסיבי ביותר. חוסר ויסות של מספר התאים בגידולים הוא תוצאה של חוסר איזון בתהליכי הריבוי והאפופטוזיס. חקר המנגנונים המולקולריים העומדים בבסיס תהליכים אלו הפך בשנים האחרונות לאחת הבעיות הדחופות ביותר של האונקולוגיה המודרנית והפיזיולוגיה הפתולוגית. החשיבות של פתרון בעיה זו נקבעת על ידי הקשר בין הפרעות בוויסות תהליכי רביית תאים ומוות לבין הופעה והתפתחות של גידולים ממאירים, הנחוצים להבנת הפתוגנזה של סרטן, כמו גם חיפוש כיוונים חדשים בטיפול בגידולים ממאירים.

נכון לעכשיו, מנגנוני הוויסות של פעילות שגשוג ואפופטוזיס של תאי גידול על ידי רדיקלים חופשיים אינם מובנים היטב. משימה חשובה היא לזהות את המנגנונים המובילים האחראים להשפעות הביולוגיות הסופיות של מחלקה זו של מולקולות. על פי הספרות, הוויסות של פעילות שגשוג ואפופטוזיס על ידי רדיקלים חופשיים הוא תהליך רב גורמים, המתבצע באמצעות האינטראקציה שלהם עם מערכות ספציפיות להעברת אותות. תפקיד חשוב בוויסות צמיחת תאי הגידול ומותם שייך לרדיקל החופשי N0", שהוא הגורם הביולוגי החשוב ביותר. עם זאת, רק מחקרים בודדים לוקחים בחשבון את האפשרות והחשיבות של אפנון על ידי רדיקלים חופשיים של שלבי ויסות שונים של פעילות חיונית התא, לרבות שינויים בפעילות האנזים, ביטוי גנים וכו'. עד כה, אנזימי נוגדי חמצון ברמת הוויסות האפשרי של האנזימים ברמת השינוי האפשרי של האנזימים לא נחשבו עד כה. חילוף חומרים חמצוני בתאים.

שאלת ההשפעה של מינונים נמוכים של רדיקלים חופשיים על מרכיבי הממברנה - פוספוליפידים ואנזימים של חילוף החומרים שלהם נותרה אחת הפחות נחקרות. התפקיד של תחמוצת החנקן והשילוב שלה עם מולקולות אחרות של רדיקלים חופשיים ביישום מנגנוני שגשוג או אפופטוטיים אינו נחשף מספיק. ברור של-NO יש השפעה משמעותית, אם כי עדיין לא הובהרה מספיק, על טיפול נגד גידולים. לא נחקרה האפשרות להשתמש בתרכובות המייצרות תחמוצת חנקן כדי להגביר את היעילות של אותם סוגים של טיפול נגד גידולים, שמנגנון הפעולה שלו מבוסס על נזק רדיקלי חופשי לרקמות ממאירות, כגון כימותרפיה עם אנטיביוטיקה אנתרציקלין.

נסיבות אלו שימשו נקודת מוצא לקביעת המטרה, שהייתה חקר תפקידם של רדיקלים חופשיים, תחמוצת חנקן ואנזימים נוגדי חמצון בוויסות של ריבוי ואפופטוזיס של תאי גידול. זה הניח:

1. לחקור את ההשפעה של מטבוליטי חמצן פעילים, פרוקסידים אורגניים ותורמי תחמוצת החנקן על פעילות ההתרבות של תאי הגידול.

2. לחקור את ההשפעה של מטבוליטים של חמצן פעיל ותחמוצת חנקן על השראת אפופטוזיס בתאי גידול.

3. לחקור את הקינטיקה של האינטראקציה של פרוקסידים אקסוגניים עם תאי הגידול ולברר את תפקידם של נוגדי חמצון אנזימטיים ולא אנזימטיים בתהליך זה.

4. לחקור את תפקידה של חומצה ארכידונית במנגנוני ויסות של ריבוי ואפופטוזיס של תאי גידול. להעריך את ההשפעה של חומרים רדיקלים חופשיים על שחרור חומצה ארכידונית מפוספוליפידים של ממברנות תאי הגידול ולהראות את האנזימים של חילוף החומרים של פוספוליפידים בתהליך זה.

5. לחקור את התלות של פעילותם של אנזימים נוגדי חמצון בקצב ההתפשטות והארגון המבני של הגידולים בניסוי.

6. העריכו את הקשר בין פעילותם של אנזימים נוגדי חמצון לבין שגשוג של תאי גידול שד שפירים וממאירים.

7. לחקור את ההשפעה המשותפת של סוכני רדיקלים חופשיים ותרכובות יוצרות NO על שגשוג ואפופטוזיס של תאי גידול.

8. לחקור את ההשפעה של תורמי תחמוצת החנקן על ההשפעה הרעלית לגידול של דוקסורוביצין במבחנה.

9. להעריך את האפשרות להשתמש בתורמי תחמוצת החנקן כדי להגביר את היעילות הטיפולית של אנטיביוטיקה אנתרציקלין.

מחקר ההשפעה של רדיקלים חופשיים ותורמי תחמוצת החנקן על שגשוג ואפופטוזיס של תאי גידול בוצע במודלים ניסיוניים של P-815 מסטוציטומה וקרצינומה של ארליך.

כתוצאה מהמחקרים נמצא כי השפעתם של רדיקלי חמצן שונים ותורמי תחמוצת החנקן על פעילות שגשוג של תאי גידול של P-815 מסטוציטומה וקרצינומה של ארליך תלויה בריכוז ובמבנה הכימי של התרכובות בהן נעשה שימוש. המגמה הכללית של השפעתם על תאי הגידול הייתה מורכבת מהשפעה ציטוטוקסית בולטת של ריכוזי tc גבוהים (10" - 10" M), שהתבטאה בירידה ברמת סינתזת ה-DNA ובהתאם, פעילות שגשוג. עם ירידה בריכוז (1 (U6 M ומטה), חלה ירידה בהשפעה הציטוטוקסית, שהפכה ישירות לגירוי של שגשוג תאי גידול. דפוס זה התגלה בפעולה של רדיקל הסופראוקסיד, 2,2 "אזו-ביס (2-amidinopropane) (ABAP), המייצר רדיקלים פרוקסיים, שלישוני בוטיל הידרופרוקסיד, חומצה שלישונית, חומצה דו-חמצנית, דו-חמצנית, וחומצה ני-נולנית, חוץ-חמצני, ונילטינון-חומצה, 2,2 "אזו-ביס (2-amidinopropane) (ABAP). e, אשר לא הייתה לה השפעה מעוררת על סינתזת ה-DNA בספקטרום הריכוז הנחקר. תוספת של L-arginine בהשעיה של שתי תרביות התאים הייתה בעלייה קלה בפעילות השגשוגית. עיכוב של תגובת L10-synthase עם nitroarginine methyl ester כמעט ולא שינתה את קצב סינתזת ה-DNA ב-P-815 cell carcinoma, זה כמעט ירידה בתהליך הגידול בתאים E5 ו-E5. נתונים אלו מצביעים על תרומה שונה של NO, שנוצר בתגובת NO-synthase, למתן תהליכים מווסתים גדילה בסוגים שונים של תאי גידול. תלות ריכוז דומה התגלתה גם בפעולת דוקסורוביצין על סינתזת DNA n בתאי גידול. נמצא כי ריכוזי אנטיביוטיקה (10" M ומטה) מעוררים תהליכי שגשוג בגידולים. יש לציין כי קיים טווח ריכוזים משותף לכל התרכובות היוצרות רדיקלים חופשיים, כולל דוקסורוביצין

10" - 10" M), שבהם הם מציגים תכונות מעודדות צמיחה. מבין כל ה-ACMs שנחקרו, הפחות רעיל היה רדיקל האניון סופראוקסיד, שעורר התפשטות תאים החל מריכוז של 6><10"6 М.

הנתונים שהתקבלו בעבודה זו תואמים את תוצאות מחקר של Golob, W. et al. שחשף גם את התלות של פעילות השגשוג של תאי גידול בריכוז של AKM.

הוכח כי הידרופרוקסיד ליפידים בריכוז של 1(G6 M ומטה) מעוררים חלוקה של תאי סרטן המעי הגס. הכותבים מאמינים כי מנגנון אפשרי של תהליך זה הוא עלייה בביטוי של cyclin וקינאז תלוי ציקלין 4, זרחון חלבון רטינובלסטומה, אשר מעודד את המעבר של תאים משלב ה-Synsis של ה-DNA לשלב ה-O0 ו-O. es וזמן החשיפה הובילו לנזק חמצוני ל-DNA ולעצירת מיטוזה בשלב O0 /Ob, מה שתרם להפסקת גידול אוכלוסיית התאים. נתונים אלה, כמו גם התוצאות שהתקבלו בעבודה זו, הם עדות להשתתפותם של רדיקלי חמצן בוויסות פעילות ההתרבות של תאי הגידול.

נכון לעכשיו, קשה לומר דבר על הזמן הנדרש להשראת חלוקת תאי גידול תחת פעולתם של רדיקלים חופשיים. ניסויים לקביעת זמן השראת התפשטות של זני חיידקים והפטוציטים הראו כי רדיקל הסופראוקסיד מתחיל לעורר תגובה שגשוג לאחר 20 דקות מתחילת הדגירה. נדרשים מחקרים נוספים כדי לקבוע פרמטר זה בתרביות של תאי גידול ורקמות.

לפיכך, ניתן להסיק כי רמת עוצמת הלחץ החמצוני קובעת את השפעתו הביולוגית הסופית בטווח שבין ההשפעה הציטוטוקסית ההרסנית בריכוזים גבוהים של חומרי חמצון ועד לוויסות המצב התפקודי של תאים בריכוזים פיזיולוגיים. במספר פונקציות פיזיולוגיות שונות של רדיקלים חופשיים, תפקיד חשוב הוא תפוס על ידי היכולת להשפיע על פעילות שגשוג של תאים.

איזון בין תהליכי התפשטות ואפופטוזיס חיוני להתפתחות רקמות תקינות. התוצאה של חוסר איזון ביניהם היא צמיחה ממאירה בלתי מוגבלת. לכן, רצוי לחקור את ההשפעות של רדיקלים חופשיים על שגשוג תאי גידול בשילוב עם הערכת השפעתם על אפופטוזיס. מחקר של השפעת פרוקסידים על מוות תאי מתוכנת של תאי קרצינומה של ארליך הראה כי התוצאות הבולטות ביותר התקבלו על ידי שימוש בבוטיל הידרופרוקסיד שלישוני, שגרם לאפופטוזיס בריכוזים מיקרומולריים, בעוד ש-ABAP דרש עלייה במינונים יעילים עד 10 ". ירידה בריכוז רדיקלי הפרוקסי עבור המנגנון האפשרי של האינקובופטוזיס של המנגנון של האינקובופטוזיס של המנגנון האפשרי של הדגירה. אפופטוזיס על ידי פרואוקסידנטים הוא כנראה חמצון או הפחתה של קבוצות SH של חלבונים - מתווכים של מוות תאי מתוכנת, כגון גורמי שעתוק c-Bob, c-Dt, AP-1 וכו'.

בניגוד לפרוקסירדיקלים, ההשפעה של doxorubicin על השראת אפופטוזיס הייתה גלית, ועם עלייה בריכוז, לא נצפתה עלייה במוות מתוכנת של תאי גידול. זה מצביע על כך שבריכוזים גבוהים, צורת המימוש העיקרית של ההשפעה האנטי-גידולית של האנטיביוטיקה היא השראת נמק של תאי גידול. יש לציין כי יחד עם עלייה במוות אפופטוטי בפעולת דוקסורוביצין בריכוזים נמוכים, עלתה גם פעילות ההתרבות של תאי הגידול. זה כנראה נובע מקיומם של מסלולי איתות אוניברסליים המעורבים בוויסות שני התהליכים. O

השימוש בתורמי תחמוצת החנקן בריכוז הוביל להפעלה משמעותית של השראת אפופטוזיס בהשוואה לרמת הביקורת. ירידה בריכוז התורמים שנחקרו ל-10-5 M גרמה לעיכוב של תחילת התוכנית האפופטוטית. נצפתה עלייה במספר התאים המתים אפופטוטיים פי 1.5 מהביקורת בפעולת L-arginine.

לפיכך, בעת ניתוח הנתונים שלנו, ציינו תלות ריכוזית של השפעת חומרים היוצרים רדיקלים חופשיים, כולל תורמי תחמוצת החנקן, על פעילות ההתרבות והשראת אפופטוזיס של תאי הגידול. ריכוזים גבוהים של תרכובות אלו עיכבו פעילות שגשוג וגרמו לאפופטוזיס של תאי גידול. ירידה בריכוז החומרים הפעילים במצע הדגירה הובילה לעלייה בשגשוג תאי הגידול ולירידה בתהליך ההפעלה של מוות תאי מתוכנת. באופן כללי, פוטנציאל החיזור יכול להיות גורם חשוב המשפיע על הקינטיקה של צמיחת הגידול, אשר נקבעת על ידי הפעילות המיטוטית והאפופטוטית של תאים.

התופעות של גירוי ועיכוב של שגשוג תאי גידול תחת פעולתם של ריכוזים נמוכים וגבוהים בהתאמה של רדיקלי פרוקסיד, דוקסורוביצין ותרכובות יוצרות ME הן מעניינות מנקודת מבט תיאורטית ומעשית. מנקודת מבט תיאורטית, התוצאות שהתקבלו תואמות היטב את הרעיון של H. Selye ורעיונות קיימים המבוססים על נתונים ספרותיים רבים, לפיהם מינונים נמוכים של חומרים רעילים (לחץ כימי חלש) הם בעלי השפעה מעוררת, ולמינונים הגבוהים שלהם יש השפעה מזיקה בהתאם, עד למוות של תאים. בנוסף, הנתונים שהתקבלו מצביעים על כך שהפרה במערכת הוויסות של סינתזה של תחמוצת חנקן ומיני חמצן תגובתיים יכולה להיות רחוקה מלהיות אדישה לפעילות ההתרבות של תאי הגידול. מנקודת מבט מעשית, התוצאות המתקבלות מעוררות עניין בשל העובדה שאוכלוסיות אמיתיות של תאי גידול בגוף של חולי סרטן הינן הטרוגניות ומשתנות בתכונות פנוטיפיות רבות. בהקשר זה, לא ניתן לשלול את האפשרות של קיומם של שיבוטים של תאים באותו צומת גידול עם סף שונה של רגישות לקרינה ולהשפעות כימותרפיות. כתוצאה מכך, טיפול ספציפי נגד גידולים יכול להוביל למוות של מסה משמעותית של תאי גידול, אך במקביל להשפיע על התפשטות תאים בודדים בעלי עמידות גבוהה, וכתוצאה מכך להכללה של תהליך הגידול.

ויסות שגשוג ואפופטוזיס של תאי גידול הוא תהליך מורכב רב-שלבי, הכולל בשלב הראשוני אינטראקציה של מולקולה מווסתת עם קולטנים ספציפיים. מכיוון שמנגנון הקולטן של מולקולות רדיקלים חופשיים (למעט תחמוצת החנקן) עדיין לא אופיינו, על מנת להבהיר את המנגנון שבאמצעותו חומרים אלו יכולים להשפיע על המערכת התוך-תאית הרגולטורית המורכבת, נראה היה צורך לחקור את הפרמטרים של האינטראקציה של רדיקלי פרוקסי עם קרום הפלזמה ואת השפעתם על חילוף החומרים של מרכיבי הליפידים העיקריים של הממברנה.

התוצאה של האינטראקציה של בוטיל הידרופרוקסיד שלישוני עם ממברנות הפלזמה של תאי הגידול הייתה פירוקו עם היווצרות רדיקלי פרוקסיד, שיכולים להוליד את שרשרת החמצון של שומנים, חלבונים ו-DNA. מחקר הקינטיקה של פירוק GPTB בהשעיית התאים של P-815 מסטוציטומה, EL-4 לימפומה וקרצינומה של ארליך הראה שתהליך זה בתאי הגידול מתקדם הרבה יותר לאט מאשר בתאי הגידול הרגילים. בנוסף, נחשף ייצור חוץ-תאי של חלבונים בעלי פעילות גלוטתיון פרוקסידאז ותרכובות במשקל מולקולרי נמוך בעלות פעילות אנטי-רדיקלית בולטת. הדבר מצביע על קיומה של רמת הגנה חוץ-תאית על תאי הגידול מפני עקה חמצונית, אשר מאוששת על ידי הנתונים של SapMhot, שהראו את יכולתם של תאי לוקמיה אנושיים לייצר קטלאז באופן חוץ-תאי.

היבט נוסף של האינטראקציה של רדיקלים חופשיים עם ממברנות הוא ההשפעה על חילוף החומרים של פוספוליפידים, הכוללים חומצה ארכידונית. זהו מבשר של מחלקה חשובה של תרכובות פעילות פיזיולוגית - איקוסנואידים, הנחשבים על ידי חוקרים רבים כהורמונים מקומיים ומשפיעים על תהליכים תוך תאיים, כולל ריבוי. בעבודה הנוכחית הוכח כי עם הפעלת התפשטות הפיברובלסטים שעברו טרנספורמציה, נצפית עלייה בחילוף החומרים של חומצה ארכידונית, המתבטאת בעלייה בשילובה בפוספוליפידים, בעיקר בפוספטידילכולין וקרדיוליפין.

מחקר ההשפעה של רדיקלים חופשיים על שחרור ושילוב חומצה ארכידונית בממברנות של תאי הגידול הראה כי הידרופרוקסיד שלישוני של בוטיל בריכוזים נמוכים, המפעיל את התפשטות תאי הגידול, הגביר את שחרור החומצה הארכידונית מפוספוליפידים פי 3 מבלי להשפיע על תהליך השילוב שלה בהם. תחת פעולתם של מינונים רעילים של GPTB, נמצא כי מי חמצן ממריץ באופן משמעותי (פי 7) את שחרור חומצות השומן מפוספוליפידים תאיים ועכב תהליכי שיקום, אשר עשויים להוות גורם חשוב בשיבוש המצב המבני והתפקודי של הממברנות. שחרור חומצה α-arachidonic היה קשור להפעלה של PLA, בעוד שהפעילויות של ליפאז ליפופוספוליפיד, acylCoA: lysophosphatidylcholine acyltransferase ו-acylCoA synthetase לא השתנו תחת פעולת HPTB.

לתרמי תחמוצת החנקן הייתה השפעה דומה אך פחות בולטת. דגירה של תאי גידול מסטוציטומה P-815 במדיום המכיל NaCl בריכוזים שונים הובילה לעלייה בשחרור חומצה α-arachidonic ממברנות פוספוליפידים ב-36% בהשוואה לרמת הביקורת. יחד עם זאת, ל-L-arginine לא הייתה השפעה מפעילה על שחרור חומצה ארכידונית מהפוספוליפידים של ממברנות תאי הגידול. מחקר השילוב של חומצה ארכידונית בפוספוליפידים של ממברנות תאי הגידול הראה שהוספת ריכוזים גבוהים של NaNO2 (10" M) למדיום הדגירה של תאי גידול מסטוציטומה P-815 הובילה לעיכוב תהליך זה.

לפיכך, ההשפעה של תורמי GPTB ותחמוצת חנקן בריכוזים הממריצים שגשוג מתבטאת בעלייה בתפוקה של חומצת שומן, שבהמשך יכולה לשמש כמצע לסינתזה של איקוסנואידים פעילים ביולוגית. מטבוליטים של חומצה ארכידונית מעורבים בהעברת האות השגשוג, ועלייה בתכולתו תחת פעולת רדיקלים חופשיים עשויה להיות אחת הסיבות המובילות לשגשוג מוגבר של תאי גידול. מצד שני, עלייה מוגזמת ברמת החומצה הארכידונית החופשית בתוך התאים, אשר נצפתה בפעולת HPTB ותורם תחמוצת החנקן במינונים גבוהים, בעלי השפעה רעילה, מובילה למוות אפופטוטי של תאי ניאופלזמה. המעורבות של חומצה ארכידונית חופשית בהשראת אפופטוזיס נתמכת על ידי מחקרים המראים את תפקידה החשוב בהפעלת קספאז.

96, 160] ועלייה בחדירות של ממברנות מיטוכונדריה עבור ציטוכרום C ו-AP7.

במקביל לעלייה בריכוז חומצה ארכידונית חופשית תחת פעולת מינונים רעילים של מי חמצן, נצפתה הצטברות של תוצר הידרוליזה של פוספוליפאז, lysophosphatidylcholine. Lysophosphatidylcholine נחשב גם למוצר ציטוטוקסי, שהוא חומר ניקוי הורס את היציבות של הליפיד b והשכבה. אינדוקציה של אפופטוזיס של תאי גידול עשויה להיות תוצאה של עלייה בתוכן של חומצה ארכידונית חופשית וליזופוספוליפידים תחת פעולת ריכוז גבוה של רדיקלים חופשיים.

לפיכך, מצאנו שהוויסות הן של פעילות השגשוג של תאי הגידול והן של השראת אפופטוזיס יכולים להתבצע על ידי רדיקלים חופשיים באמצעות השפעה על רמת החומצה הארכידונית החופשית, שהיא כנראה אחד המרכיבים של מסלול העברת האות התוך תאי האוניברסלי. מיתוג וקביעת מסלול ספציפי למימוש האות תלוי בריכוז הגורם הפעיל.

כדי לשמור על רמה נייחת של רדיקלים חופשיים ותגובת שרשרת חסימה, אנזימים נוגדי חמצון מתבטאים בתאים, אשר יכולים להיות בעלי השפעה משמעותית על כל התהליכים הפיזיולוגיים המווסתים על ידי מולקולות פעילות מאוד אלו. כך, בעבודה המוצגת נמצא קשר בין פעילות אנזימים מרכזיים של חילוף חומרים רדיקלי סופראוקסיד, פרוקסידים אורגניים וחומרת תהליכי שגשוג בתאי גידול הן בניסוי על מודלים של גידול מיימת ומוצק של קרצינומה של ארליך והן בגידולים אנושיים. עלייה משמעותית (פי כמה) בפעילות SOD נצפתה במהלך המעבר של תאי קרצינומה של ארליך מהשלב הלוגריתמי, המאופיין בקצב גדילה גבוה יותר, לשלב הנייח. המחקר של קסנטין אוקסידאז, אנזים המזרז יצירת רדיקל סופראוקסיד, הראה את פעילותו המרבית בשלב הלוגריתמי של צמיחת הגידול, בעוד שירידה משמעותית בפעילות של אנזים זה התרחשה בשלב הנייח.

לפיכך, עלייה בפעילות הקסנטין אוקסידאז בשלב הגדילה הלוגריתמי מחד גיסא, וירידה בפעילות ה-SOD מאידך גיסא, נותנות סיבה להאמין שתהליך ייצור רדיקלי הסופראוקסיד מתנהל באופן אקטיבי בקצב גדילת גידול גבוה, תוך כדי סילוקו מעוכב. התוצאות המוצגות במאמר זה מצביעות על קשר הדוק בין האנזימים המרכזיים של חילוף החומרים הרדיקלי של סופראוקסיד לבין פעילותם של תהליכי שגשוג בתאי גידול. עיכוב קצב השגשוג בשלב הנייח של צמיחת הגידול יכול להיות קשור, לדעתנו, לעלייה משמעותית בפעילות הסופראוקסיד דיסמוטאז בשלב זה. ניתן להסיק ש-SOD, על ידי שליטה בריכוז של אור, הוא ככל הנראה אחד הרגולטורים של פעילות ריבוי. הבדל משמעותי בפעילות האנזימים בצורות מיימת ומוצק מוסבר בעובדה שגידול מיימת מאופיין בשיעור גבוה של שגשוג תאים.

כמו כן, הוכח קשר הדוק בין פעילותם של אנזימים תלויי גלוטתיון לבין שלב וצורת הגדילה של קרצינומה של ארליך. הפעילות של אנזימים תלויי גלוטתיון - GP ו-GT בתאי גידול מיימתים בשלב הגדילה הלוגריתמי הייתה נמוכה משמעותית בהשוואה לשלבי גדילה אחרים ופעילות האנזים בגידול מוצק. בשלב הצמיחה הנייח, נצפתה עלייה משמעותית בפעילות של שני האנזימים, הן בצורות מוצקות והן בצורות מיימת. מכיוון שאנזימים אלו מווסתים את המאגר התוך-תאי של פרוקסידים אורגניים, השתתפותם של האחרונים בתהליכים המסדירים את התפשטות תאי הגידול היא סבירה למדי.

על הדוגמאות של גידולים ממאירים ושפירים של בלוטת החלב האנושית, בוצעה הערכה השוואתית של הפעילות של אנזימים נוגדי חמצון בהתאם לאינדקס המיטוטי של הגידולים שנחקרו. מחקרים אלו חשפו את אותן מגמות לירידה בפעילות AOF עם עלייה במספר התאים המתחלקים, אשר הודגמה במודלים ניסיוניים.

נקבע כי לתלות של פעילות אנזימטית בחומרת תהליכי שגשוג בגידולים שפירים וממאירים יש הבדלים מהותיים.

לפיכך, הראינו כי בפיברואדנומות של בלוטת החלב עם עלייה באינדקס המיטוטי (עד 7-12°/00), נצפתה עלייה בפעילות של כמעט כל האנזימים שנחקרו, והעלייה הבולטת ביותר נרשמה עבור קטלאז וגלוטתיון טרנספראז. השינוי בפעילות הגלוטתיון פרוקסידאז היה הכי פחות משמעותי. ערכים נמוכים של פעילות קסנטין אוקסידאז המייצר את רדיקל הסופראוקסיד נצפו ברקמות של גידולים שפירים עם שיעור שגשוג נמוך. תוצאות כאלה מעידות כנראה על עלייה פיזיולוגית בפעילות AOF בתגובה לעלייה בייצור של מטבוליטי חמצן פעילים במהלך חלוקת התא, ניקוי רעלים בזמן שלהם ושמירה על איזון חיזור בתאי גידול שפירים.

לעומת זאת, ברקמות סרטן השד, לצורת התלות של פעילות AOF באינדקס המיטוטי יש אופי שונה. בגידולים עם האינדקס המיטוטי הגבוה ביותר (>35°/oo), נרשמה הפעילות הנמוכה ביותר של SOD, GT, HP, GT. החריג היחיד היה הפעילות הגבוהה של קטלאז. הירידה בפעילויות של GP ו-GR עם עלייה במספר מיטוזות בגידולים הייתה ליניארית, בעוד ששינויים ב-SOD ו-HT התבטאו בקשר מורכב יותר. התוצאות המוצגות מצביעות על כך שביטול AKM אינו מתרחש בתאי גידול במידה הראויה. עלייה בפעילות המיטוטית של גידולים ממאירים עלולה להיות מלווה בעלייה בייצור רדיקלי סופראוקסיד. הנחה זו מאוששת על ידי העלייה בפעילות של קסנטין אוקסידאז, המזרזת היווצרות רדיקלי סופראוקסיד אנדוגני בגידולים רבים המתרבים באופן פעיל, כפי שהוצג בניסויים שלנו. הנתונים הניסויים הקיימים מאששים את ההנחה שריכוזו עולה בגבולות הפיזיולוגיים בתאים המתרבים באופן פעיל. מספר עבודות הראו רמה מכוננת גבוהה של מי חמצן בתאי גידול. סביר להניח שהרדיקלים הללו משתתפים עוד יותר בשינוי החמצוני של ה-DNA, גורמים להשפעה גנוטוקסית ומקדמים התקדמות הגידול, תוך שמירה על מצבו הממאיר, הפולשנות והפוטנציאל הגרורתי שלו.

למרות העובדה שנדרשים מחקרים נוספים למסקנות סופיות לגבי תפקידו של AOF בוויסות שגשוג תאי הגידול, בוצעו כעת מחקרים ראשונים על השימוש באנזימים אלו בטיפול בגידול. נתונים על יכולתו של SOD לעכב שגשוג תאים עם ביטוי מוגבר של האנזים שימשו כבסיס לניסויים הראשונים בשימוש בחיקוי SOD ו- SOD כמו תרופות נגד סרטן. הניסוי הראה נסיגה של תרביות גידולים לאחר טרנספקציה של cDNA של האנזים Mn-SOD לתוכם. לפיכך, האפשרות של עיכוב שגשוג תאי גידול על ידי אנזימים נוגדי חמצון פותחת את הסיכוי לשימוש בהם כתרופות נוגדות גידולים.

הנתונים המוצגים בעבודה זו מוכיחים את האפשרות של ויסות על ידי רדיקלים חופשיים של מצבים תפקודיים חשובים כמו התפשטות ואפופטוזיס של תאי גידול. האינטראקציה של רדיקלי חמצן וחנקן עם מערכות העברת אותות תוך תאיות משחקת תפקיד חשוב במנגנון של תהליכים אלה, והשפעתם הסופית תלויה בריכוז. עם זאת, בתוך התא, יכולים להיווצר מספר סוגים של מולקולות רדיקלים חופשיים בבת אחת, שיכולות לקיים אינטראקציה זו עם זו. ההשפעה של אינטראקציה זו על התפשטות תאי הגידול והשראת אפופטוזיס בהם טרם נחקרה כראוי. לכן, נראה היה שחשוב לחקור את ההשפעה של שילוב של חומרים המייצרים רדיקלים פרוקסיים ותורמי תחמוצת החנקן על פעילות ההתרבות והאפופטוזיס של תאי הגידול. מחקרים מסוג זה עשויים לעורר עניין גם בשל העובדה ששיטות קלאסיות רבות לטיפול במחלות אונקולוגיות המשמשות בפרקטיקה הקלינית (כימו-, הקרנות וטיפול פוטודינמי) מבוססות על מנגנון רדיקלי חופשי. לכן, חשוב להעריך את האפשרות להשתמש בתורמי תחמוצת החנקן למטרות תרופתיות בטיפול מורכב בגידולים.

סדרת הניסויים הבאה הוקדשה לחקר ההשפעה המשולבת של רדיקלים חופשיים ו-NO על שגשוג ואפופטוזיס של תאי גידול במערכת מודל חוץ גופית.

מחקרים ראשוניים הראו תלות ריכוזית של השפעת החמצנים על פעילות השגשוג של תאי קרצינומה של ארליך, שהתבטאה בעיכוב סינתזת DNA בריכוזים גבוהים ובגירוי של תהליך זה מעל ערכי בקרה במינונים נמוכים של התרכובות בשימוש.

כאשר חקרו את ההשפעה המשולבת של תחמוצת החנקן וחומרי רדיקלים חופשיים על שגשוג תאי הגידול, הוכח כי תורמי NO בריכוזים לא רעילים בשילוב עם ריכוזים תת-טוקסיים של פרוקסידים הגדילו את השילוב של -תימידין ב-DNA בהשוואה לאוכלוסיית הביקורת של תאי הגידול שהודגרו רק עם מקורות של רדיקלי פרוקסיד, או לא השפיעו עליו. השילוב של תורמי G) באותם ריכוזים עם מינון ציטוטוקסי של GPTB ו-ABAP, שעיכבו את סינתזת ה-DNA ביותר מ-80%, הוביל לירידה בהשפעה האנטי-פרוליפרטיבית של רדיקלים חופשיים. בניתוח הנתונים שהתקבלו, ניתן להסיק כי תחמוצת החנקן מפחיתה את ההשפעה הרעילה של רדיקלי פרוקסי על תאי הגידול ומשפרת את השפעתם מעוררת הגדילה בשימוש בריכוזים לא רעילים, מה שמרמז בדרך כלל על תכונות ההגנה של NO בתרביות תאים ממאירות. ייתכן שהשפעה זו נובעת מהתכונות נוגדות החמצון של תחמוצת החנקן, שכנראה קובעת את השפעתה הציטופרוטקטיבית. היכולת של NO לקשור פרוקסידים אורגניים עם יצירת פרוקסיניטריטים, המומרים לחנקות, מאשרת את איכויותיו נוגדות החמצון. בנוסף, ידוע ש-NO קושר קומפלקסים של ברזל קרומי ותוך תאיים, מה שמונע פירוק של פרוקסידים עם היווצרות רדיקלים והתפתחות תגובות שרשרת של חמצון רדיקלים חופשיים.

המחקר על ההשפעה המשולבת של תחמוצת החנקן ורדיקלים חופשיים על השראת אפופטוזיס בתאי סרטן קרצינומה של ארליך הראה את ההפעלה של תהליך זה עם שימוש משולב של NaNCb (10"5 M) ו-ABAP (OD mM), L-arginine (5x10"3 M) ו-ABAP (0.1 mM ו-.TBargin) ו-. במקרים אחרים נצפתה ירידה במוות של תאים אפופטוטיים. בהתבסס על התוצאות שהתקבלו, ניתן להניח שהשימוש המשולב של תורמי תחמוצת החנקן וחומרי רדיקלים חופשיים בריכוזים נמוכים יכול להוביל לשגשוג משופר עם השראת אפופטוזיס בו-זמנית.

אחד המקרים המיוחדים של השפעות רדיקלים חופשיים על תאי גידול הוא כימותרפיה. תרופות, בפרט אנטיביוטיקה אנתרציקלין. השימוש בשילוב של דוקסורוביצין עם תורמי תחמוצת החנקן הוביל לעלייה משמעותית בתהליכי סינתזת ה-DNA בתאי סרטן קרצינומה של ארליך, למעט עלייה בהשפעה הטוקסית לגידול של דוקסורוביצין (10" M), אשר נצפתה כאשר תורמי תחמוצת החנקן NaNO2 ו-SNP נוספו בריכוזים של 10 אינץ' ציטורוביצין עם שילוב של דוקסורוביצין בשילוב של 10 אינץ'. . במקביל, נמצאה תרכובת שהעצימה משמעותית את ההשפעה הציטוטוקסית של דוקסורוביצין. אז ניטרוגואנידין בריכוז

10-4M הגדיל את ההשפעה המעכבת של doxorubicin על סינתזת ה-DNA פי 3.

לפיכך, התוצאות שהתקבלו מראות כי השימוש בדוקסורוביצין בשילוב עם תורמי תחמוצת החנקן במבחנה חשף נוכחות של דפוס מורכב בהשפעה של שילובים שונים של מינוני אנטיביוטיקה ותורמי תחמוצת החנקן על פעילות שגשוג של תאי גידול. לתורמי תחמוצת החנקן יש השפעה מעורפלת על ההשפעה הרעלית לגידולים של דוקסורוביצין, התלויה במבנה הכימי ובריכוז התרכובות המשמשות. הירידה שהתגלתה בהשפעה האנטי-פרוליפרטיבית של דוקסורוביצין והשראת אפופטוזיס של תאי גידול על ידי תורמי NO מצביעים על כך שחנקן תחמוצת עשוי להיות אחד הגורמים התורמים להופעת שיבוטים של תאי גידול עמידים לדוקסורוביצין עם פעילות שגשוג מוגברת.

בהערכת הנתונים שהתקבלו בעבודה זו, אנו יכולים להסיק ש-NO הוא כנראה גורם המגן על ה-DNA של תאי הגידול מההשפעה המזיקה של דוקסורוביצין ותורם לפיתוח עמידות הגידול לאנטיביוטיקה אנתרציקלין. עם זאת, יש לציין שבמצבים מסוימים חלה התגברות ההשפעה המזיקה של דוקסורוביצין. כתוצאה מכך, התוצאה הסופית של הפעולה המשולבת של תחמוצת חנקן ורדיקלים חופשיים תלויה בגורמים רבים: בריכוז החומרים הפעילים, בסוג התאים, בתנאים להקמת ניסויים. בהתחשב ביכולתן של חלק מהתרופות האנטי-גידוליות לשפר את יצירת NO, יש צורך, לדעתנו, להמשיך ולחקור את הפעילות האנטי-גידולית של שילוב של תרופות המשמשות בכימותרפיה.

לדעתנו, תרכובות ניטרוסו הן המבטיחות ביותר לשימוש קליני מבין כל תורמי תחמוצת החנקן שנחקרו, דבר המאושר על ידי קיומן של תרופות נוגדות גידולים מקבוצת הניטרוזוריאה, אשר מצאו יישום טיפולי. כדי להעריך באופן מלא יותר את יכולתו של nitrosoguanidine לווסת את ההשפעה האנטי-גידולית של doxorubicin, נערך מחקר in vivo. הוכח ש-MNNG יכול להגביר את ההשפעה הטיפולית של דוקסורוביצין, שהתבטאה בהפחתה משמעותית בגודל הגידול, וכן בעלייה בהשראת אפופטוזיס ונמק של תאי קרצינומה של ארליך בהשוואה לפעולה של תרופה כימותרפית בודדת. בעבר, הוכח כי היעילות האנטי-גידולית של cyclophosphamide גדלה כאשר הוא היה משולב עם תורם NO נגד תאי לוקמיה P-388. בהשוואת עובדות אלו, אנו יכולים להסיק כי כדאי להשתמש בתורמי תחמוצת החנקן כדי להגביר את היעילות של חומרים כימותרפיים המשמשים במרפאה. עם זאת, למסקנה סופית לגבי השימוש בתורמי NO בכימותרפיה של גידול, יש צורך במחקרים נוספים על תלות ההשפעה האנטי-גידולית במינון, המבנה הכימי של התרכובות ושלב תהליך הגידול.

בסיכום התוצאות המוצגות, אנו יכולים לומר שתאי יונקים פיתחו לא רק מנגנונים המאפשרים להם להסתגל לדו-קיום עם רדיקלים חופשיים אגרסיביים, אלא גם דרכים להשתמש במולקולות הפעילות ביותר הללו כדי לווסת תפקודים חיוניים. רדיקלים חופשיים ממלאים תפקיד פיזיולוגי חשוב בחיי הגוף, והשפעותיהם הביולוגיות כוללות ויסות של ריבוי ומוות תאים אפופטוטי. במהלך טרנספורמציה ממאירה, מנגנונים אלו מותאמים על מנת להבטיח את יכולת ההישרדות והצמיחה המרבית של תאי הגידול. אם התוכנית פועלת בתאים רגילים מספר מוגבלחלוקות וכניסה להתמיינות ולאחר מכן לאפופטוזיס, רדיקלים חופשיים בתאי גידול הם אחד הכלים להבטיח את הצמיחה הבלתי מבוקרת שלהם, המוטגנזה והתקדמות הגידול.

בנוסף למאפיינים הביוכימיים המולקולריים המקובלים של תאי הגידול, הכוללים נוכחות של מוטציות בגנים שמוצריהם שולטים בשגשוג ואפופטוזיס, סוג אוטוקריני של ויסות גדילה והפעלה של מסלולי איתות תוך תאיים, גילינו תכונות חדשות של צמיחת גידול. בהתבסס על הנתונים שלנו, יש לציין כי תאים ממאירים נבדלים מהנורמליים על ידי מאפיינים כגון

ייצור חוץ תאי של נוגדי חמצון אנזימטיים ולא אנזימטיים

פירוק מושהה של פרוקסידים אקסוגניים

הפעלה מהירה ואינדוקטיביות גבוהה של אנזימים המעורבים ביצירת מולקולות איתות שומנים

חוסר ויסות של הומאוסטזיס חיזור בתאי גידול, עיכוב פעילות האנזים נוגד החמצון בגידולים הגדלים במהירות

השימוש בחנקן תחמוצת כגורם המגן על תאי הגידול מפני עקה חמצונית.

בהתבסס על תוצאות מחקר זה ונתוני ספרות, ניתן לזהות מספר מנגנונים עיקריים של השפעת רדיקלים חופשיים על שגשוג ואפופטוזיס של תאי גידול (איור 29). יש צורך להדגיש את קיומה של תלות ריכוז של השפעת הרדיקלים החופשיים על השפעות פיזיולוגיות תאיות ותהליכים מטבוליים. בריכוזים גבוהים יש להם השפעה מזיקה על תאי הגידול, המתבטאת בעיכוב סינתזת DNA, שיבוש תהליכי תיקון קרום התא. התוצאה של השפעה זו היא עיכוב שגשוג של תאי גידול והשראת אפופטוזיס בהם.

אורז. 29. מנגנונים אפשריים של ויסות של שגשוג ואפופטוזיס של תאי גידול על ידי רדיקלים חופשיים.

לעומת זאת, ריכוזים נמוכים של רדיקלים חופשיים מגבירים את העברת האותות מעוררי הגדילה, לרבות באמצעות שחרור חומצה ארכידונית, מפעילים סינתזת DNA, מה שמוביל להפעלת תהליכי שגשוג בתאי גידול.

לתורמי NO יכולה להיות גם השפעה מעורפלת על תהליכי ההתפשטות והאפופטוזיס של תאי הגידול. תחמוצת החנקן, בשל תכונותיו הרב-פוטנטיות, הנקבעות הן על ידי הציטוטוקסיות של הרדיקל והן על ידי פעילותו התקשורתית, מעורבת בשמירה על צמיחת הגידול.

בשלב זה, קשה למצוא קשר בין פעולת כל הגורמים הקובעים את ההשפעה הטיפולית של תורמי תחמוצת החנקן, אולם ניתן לקבוע כי לריכוז ולמבנה הכימי של תרכובות יוצרות NO יש חשיבות מכרעת בתגובות הפיזיולוגיות שלהן. בעבודה זו, השגנו תוצאות המראות את האפשרות הבסיסית של פיתוח כיוון לשימוש בתורמי תחמוצת החנקן כדי לשפר את היעילות הטיפולית של דוקסורוביצין. המבטיח ביותר לפיתוח הכיוון לשימוש בתורמי תחמוצת החנקן באונקולוגיה הוא עריכת מחקרים מקיפים המשלבים את חקר הפעילות האנטי-סרטנית, נוגדת הגידול, האנטי-גרורות והאימונומודולטורי שלהם, אשר עשויות בסופו של דבר להוביל לשימוש קליני נרחב שלהם.

לסיכום, יש לציין שהשיבוש של הומאוסטזיס חיזור ממלא תפקיד חשוב בביולוגיה של הסרטן, אשר מורכב לא רק בהפעלת קרצינוגנזה, אלא גם בשמירה על צמיחת הגידול; לכן, קביעת האפשרות של השפעה רגולטורית על תהליכי רדיקלים חופשיים בתאים ממאירים יכולה להיות תנאי מוקדם ליצירת סוגים חדשים של חומרים נוגדי גידולים. שליטה בעוצמת התגובות של רדיקלים חופשיים יכולה להיות חיונית לשיפור היעילות של אמצעי מניעה וטיפול נגד גידולים.

רשימת הפניות לחקר עבודת הגמר דוקטור למדעי הרפואה קונדאקובה, אירינה ויקטורובנה, 2005

1. אבסובה ש.ג. מערכת Fas-FasL במצבים נורמליים ופתולוגיים. / ש.ג. Abbasova, V.M. Lipkin, H.H. טרפזניקוב, N.E. קושלינסקי // וופר. ביול. דבש. פארם. כִּימִיָה. - 1999. - מס' 3. - ס' 3-17.

2. Avdeeva O.S. מחקר EPR של המנגנונים המולקולריים של פעולת הקרינה ומתיל-ניטרוזוריאה על רקמות של בעלי חיים בריאים וחיות נושאות גידול. / O.S. Avdeeva // תקציר עבודת הגמר. דיס. cand. פיזיקה ומתמטיקה מדעים - מוסקבה. 1980.- 20 עמ'.

3. עמוסוב י.ש. מצב חמצן ואנגיו-ארכיטקטוניקה של גידולים מסוגים שונים ושינוייהם במהלך טיפול בקרינה / I.S. עמוסוב, ר.ק. קרולוב, ח.א. סזונובה // רדיוביולוגיה. 1984. - מס' 24. - ש' 630635.

4. אסקרובה א.ל. יצירת רדיקלי סופראוקסיד ונזילות של שומני ממברנה של Acholeplasma Laidlawii במהלך הזדקנות תרבית תאים / E.L. אסקרובה, א.ב. Kapitanov, V. Koltover, O.S. טטישצ'וב // ביופיסיקה. 1987. - ת' XXX11, גיליון. 1. - ש' 95-99.

5. Afanasiev I.B. מחקר של מנגנון האינטראקציה בין האנטיביוטיקה האנטי סרטנית אדרימיצין והאניון רדיקלי O2./ I.B. Afanasiev, N.I. פולוזובה // אנטיביוטיקה ודבש. ביוטכנולוגיה. 1986.- ת' 31.- מס' 4.- ש.261-264.

6. בלושקינא ח.ה. בסיס מולקולרי של אפופטוזיס./ ח.ח. בלושקינא., א. חסן חמד, ש.ע. Severin // Vopr. ביול. דבש. פארם. כִּימִיָה. -1998. -מס' 4.-ש. 15-24.

7. בלוכין ח.ה. כימותרפיה מחלות ניאופלסטיות. / ח.ח. Blokhin, N.I. מתרגם// מ': רפואה, 1984. 304 עמ'.

8. ונין א.פ. תחמוצת החנקן במחקר ביו-רפואי. / A.F. Vanin // עלון האקדמיה הרוסית למדעי הרפואה. - 2000. - מס' 4. עם. 3-5.

9. Yu. Vartanyan JI.C. מחקר של קביעת פעילות SOD ברקמות בעלי חיים עם tetranitrotetrazole blue / JI.C. Vartanyan, S.M. גורביץ' // שאלות של דבש. כִּימִיָה. 1982. - מס' 5. - S.23-56.

10. Vartanyan JI.C. היווצרות רדיקלי סופראוקסיד בממברנות של אברונים תת-תאיים של הכבד המתחדש / JI.C. Vartanyan, I.P. סדובניקובה, ש.מ. גורביץ', I.S. סוקולובה // ביוכימיה. 1992. - ו' 57, גיליון 5. - ש' 671 -678.

11. Viktorov I.V. התפקיד של תחמוצת החנקן ורדיקלים חופשיים אחרים בפתולוגיה איסכמית של המוח. / I.V. ויקטורוב // עלון האקדמיה הרוסית למדעי הרפואה.-2000.-№4.- S. 5-10.

12. ווסקרסנסקי או.נ. מערכת נוגדת חמצון, אונטוגניה והזדקנות / O.N. ווקרסנסקי, י.א. Zhutaev // שאלות של דבש. כימיה-1994-מס' 3.-ש. 53-56.

13. גאוס ג.פ. חקר מנגנוני הפעולה המולקולריים והשימוש באנטיביוטיקה אנטי גידולית. / G.F. Gause, Yu.V. אנג'ליקה // אנטיביוטיקה. 1982, - ת' 27. - מס' 2. - ש' 9-18.

14. גריגורייב מ.יו. אפופטוזיס במצבים נורמליים ופתולוגיים./ M.Yu. גריגורייב, E.H. אימניטוב, ק.פ. הנסון // מד. acad. כתב עת.- 2003.- T.Z.- מס' 3.-S. 3-11.

15. Dyatlovitskaya E. V. ליפידים כמו ביואפקטורים. / E. V. Dyatlovitskaya, V.V. בזוגלוב//ביוכימיה.- 1998.-ט. 63.-№1.-S. 3-5.

16. קזמין ש.ר. פעילות שגשוגית בקרצינומה של ארליך אסציטית / S.R. Kazmin, E.V. קולוסוב // בעיות אונקולוגיה. - 1979. - מס' 7.-ש. 60-64.

17. Kolomiytseva I.K. ביוכימיה של קרינה של שומני ממברנה. / I.K. Kolomiytseva Moscow: Nauka.- 1989.- 181 עמ'.

18. טיפול משולב ומורכב בחולים עם גידולים ממאירים. // ed. V.E. Chissova M.: Medicine, - 1989. - 560 עמ'.

19. Konovalova N.P. תורם תחמוצת החנקן מגביר את היעילות של טיפול ציטוסטטי ומעכב את התפתחות העמידות לתרופות. / נ.פ. Konovalova // Vopr. אונקולוגיה.-2003.-T.49.-מס'1.-S.71-75.

20. Konovalova N.P. השפעת תורם תחמוצת החנקן על היעילות הטיפולית של ציטוסטטים וסינתזת DNA.// N.P. Konovalova, JI.M. וולקובה, L.Yu. Yakushenko ואחרים // Russian Biotherapeutic Journal, - 2003, - מס' 2. 52-55.

21. Kopnin B.P מנגנוני פעולה של אונקוגנים ומדכאי גידולים. / B. P. Kopnin // ביוכימיה. 2000.- ת.65. - מס' 1. - ש' 2-77.

22. קודרין א.ב. יסודות קורט ותחמוצת חנקן הם ליגנדים רב-פונקציונליים. /A.B. קודרין // וופר. ביול. דבש. פארם. כִּימִיָה. - 2000.-№ 1. - ש' 3-5.

23. Kudryavtsev Yu.I. דינמיקה של אירועים אפופטוטיים המושרים על ידי גורם נמק גידול בתאי לוקמיה U-937. / יו.אי. Kudryavtsev, A.A. Filchenkov, I.V. Abramenko, JI.3 Polishchuk, I.I. Slukvin, N.I. Belous // Exp. אונקולוגיה.- 1996.-ת.18.- ש' 353-356.

24. קוטסי מ.פ. מעורבות של פרוטאזות באפופטוזיס. / מ.פ. Kutsiy., E.A. קוזנצובה, א.י. Gaziev // Biochemistry.-1999.- v.64.-Vol.2.-S.149-163.

25. לנקין ו.ז. ויסות אנזימטי של חמצון שומנים בביו-ממברנות: תפקידם של פוספוליפאז A2 וגלוטתיון-S-טרנספראז /V.Z. לנקין, א.ק. טיקהזה, יו.ג. אוסיס, א.מ. וויכרט. // דן ברית המועצות. 1985. - ת' 282. - ש' 204-207.

26. לוינה V.I. התרופה האנטי-סרטנית הידרוקסיאוריאה היא תורמת תחמוצת החנקן. / IN AND. Levina, O.V. עזיזוב, א.פ. Arzamastsev ואחרים // Vopr. ביול., מד. וחווה. כִּימִיָה. 2001. - מס' 1. - ש' 47-49.

27. ליכטנשטיין A. V. צמיחת גידול: רקמות, תאים, מולקולות. / א.ו. ליכטנשטיין, ב"כ. צ'פוט. // פאטול. פיזיול. ולהתנסות. תֶרַפּיָה. -1998.-№3.- ש' 25-44.

28. לובישבע I.I. אינטראקציה של מתחמי ברזל המכילים דיניטרוסיל תיול עם פרוקסיניטריט ומי חמצן במבחנה./ I.I. לובישבע, V.A. Serezhenkov, A.F. ונין // ביוכימיה. -1999.-T.64-S. 194-2000.

29. Lutsenko C.B. מנגנונים מולקולריים של פעילות אנטי-גידולית של אנטיביוטיקה אנתרציקלין. /C.B. Lutsenko, N.B. פלדמן, ש.ג. Tumanov., S.E. Severin // Vopr. biol.med. וחווה. כימיה.-2001.- מס' 2.-S.-3-9.

30. לושניקוב E.F. מוות תאי (אפופטוזיס). / E.F. לושניקוב, א.יו. אברוסימוב // מ. רפואה. 2001. - 192 עמ'.

31. Manukhina E.B. תחמוצת החנקן במערכת הלב וכלי הדם: תפקיד בהגנה אדפטיבית. / E.B. Manukhina, I.Yu. מאלישב, יו.ו. ארכיפנקו. // עלון של האקדמיה הרוסית למדעי הרפואה. 2000.- №4. עמ' 16-21.

32. מניציקובה א.ב. ביוכימיה של עקה חמצונית. חומרים חמצוניים ונוגדי חמצון. / Menytsikova E.B., Zenkov N.K., Shergin S.M. -נובוסיבירסק: נאוקה, 1994. 196 עמ'.

33. Metelitsa D.I. הפעלת חמצן על ידי מערכות אנזימים / D.I. Metelitsa-Moscow: Nauka, 1982. 256 עמ'.

34. נפאלקוב נ.פ. סרטן והמעבר הדמוגרפי. / נ.פ. נפאלקוב // בעיות אונקולוגיה. 2004. - ת' 50. - מס' 2. - ש' 127-144.

35. אורלוב ב.צ. מבנה אלקטרוני ומנגנוני רדיקלים חופשיים של פעילות אנטי-גידולית של אנטיביוטיקה אנתרציקלין. / Orlov V.S., Luzhkov V.B., Bogdanov G.N. // מומחה לבעיות בפועל. כימותרפיה של גידול. - 1982.- ש' 30-32.

36. פודבריוזקינה נ.ב. תפקיד ביולוגי superoxide dismutase / נ.ב. פודברזקינה., ל.פ. אוסינסקאיה. // כתב עת ביוכימי אוקראיני. 1989. - ו' 61, מס' 2. - מ-14-27.

37. Proskuryakov S.Ya. תחמוצת החנקן בתהליך הניאופלסטי. Proskuryakov S.Ya., Konoplyannikov A.G., Ivannikov A.I. וחב' // בעיות אונקולוגיה. 2001. - ת.47. - N3. - ש' 257-269.

38. רייכלין ת.נ. ויסות וביטויים של אפופטוזיס בתנאים פיזיולוגיים ובגידולים. / רייכלין נ.ת., רייכלין א.נ. // סוגיות של אונקולוגיה. -2002. -T48. מס' 2. עמ' 159-171.

39. רעוטוב V.P. היבטים רפואיים-ביולוגיים של מחזורי תחמוצת חנקן וסופראוקסיד אנואין רדיקליים. / רויטוב V.P. // עלון של האקדמיה הרוסית למדעי הרפואה. 2000.-№4.-S. 30-34.

40. רעוטוב V.P. טרנספורמציות מחזוריות של תחמוצת חנקן בגוף של יונקים. / Reutov V.P., Sorokina E.G., Okhotin V.E., Kositsyn N.S. //מוסקווה, נאוקה. -1998.- 159 עמ'.

41. ריאבוב ג.א. תפקידה של תחמוצת החנקן כמווסת של תהליכים תאיים בהיווצרות של אי ספיקת איברים מרובה / Ryabov G.A., Azizov Yu.M. // הרדמה והחייאה. 2001 - V.1. - ס' 812.

42. ספרין א.כ. לחץ חמצוני ותפקידו במנגנוני האפופטוזיס והתפתחות תהליכים פתולוגיים. / A.S. Saprin., E.V. קלינינה // התקדמות בכימיה ביולוגית. 1999. - ת' 39. - ש' 289-326.

43. סידורנקו ס.פ. אפופטוזיס Fas/CD95-onocpeflyeMbifi בפתוגנזה של ניאופלזמות לימפואידיות. / S.P. סידורנקו // אונקולוגיה ניסויית. 1998. - ת' 20. - ש' 15-28.

44. Skulachev V.P. חמצן ותופעות המוות המתוכנת. / Skulachev V.P. מוסקבה, 2000. - 48 עמ'.

45. סוחנוב V.A. מנגנונים של ויסות הורמונלי של צמיחת תאי גידול. / V.A. סוחנוב // התקדמות בכימיה ביולוגית. - 1995.- T.35. -עם. 97-134.

46. ​​פילצ'נקוב א.א. רעיונות מודרניים על תפקידה של אפופטוזיס בצמיחת הגידול ומשמעותו לטיפול נגד גידולים. / א.א. פילצ'נקוב // Exp. אונקולוגיה.- 1998.- ת' 20. ש.259-269.

47. פילצ'נקוב א.א. אפופטוזיס וסרטן. / א.א פילצ'נקוב, ר.ש. מתלה // - קייב: מוריון, 1999.- 184 עמ'.

48. שאפוט ב.צ. היבטים ביוכימיים של צמיחת גידול / V.C. צ'פוט. מוסקבה: נאוקה, 1975. -304 עמ'.

49. שבמברגר י.נ. אפופטוזיס: תפקיד באונטוגניה ופתולוגיה תקינים. / Svemberger I.N., Ginkul L.B. // סוגיות של אונקולוגיה. -2002. ת.48, - ש' 153-158.

50. עמנואל נ.מ. / עמנואל נ.מ., ספרין א.נ.// דוקל. האקדמיה למדעים של ברית המועצות.-1968.-T. 182.-ש. 733-735.

51. ירילין א.א. אפופטוזיס. אופי התופעה ותפקידה בכל האורגניזם. / א.א. ירילין // פט פיציול וטיפול ניסיוני. 1998. -№2.-S. 38-48.

52. Abe J. Big mitogen - מופעל חלבון קינאז 1(BMK1) הוא קינאז רגיש לחזור. / Abe J., Kusuhara M., Ulevitch R.J. // ג'יי ביול. Chem. -1996.-V. 271.-עמ'. 16586-16590.

53. אדמס ג'יי.מ. משפחת חלבוני Bcl-2: פוסקים להישרדות התא. / Adams J.M, Cory S. // מדע. 1998.-V.281.- P.1322-1326.

54. אלן ר.ג. מתח חמצוני וויסות גנים. / Allen R.G., Tressini M. // Free Radical Biol. Med. 2000.-V.28.- P.463-499.

55. Ambrosone C.B. חומרים חמצוניים ונוגדי חמצון בסרטן השד. / Ambrosone C.B. // אות חיזור נוגד חמצון. 2000. - כרך. 2, מס' 4. עמ' 903-917.

56. Ambs S. השפעות אינטראקטיביות של תחמוצת החנקן והגן מדכא הגידול p53 בקרצינוגנזה והתקדמות הגידול. / Ambs S., Hussain S.P. והריס סי.סי. // FASEB J.- 1997.- כרך 11.- 443-448.

57. Amstad P. A. Mechanism of c-fos induction by oxygen active / P. A. Amstad P. A. Krupitza, G. Gerutti // Cancer Res. 1992. - מס' 52. - עמ' 3952-3960.

58. אמסטד פ.א. BCL-2 מעורב במניעת מוות תאי המושרה מחמצנים ובהפחתת ייצור רדיקלי חמצן / Amstad P.A., Liu H., Ichimiya M. et all // Redox Rep. 2001. - V.6. - עמ' 351-362.

59. אנדרסון ק.מ. מעכבי 5-Lipoxigenase מפחיתים את התפשטות תאי PC-3 ומתחילים מוות של תאים לא נמק. / Anderson K.M., Seed T., Vos M., et al. // בלוטת הערמונית. 1998.- ו' 37.- עמ' 161-173.

60. Andreas N. K. דלקת, ויסות חיסוני וסינתאז תחמוצת החנקן הניתן לשרירה. / Andreas N. K., Billiar T. R. // J. Leukoc. ביול.-1993.- ו' 54. עמ' 171-178.

61. Arai T. הצטברות גבוהה של נזק ל-DNA חמצוני, 8-hydroxyguanine, בעכברים חסרי Mmh/ogg 1 על ידי מתח חמצוני כרוני./ Arai T., Kelle V.P., Minowa O., et al. // קרצינוגנזה.- 2002. V. 23.- P. 2005-2010.

62. Arany I. אינדוקציה של iNOS mRNA על ידי אינטרפרון-גמא בתאי אפיתל קשורה לעצירת גדילה והתמיינות. / Arany I., Brysk M.M., Brysk H., et al. // מכתבי סרטן. 1996.- VI10.- עמ' 93-96.

63. Archer S. מדידת תחמוצת החנקן במודלים ביולוגיים. / Archer S.// FASEB J.- 1993. V. 7.- P. 349-360.

64. Aust A.E. מנגנונים של חמצון DNA. / Aust A.E., Eveleigh J.F. // P.S.E.B.M. 1999.- V.222.- P.246-252.

65. באביץ' מ.א. הרג סינרגטי של תאים אנושיים שעברו טרנספורמציה בנגיף עם אינטרפרון ו-N-methyl-N "-nitro-N-nitrosoguanidine. / Babich M.A., Day R.S. // Carcinogenesis. 1989. - V. 10.- P. 265-268.

66. בכור נ.ר. הפעלת NADFH ציטוכרום P450 רדוקטאז של חומרים נוגדי סרטן קינון לרדיקלים חופשיים. / Bachur N.R., Gordon S.L., Gee M.V. et al. //פרוק. נאטל. Acad. מדע ארה"ב. 1979. - כרך. 76.-N2. - עמ' 954-957.

67. ביי י.ס. יצירת מי חמצן המושרה על ידי גורם גדילה אפידרמיס (EGF). / Bae Y.S., Kang S.W., Seo M.S., Baines I.C., et al. // ג'יי ביול. Chem. 1997, ו' 272.- עמ' 217-221.

68. בלאקירב מ.י. מודולציה של מעבר החדירות המיטוכונדריאלי על ידי תחמוצת החנקן / Balakirev M.Yu., Khramtsov V.V., Zimmer G. // European J. Biochem.- 1997.- V. 246. P. 710-718.

69. Balamurugan K. Caspase-3: מעורבותו הפוטנציאלית באפופטוזיס המושרה על ידי Cr(III) של לימפוציטים / Balamurugan K., Rajaram R., Ramasami T. // Mol Cell Biochem. 2004. - V.259. - עמ' 43-51.

70. בנאי ס. ייצוא גלוטתיון מתאי דיפלואיד אנושיים בתרבית / ס. בנאי, ח. צוקדה // ג'יי ביול. Chem. 1979. - כרך. 254. - עמ' 3440-3450.

71. Barnouin K. H2C>2 גורם לעצירת מחזור תאים רב-פאזי חולף בפיברובלסטים של עכברים באמצעות אפנון ביטוי מחזורי D ו-P21. / Barnouin K., Dubuisson M., Child E.S., et al. // J.Biol. Chem. 2002.- ו' 277.- עמ' 13761-13770.

72. Bartolli G. A. תפקידו המשוער של סופראוקסיד דיסמוטאז בבקרת צמיחת הגידול / G. Bartolli, G. Minotti, S. Borello // Oxy radicals and the scavenger systems. 1983. - הוצאת Elsevier Science. - עמ' 179-184.

73. בירות ר.פ. שיטה ספקטרופוטומטרית למדידת פירוק מי חמצן על ידי קטלאז. / Beers R.F., Sizer J.W. // ג'יי ביול. Chem. -1952.-כרך. 195.-עמ' 133-140.

74. Benchekroun M.N. פרוקסידציית שומנים הנגרמת על ידי Doxorubicin ופעילות גלוטתיון פרוקסידאז בתאי גידול שנבחרו לעמידות לדוקסורוביצין. / Benchekroun M.N., Pourquier P., Schott B., Robert J. // Eur. J Biochem. 1993.-V. 211.-עמ' 141-146.

75. Bhatnagar A. מתח חמצוני משנה את זרימת הממברנה הספציפית במיוציטים לבביים מבודדים. / Bhatnagar A., ​​Srivastava S.K., Szabo G. // Circulation Res. 1990.- V.67.- עמ' 535 - 549.

76. בורוביץ ש.מ. תפקידו של פוספוליפאז A2 בחמצן שומנים מיקרוזומלי המושרה עם t-butyl hydroperoxide. / Borowits S.M., Montgomery C. // Biochim. ביופיס. מילון קהילה. 1989.- ו' 158.- עמ' 1021-1028.

77. Bos J.L. אונקוגנים ראס בסרטן אנושי: סקירה./ J.L. Bos // Cancer Res. 1989. - V.49.- עמ' 4682-4689.

78. Bouroudian M. שימוש במיקרו-עמודה של חומצה סיליקית לבדיקת acyl-CoA: lysophosphatidylcholine acyltransferase. / Bouroudian M., Chautan M., Termine E. // Biochim. ביופיס. acta. 1988.- ו' 960.- עמ' 253-256.

79. Bouroudian M. In vitro stay של שילוב חומצה docosohexaenoic לתוך phpsphotidylcholine על ידי אנזימים של לב חולדה. / Bouroudian M., Nalbone G., Grinberg A., Leonardi J., Lafont H. // Mol. תָא. Biochem. 1990.-V.93.-P.119-128.

80. Brash A.R. חומצה אראשידונית כמולקולה ביו-אקטיבית. /A.R. חוצפה // ג'יי קלין. Invest.- 2001.-V. 107.-עמ' 1339-1345.

81. Breuer W. לאחרונה נמסר טרנספראין ברזל ופגיעה בתאים חמצוניים. / Breuer W., Greenberg E., Cabantchik Z. I. // FEBS Letters. 1997.- V. 403.-P. 213-219.

82 בריהל מ.מ. מודולציה של הגנות נוגדות חמצון במהלך אפופטוזיס. / Briehl M.M., Baker A.F., Siemankowski L.M., Morreale J. // Oncology Res. 1997.- ו' 9.- עמ' 281-285.

83. Brox L. השפעת האנוקסיה על אנתרצילין הנגרם נזק ל-DNA בקו התא הלימפובלסטואידי האנושי RPMI 6410. Brox L., Gowans B., To R. et al. // פחית. J. Biochem.-1982.-כרך 60. N.9.-P.873-876.

84. ברומל י.ה. תוצרי ביניים של חמצן חוזרים אנדוגניים מפעילים טירוזין קינאזות בנויטרופילים אנושיים. / Brumell J.H., Burkhardt A.L., Bolen J.B., et al.//J.Biol. Chem.- 1996.- V. 271.-P. 1455-1461.

85. Briine B. מוות של תאים אפופטוטיים ותחמוצת חנקן: מסלולים מפעילים ואנטגוניסטיים. / B. Briine, K. Sandau, and A. Von Knethen. // ביוכימיה. ביופיס. מילון Commun.- 1997.-V.229. עמ' 396-401.

86. בוג ג.מ. NG-hydroxy-L-arginine וחנקן אוקסיד מעכבים את התפשטות תאי הגידול Caco-2 על ידי מנגנון ברור. / Buga G.M., Wei L.H., Bauer P.M. et al. // Am. J Physiol. 1998. - V. 275. - R1256 - R1264.

87. Burch H.B., Superoxide רדיקלי ייצור מגרה שגשוג פיברובלסטים רטרו-עיניים ב- Graves Ophthalmopathy. / Burch H.B., Lahiri S., Bahn R.s., Barnes S.//Exp.Eye Res. 1997, V.2.-P.311-316.

88. ברדון ר.ה. ריבוי תאים ולחץ חמצוני / R. Burdon, V. Gill, C. Rice-Evans // Free Radic. מילון Comm. 1989. - מס' 7. - עמ' 149-159.

89. ברדון ר.ה. רדיקלים חופשיים וויסות התפשטות תאי יונקים / Burdon R.H., C. Rice-Evans. // רדיק חופשי. מילון Comm. -1989,-№6.-P. 345-358.

90. ברדון ר.ה. עקה חמצונית ושגשוג תאי גידול / R.H. Burdon, V. Gill, C. Rice-Evans. // רדיק חופשי. מילון Comm. 1990. - מס' 11. - עמ' 65-76.

91. ברדון ר.ה. מיני חמצן פעילים שנוצרו באופן תאי ושגשוג תאי HeLa / R.H. ברדון, ו' גיל. // רדיק חופשי. מילון Comm. 1993. -מס' 19.-P. 203-213.

92. Burdon R. H. Superoxide ומי חמצן ביחס לשגשוג תאי יונק / R.H. ברדון. // רדיקלי חופשי ביולוגיה ורפואה. 1995. - כרך. 18, מס' 4. - עמ'. 775 - 794.

93. Cabelof D. אינדוקציה של DNA polimarase |3 תיקון כריתת בסיס תלוי בתגובה ללחץ חמצוני in vivo. / Cabelof D., Raffoul J.J., Yanamadala S., et al. // קרצינוגנזה.- 2002.- ו' 23.- עמ' 1419-1425.

94. Cao Y. חומצה ארכידונית תוך-תאית לא מאסטרית מאותתת לאפופטוזיס. / Cao Y., Pearman A.T., Zimmerman G.A. et al. // PNAS.- 2000. V. 97. P. 11280-11285.

95. Capranico G. עיכוב טופואיזומרס II סלקטיבי ברצף על ידי נגזרות אנתרצילין ב-DNA SV40: קשר עם זיקה ל-DNA וציטוטוקסיות. / Capranico G., Zunino F., Kohn K. et al. // ביוכימיה.- 1990.- V.29.- עמ' 562-569.

96. צ'ה מ.ס. ייצור אנדוגני של תחמוצת החנקן על ידי גורם גדילה של אנדותל כלי דם מווסת את התפשטות תאי choriocarcinoma./ Cha M.S., Lee M.J., Je G.H., ועוד. // Oncogene.- 2001.-V.20.-P.1486-96.

97. צ'או סי-סי. השתתפות של תחמוצת חנקן וברזל בחמצון ה-DNA בתאי אפיתל ריאות אנושיים שטופלו באסבסט. / Chao C-C., Park S.H., Aust A.E. // קשת. Biochem. ביופיס. 1996.- V 326.- עמ' 152-157.

98. Chazotte-Aubert L. Nitric Oxide מונע עצירת מחזור תאים המושרה על ידי קרינת y על ידי פגיעה בתפקוד p53 בתאי MCF-7. / Chazotte-Aubert L., Pluquet O., Hainaut P., et al. // ביוכימיה. ביופיס. מילון קהילה. 2001.-V. 281.-p. 766-771.

99. חן ד-ל. השפעות הגנה של תוספי סלניום במזעור נזקי חמצון ליפידים של 5-fluorouracil במעי הדק. / חן ד-ל., סנדו ק., חן ק., וואסה מ., ועוד. // J. Trace Elem Exp Med. 1997.-V.10.-P. 163-171.

100 Church D.F. כימיה רדיקלית חופשית של עשן סיגריות והשלכותיו הטוקסיקולוגיות. / Church D.F., Pryor W.A. // סביבה. פרספקטיבה בריאותית. 1985.-V. 64.- עמ' 111-126.

101. כהן I. פעילות אנטי-אפופוטית של ההומלוג גלוטתיון פרוקסידאז המקודד על ידי HTV-1. / כהן I., Zhao L., Metivier D., et al. // אפופטוזיס. -2004.-V.9.-P. 2004.

102. כהן ג'יי.ג'יי. מוות תאים מתוכנת במערכת החיסון/ כהן ג'יי.ג'יי. // עו"ד אימונול. -1991.- V.50.- P.55-85.

103 קולינס J.A. פיצול DNA עיקרי הוא אירוע מאוחר באפופטוזיס./ Collins J.A. Schandl C.A., Young K.K., Vesely J. // J.Histochem. Cytochem.- 1997.- V.45.- עמ' 923-934.

104 Comhair S.A. אינדוקציה חוץ-תאית של גלוטתיון פרוקסידאז בריאות אסתמטית: עדות לוויסות חיזור של ביטוי בתאי אפיתל בדרכי הנשימה האנושיות. / Comhair S.A., Bhathena P.R., Farver C., et al. // FASEB J.-2001.- V.l.-P. 70-78.

105. Crawford D. מתח חמצוני גורם ל-protooncogenes c-fos ו-c-myc בתאי אפידרמיס עכברים / D. Crawford, L. Zbinden, P. Amstad., P. Cerutti // Oncogene. 1989. - מס' 3. - עמ' 27-32.

106. Cross J.V. עקה חמצונית מעכבת את MEKK1 על ידי גלוטתיונילציה ספציפית לאתר בתחום הקישור ל-ATP. / Cross J.V., Templeton D.J. // Biochem J. 2004.- V.381(Pt 3) - P.675-683.

107. Cui S. הפעלה של מקרופאגים עכברים מעוררת אפופטוזיס בתאי גידול באמצעות מנגנונים תלויי תחמוצת החנקן או בלתי תלויים. / Cui S., Reichner J., Mateo R., et al. // Cancer Res. 1994, ו' 54.- עמ' 2462-2467.

108 Dartsch D.C. השוואה בין מוות המושרה על ידי אנתרצילין של תאי לוקמיה אנושיים: מוות תאים מתוכנן לעומת נמק. / Dartsch D.C., Schaefer A., ​​Boldt S., et al. // אפופטוזיס. 2002, - V.7 - עמ' 537-548.

109. Datta R. מעורבות של תוצרי ביניים חמצן תגובתיים באינדוקציה של שעתוק גן c-jun על ידי קרינה מייננת. / ר' דאטה, ד' חלהאן, א' חרבנדה, א' רובין, מ' ק' שרמן, א' הוברמן. // ביוכימיה. -1992.-№31.-P. 8300-8306.

110. דיקן ר.ת. כמה אירועי ממברנה קריטיים במהלך מוות תאי יונק. / דין ר.ת. // פרספקטיבה על מוות תאי יונקים. אוקספורד, ניו יורק, טוקיו. 1987.-P. 18-38.

111. Denecker G. מוות תאים אפופטוטי ונמק המושרה על ידי קולטן תחום המוות. / Denecker G., Vercammen D., Declercq W., Vandenabeele P. // Cell. מול. מדע חיים. 2001.- V.58. - עמ' 356-370.

112. De Wolf F. A. אינטראקציה דומה של דוקסורוביצין עם פוספוליפידים חומציים שונים גורמת לשינויים בסדר ובדינמיקה של השומנים. / De Wolf F.A., Maliepaard M., Van Dorsten., et al. // ביוכים. ביופיס. acta. -1990.-V. 1096.-עמ'. 67-80.

113. Dodd F. L-arginine מעכב אפופטוזיס מול מנגנון תלוי NO בתאי לימפומה Nb2. / Dodd F., Limoges M., Boudreau R.T., et al. // J. Cell. Biochem. 2000.- ו' 77.- עמ' 642-634.

114. Doi K. ייצור מוגזם של תחמוצת חנקן בגידול מוצק של חולדה והשלכתו בצמיחה מהירה של הגידול. / Doi K., Akaike T., Horie H., et all // Cancer.- 1996.- V.77.- P. 1598-1604.

115. Dong M. קשר הפוך בין פוספוליפאז A2 וביטוי COX-2 במהלך גידול המעי הגס של עכבר. / Dong M., Guda K., Nambiar P.R., Rezaie A. et al. // קרצינוגנזה.- 2003.-V. 24.- עמ' 307315.

116. Dong Z. מתאם הפוך בין ביטוי של פעילות סינתאז הניריק אוקסיד הניתנת להשראת וייצור גרורות בתאי מלנומה עכברים K1735. / Dong Z., Staroselsky A., Qi X., et al. // Cancer Res. 1994.-V.54.-P. 789-793.

117. Droge W. רדיקלים חופשיים בשליטה פיזיולוגית של תפקוד תאים. / Droge W. // Physiol. Rev.- 2001.- V.82. עמ' 47-95.

118. Dybdahl M. DNA adduct היווצרות מתח חמצוני במעי הגס ובכבד של חולדות Big Blue לאחר חשיפה תזונתית לחלקיקי דיזל. / Dybdahl M. Dybdahl M. Risom L., Moller P., Autrup H. et.al. // קרצינוגנזה 2003.-V. 24.-לא. 11.-P. 1759-1766.

119. Egan S. E. הדרך לאות הישג. / S.E. Egan, R.A. וינברג. // טבע. 1993. - כרך. 365. - עמ' 781-783.

120. Egner P. A. השפעות של סופראוקסיד דיסמוטאז על קרצינוגנזה מלאה ורב-שלבית בעור עכבר. /P.A. Egner, T.W. קנסלר. // קרצינוגנזה. 1985. - מס' 6. - עמ' 1167-1172.

121. אלינג א.ת. שגשוג תאי ומטבוליזם של שומנים: חשיבות של ליפוקסיגנאז במודול מיטוגנזה תלוית גורם גדילה אפידרמיס. / א.ת. אלינג, סי.וו. גלזגו. // ביקורות על סרטן וגרורות. 1994.-V.13. - עמ' 397-410.

122. אליוט נ.א. השראת מתח ולוקליזציה מיטוכונדריאלית של חלבוני Oxrl בשמרים ובבני אדם. / Elliot N.A., Volkert M.R. // Mol Cell Biol. 2004. - V.8. - P.3180-3187.

123. Esterbauer H. ציטוטוקסיות וגנוטוקסיות של מוצרי חמצון שומנים./ Esterbauer H. // Amer. ג'יי קלין. נוטר. 1993, V. 57.- P. 779S-786S.

124. Faber M. מוצרי חמצון ליפידים וסטטוס ויטמין ויסודות קורט בחולים עם סרטן לפני ואחרי כימותרפיה. / Faber M., Coudray C., Hida H. et al. // Biol Trace Elem Res. 1995.- V.47. - עמ' ל 17123.

125. פקטור V.M. הפרעה של הומאוסטזיס חיזור במודל העכבר הטרנסגני של גורם הגדילה המשתנה-alpha/c-myc של הפטוקרצינוגנזה מואצת. / פקטור V.M., Kiss A., Woitach J.T., ועוד. // ג'יי ביול. Chem. 1998.- ו' 273.- עמ' 15846-15853.

126. Farinati F. קובעים להתפתחות דלקת קיבה כרונית ומטאפלזיה של המעי בקיבה. / Farinati F., Cardin R., Libera G. et al. // יורו. J. Cancer Prev.- 1995.- V.4.- P. 181-186.

127. פטמן סי.ל. סופראוקסיד דיסמוטאז חוץ תאי בביולוגיה ורפואה. / Fatman C. L., Schaefer L. M., Oury T. D. // FreeRad. ביול. Med.-2003.-V. 35.-עמ' 236-256.

128. Feger F. תפקידו של ברזל בהגנה על תאי גידול מהאפקט הפרו-אפופטוטי של תחמוצת החנקן. / F. Feger, Ferry-Dumazet H., Matsuda M. M. ועוד. // Cancer Res. 2001. - ו' 61. - עמ' 5289-5294.

129. ה-DNA של תא האיים של Fehsel K. הוא יעד להתקפה דלקתית על ידי תחמוצת חנקן. / Fehsel K., Jalowy A., Qi S., et al. // סוכרת. 1993.- ו' 42.- עמ' 496-500.

130. Filep J.G. מעורבות תחמוצת החנקן בתמוגגת תאי מטרה ובפיצול DNA המושרה על ידי תאי הורגים טבעיים של עכברים. / Filep J.G., Baron C., Lachance C.//Blood.- 1996.-V. 87.-P. 5136-5143.

131. פישר ש.מ. חמצן תגובתי בשלב קידום הגידול של סרטן העור. / פישר S.M., Cameron G.S., Baldwin J.K. et al. // שומנים. -1988.- V.23.- P.592-597.

132. פלויד ר.א. תפקידו של 8-הידרוהיגואנין במחלת הסרטן. / פלויד ר.א. // סרטן.- 1990.- V.l 1.- עמ' 1447-1450.

133. פלויד ר.א. תפקידם של רדיקלים חופשיים בחמצן בקרצינוגנזה ואיסכמיה במוח. / פלויד ר.א. // FASEB J. 1990.- V. 4,- P. 2587-2597.

134. Folch J. שיטה פשוטה לבידוד וטיהור של כלל שומנים מרקמות בעלי חיים. / Folch J., Lees M., Stanley S. // J. Biol. Chem. -1957.-V. 226.-P.497-509.

135. Forstermann U. ביוכימיה וביולוגיה מולקולרית של סינתזות תחמוצת החנקן. / Forstermann U. // Drug Res. -1994.- V.44.- עמ' 402-407.

136. Fridovich I. הביולוגיה של רדיקלי חמצן. רדיקל הסופראוקסיד הוא סוכן של רעילות חמצן; סופראוקסיד דיסמוטאז מספק הגנה חשובה. / י.פרידוביץ // עננו. לְהַאִיץ. פארם. רעלן. 1989. - ו' 23. - עמ' 239-257.

137. Fritzer-Szekeres M. השפעות משופרות של אדרימיצין בשילוב עם מעכב ריבונוקלאוטיד רדוקטאז חדש, טרימידוקס, בלוקמיה של עכברים. / Fritzer-Szekeres M, Novotny L, Romanova D, et al. // Life Sci. 1998. - V.63 - עמ' 545-552.

138. Gaiter D. השפעות ברורות של גלוטתיון דיסולפיד על גורמי השעתוק הגרעיני kappaB ו-activator protein-1 / D. Gaiter, S. Mihm, W. Oroge // Eur. J Biochem. 1994. - V. 221. - עמ' 639-648.

139. Gamberini M. שגשוג של פיברובלסטים של עכברים המושרה על ידי חמצון אוטומטי של 1,2-dimethylhydrazine: תפקיד של ברזל ורדיקלים חופשיים. / Gamberini M., Leite L.C.C. // ביוכימיה. ביופיס. מילון קהילה. 1997.-V. 234.- עמ' 44-47.

140. Gansauge S. השראת אפופטוזיס בפיברובלסטים אנושיים מתרבים על ידי רדיקלי חמצן קשורה להשראת p53 ו-p21. / Gansauge S, Gansauge F, Gause H., et al. // מכתבי FEBS. 1997. - V. 404.-P. 6-10.

141. Gansauge S. תחמוצת חנקן אקסוגנית, אך לא אנדוגנית, מגבירה את שיעורי ההתפשטות בפיברובלסטים אנושיים מזדקנים. / Gansauge S, Gansauge F, Nussler AK, et al. // מכתבי FEBS. 1997. - V. 404. - P. - 160-164.

142. Gedik C. M. מתח חמצוני בבני אדם: אימות של סמנים ביולוגיים של נזק ל-DNA. / Gedick C.M., Boyle S.P., Wood S.G. בכלל. // קרצינוגנזה.- 2002.- V. 23.- P. 1441-1446.

143. Gerber M. Progression Tumor and oxidant antioxidant / M. Gerber et al.//CancerLetters. - 1997.-V. 114.-P.211-214.

144. Gewirtz D.A. נזק ל-DNA, ביטוי גנים, עצירת גדילה ומוות של תאים. / Gewirtz D.A. // Oncol Res.- 1993.-V.5.- P.397-408.

145. Gewirtz D.A. הערכה קריטית של מנגנוני הפעולה המוצעים להשפעות האנטי-גידוליות של האנטיביוטיקה האנתרציקלין אדטיאמיצין ודאונומיצין. / Gewirtz D. A. // Biochem Pharmacol. -1999.-V. 57.-עמ' 727-741.

146. Ghosh J., Myers C.E. חומצה ארכידונית מגרה את צמיחת תאי סרטן הערמונית: תפקיד קריטי של 5-lipoxygenase. // Biochem and Biophys Res Commun. 1997.-V.235.-P.418-423.

147. Glockzin S. הפעלת תוכנית המוות של התא על ידי תחמוצת החנקן כרוכה בעיכוב של הפרוטאזום. / Glockzin S, von Knethen A, Scheffner M, et al.//J. ביול. Chem.- 1999,-V. 274.-עמ' 19581-19586.

148. Goldberg H. G. פעילות טירוזין קינאז של הקולטן לגורם גדילה אפדרמלי הכרחית להפעלת פוספוליפאז A2. / Golgberg H.G., Viegas M.M., Margolis B.L. ואח' // Biochem J. 1990.- V. 267.- P. 461-465.

149. Goldman R. מינים reactive pxigen מעורבים בהפעלה של פוספוליפאז תאי A2. / פברואר 1992. - ו' 309. - עמ' 190-192.

150. Gopalakrishna R. Ca והפעלה בלתי תלויה בפוספוליפיד של חלבון קינאז C על ידי שינוי חמצוני סלקטיבי של התחום הרגולטורי / R. Gopalakrishna, W. B. Anderson // Proc. נאטל. Acad. מדע ארה"ב. 2002.-V. 86.-P. 6758-6762.

151. גורמן א. תפקיד של פרוקסיד וסופראוקסיד אניון במהלך אפופטוזיס של תאי גידול. / Gorman A, McGowan A, Cotter TG. // מכתבי FEBS. 1997.-V. 404.-עמ'-27-33.

152. Gotoh Y. חוסר איזון חיזור המושרה על ידי ליפיד פרוקסיד מתווך באופן דיפרנציאלי את התפשטות תאי CaCo-2 ועצירת גדילה. / Gotoh Y., Noda T., Iwakiri R., et al. // פרופיל סלולרי. 2002.- ו' 35.- עמ' 221-235.

153. ירוק P.S. תפקוד לקוי של המיטוכונדריאלי הוא אינדיקטור מוקדם לאפופטוזיס המושרה על ידי דוקסורוביצין. / גרין P.S., Leeuwenburgh C. // Biochim. ביופיס. acta. 2002.-V. 1588.-עמ'. 94-101.

154Gregson N.A. ליזוליפידים ונזקי ממברנה: ליסוליציטין והאינטראקציה שלו עם מיאלין. / גרגסון נ.א. // ביוכימיה. soc. עִסקָה. - 1989.-V. 17.-P. 280-283.

155 גרינדינג ק.ק. בקרת חיזור של התפשטות שריר חלק בכלי הדם. / Griendling K.K., Ushio-Fukai M. // J. Lab. קלינ. Med.- 1998. V. 132.-P. 9-15.

156. Guehmann S. הפחתת Cys שמור חיונית לקשירת Myb DNA. / S. Guehmann, G. Vorbrueggen, F. Kalkbrenner, K. Moelling // Nucleic Acids Res. 1992. - כרך. 20. - עמ' 2279-2286.

157. Gustafson C. Hyrogen peroxide מגרה שחרור חומצה ארכידונית בתיווך פוספוליפאז A2 בתאי אפיתל מעיים מתורבתים. / Gustafson C., Lindahl M., Tagesson C. // Scand J. Gastroenterol. 1991.- ו' 26.- עמ' 237-247.

158. גיטון ק.ז. הפעלה של חלבון קינאז המופעל על ידי מיטוגן על ידי H202. תפקיד בהישרדות התא בעקבות פגיעה בחמצון. / Guyton K.Z., Liu Y., Gorospe M., et al. // J.Biol. Chem. 1996.- ו' 271.- עמ' 4138-4142.

159. חדד ג'יי. חיזור וויסות בתיווך חמצון של מסלולי איתות אפופטוזיס: תפיסה אימונו-פרמקו-חיזור של מצור חמצוני לעומת מחויבות למוות תאי. / חדד ג'יי.ג'יי. // Int. Immunopharmacol. 2004.-V.4.-P.475-493.

160. Hainaut P. Redox אפנון של קונפורמציה p53 ורצף ספציפי של קישור DNA במבחנה. / P. Hainaut, J. Milner // Cancer Res. 1993. - כרך. 53-P. 4469-4473.

161. Halliwell B. רדיקלים חופשיים, מיני חמצן תגובתיים ומחלות אנושיות: הערכה קריטית עם התייחסות מיוחדת לטרשת עורקים. / Halliwell B. // Br. J. Exp. פאתול. 1989. - כרך. 70, מס' 6. - עמ' 737-757.

162. Halliwell B. יצירת רדיקלי הידרוקסיל תלוי ביולוגי מתכת. עדכון. / B. Halliwell, J.M. Gutteridge // FTBS Lett. -1992.-כרך 307.-פ' 108-112.

163. Han M. J. שגשוג תאים המושרה על ידי מיני חמצן תגובתיים מתווכת באמצעות חלבון קינאז המופעל על ידי מיטוגן בתאי פיברובלסט ריאת אוגר סיני (V79). / Han M. J., Kim B. Y., Yoon S. O., et al. // Mol.Cells. -2003.- ו' 15. עמ' 94-101.

164. האריס ס.ר. סטרס חמצוני תורם להשפעות האנטי-התרבותיות של חומצה אצטית פלבון על תאי האנדותל. // Harris S.R., Panaro N.J., Thorgeirsson U.P. // Anticancer Res.- 2000.- V.20.-N.4.-P.2249-54

165. הפנר J.E. אסטרטגיות ריאתיות של הגנה נוגדת חמצון / הפנר J.E., Repine. J E. // Am. לְהַאִיץ. נשימה. Dis. 1989. - כרך. 140 - עמ' 531-554.

166. Hofseth L. מתח תאי המושרה על ידי תחמוצת החנקן והפעלת p53 בדלקת כרונית. / Hofseth L., Saito S., Hussain S.P., et al. //פרוק. נאטל. Acad. מדע ארה"ב. -2003, - ו' 100. עמ' 143-148.

167 Howard S. השפעות נוירו-הגנה של ביטוי יתר של bcl-2 בתרבויות ההיפוקמפוס: אינטראקציות עם מסלולים של נזק חמצוני. / Howard S., Bottino C., Brooke S. ועוד. // J Neurochem. 2002. - V.83. -עמ' 914-923.

168. Hu J. חיקוי גלוטתיון פרוקסידאז המכילים כלקוגן פעיל ב-Redox ונוגדי חמצון מעכבים הורדה הנגרמת על ידי מקדם גידול של תקשורת בין-תאית בין הפערים.

169. תאי אפיתל כבד WB-F344. / J. Hu, L. Engman, Cotgreave I. // Carcinogenesis. 1995.-V. 16. - מס' 8.-פ. 1815-1824.

170 חוסיין ס.פ. השפעה אינטראקטיבית של תחמוצת החנקן והגן מדכא הגידול p53 בקרצינוגנים והתקדמות הגידול. / Hussain S.P., Harris C.C. // FASEB J. 1997.- V. 11. - P. 443-448.

171 חוסיין ס.פ. ויסות-על המושרה על ידי p53 של MnSOD ו-GPx, אך לא קטלאז, מגביר מתח חמצוני ואפופטוזיס. / Hussain S.P., Amstad P., He P., Robles A. ועוד. // Cancer Res. 2004. - V.64. - עמ' 2350-2356.

172. Iizuka S. Assay חימונו-סורבנטי מקושר אנזים עבור סופראוקסיד דיסמוטאז המכיל מנגן אנושי ותכולתו בסרטן ריאות. / Iizuka S., Taniguchi N.and Makita A. // J. Natl. סרטן אינסט. 1984. - V. 72. - P. 1043-1099.

173. Ikebuchi Y. Superoxide אניון מגביר את ה-pH התוך תאי, שחרור סידן חופשי תוך תאי וארכידונט בתאי מי שפיר אנושיים. / Ikebuchi Y., Masumoto K., Tasaka K., Koike K. // Biol. Chem. 1991. - V. 266. -P. 13233-13237.

174. Ishii T. מנגנון לקידום צמיחה של תאי לימפומה LI210 של עכברים במבחנה על ידי שכבות הזנה או 2-מרקפטואתנול. / אישי ט., הישינומא א., בנאי ש. // תא. פיזיול. 1981. - V. 104. - עמ' 215-223.

175. Jain M.K. קינטיקה של קישור של פוספוליפאז A2 לממשקי שומנים/מים והקשר שלו להפעלה של הממשק. / Jain M.K., Rogers J., DeHaas G.H. // ביוכים. פיופיס. acta. -1988. V.940. - עמ' 51-62.

176. Jaiswal M. Nitric Oxide בקרצינוגנזה של תאי אפיתל במערכת העיכול: קישור בין דלקת לאונקוגנזה. / Jaiswal M., LaRusso N. F., Gregory J. // Am. J Physiol. מערכת העיכול. כָּבֵד. פיזיול. -2001. V. 281.- P. G626-G634.

177. ג'נסן מ.ס. תורמי תחמוצת חנקן שונים מגנים על נוירונים עובריים של אפרוחים מפני אפופטוזיס הנגרמת על ידי ציאניד. / Jensen M.S., Nyborg N., Thomsen F. // Toxicol. מדע 2000.- ו' 58.- עמ' 127-134.

178. Jessup J.M. רדיקלי חנקן וחמצן תגובתיים הנוצרים במהלך איסמיה-חזרה בכבד הורגים תאי סרטן המעי הגס עם גרורות חלשות. / Jessup J.M., Battle P., Waller H., et al. // Cancer Res. 1999.- ו' 59.- עמ' 18251829.

179. Johnson M. L. תפקידים של תחמוצת החנקן בזיהום כירורגי ואלח דם. / Johnson M. L., Timothy R. Billiar, M. D. // World J. Surg. 1998.-V.22.-P. 187-196.

180. ג'ונסון-תומפסון M.C. מחקר מתמשך לזיהוי גורמי סיכון סביבתיים בקרצינומה של השד. / Johnson-Thompson M.C., Guthrie J. // Cancer. 2000. - ו' 88.- עמ' 1224-1229.

181. ג'אקט מ.ב. תורמי תחמוצת החנקן מווסתים פריטין ומגנים על האנדותל מפני פגיעה חמצונית. / Juckett MB, Weber M, Balla J, et al. // FreeRad. ביול. Med. 1996. - V. 20. - P.63-73.

182. יונג I.D. Doxorubicin מעכב את ייצור תחמוצת החנקן על ידי תאי סרטן המעי הגס. / Jung I.D., Lee J.S., Yun S.Y. // קשת. PharmRes. -2002.-V.25.-P. 691-696.

183. Jung K. Mitochondria כמטרות תת-תאיות לאנתרציקלינים שימושיים מבחינה קלינית. / יונג ק., רשקה ר. // עו"ד. משלוח סמים לְהַאִיץ. 2001.-V.-49.-P. 87-105.

184. Jung O. Superoxide Dismutase חוץ תאי הוא גורם מכריע עיקרי לזמינות ביולוגית של תחמוצת חנקן: עדויות in vivo ו-ex vivo מעכברים חסרי ecSOD. / יונג O., Marklund S.L., Geiger H., et al. // מעגל מילון - 2003.-V. 93.-עמ' 622-699.

185. Kaiser E. Phospholipases בביולוגיה ורפואה. / Kaiser E., Chiba R., Zaku K. // Clin. Biochem. 1990.- V.23.- עמ' 349-370.

186. Khaletskiy A. גנים המווסתים בתאי סרטן שד אנושיים המבטאים יתר על המידה סופראוקסיד דיסמוטאז המכיל מנגן. / Khaletskiy A., Wang J., Wong J.Y., Oberley L.W., Li J.J., Li Z. // Free Radic. ביול. Med. 2001.-V. 30, מס' 3. - עמ' 260-267.

187. קאנר ג'יי תחמוצת החנקן כנוגד חמצון. / קאנר ג'., הראל ש., גרניט ר. // ארכיון ביוכימיה וביופיסיקה. 1991. - V. 289. - P. 130136.

188. Kanno T. מתח חמצוני עומד בבסיס המנגנון למעבר חדירות המושרה על ידי Ca(2+) של המיטוכונדריה. / Kanno T., Sato E.E., Muranaka S., ועוד. // Free Radical Res. 2004. - V.l. - עמ' 27-35.

189. Kass G. E. N. הפעלה של חלבון קינאז C על ידי קינונים במחזור חיזור / Kass G. E. N., Duddy S. K., Orrenius S. // Biochemical J. 1989. - V. 260. - P. 499-507.

190 Keen J.H. מנגנונים למספר פעילויות של הגלוטתיון-S-טרנספראז / Keen J.H., Habing W.H., Jakoby W.B. // J.Biol. Chem. - 1976.-V. 251.-p. 6183-6188.

191 Kehrer J.P. רדיקלים חופשיים כמתווכים של פגיעה ברקמות ומוות. / Kehrer J.P. // קריטי. לְהַאִיץ. טוקסיקול. -1993.- ו' 32.- עמ' 21-48.

192. קר J.F.R. אפופטוזיס: תופעה ביולוגית בסיסית עם השלכות נרחבות בקינטיקה של רקמות. / Kerr J.F.R., Wyllie A.H., Currie A.R. // בר. ג'יי סרטן. -1972.- V. 26.- P.239-257.

193. Keshavarzian A. רמות גבוהות של מטבוליטים חמצן תגובתיים ברקמת סרטן המעי הגס: ניתוח על ידי בדיקה כימילומינסנציה. / Keshavarzian A., Zapeda D., List T., Mobarhan S. // Nutr. מחלת הסרטן. 1992.- ו' 17.- עמ' 243249.

194. Khurana G. אפנון תחמוצת חנקן וחומצה ארכידונית של זרמי סידן בנוירונים פוסט-גנגליוניים של גרעיני ריסי בתרבות עופות. / Khurana G., Bennett M.R. // J. Pharmacol הבריטית. 1999.- ו' 109.- עמ' 480485.

195. קים י.מ. עיכוב סינתזת חלבון על ידי תחמוצת החנקן מתאם עם פעילות ציטוסטטית: תחמוצת החנקן משרה זרחון של גורם התחלת eIF-2 אלפא. / Kim Y.M., Son K., Hong S.J., et al. // מול. Med. 1998.- V. 3.-P. 179-190.

196.המלך ק.ל. מחזור התא ואפופטוזיס: מסלולים נפוצים לחיים ולמוות. / King K.L., Cidlowski J.A // J Cell Biol.-1995. -V.58.- עמ' 175-180.

197. קלאק ר.מ. שחרור ציטוכרום C מהמיטוכונדריה: אתר ראשוני לוויסות bcl-2 של אבופטוזיס. / Kluck R.M., Bossy-Wetzel E., Green D.R. // מדע.- 1997.- V. 275.- P. 1132-1136.

198. קולב ג'.פ. מנגנונים המעורבים בתפקיד הפרו-ואנטי-אפופטוטי של NO בלוקמיה אנושית. / קולב ג'.פ. // לוקמיה.-2000. ו' 14. - עמ' 1685-94.

199. קופנול ו.ה. פרוקסיניטריט, מחמצן עטוף שנוצר על ידי תחמוצת חנקן וסופראוקסיד. / Koppenol W.H., Moreno J.J., Pryor W.A. // Chem. מילון טוקסיקול. 1992.- V.5. - עמ' 834-842.

200. קוריסטוב יו. N., Shaposhnikova V.V., Levitman M.Kh., Kudryavtsev A.A. השפעת מעכבי חילוף החומרים של חומצה ארכידונית על שגשוג ומוות של תאי גידול. // FEBS Lett. 1998.- ו' 431.- עמ' 224-226.

201. קריסטנסן ש.ר. חשיבות רמת האנרגיה התאית לשחרור האנזים המושרה על ידי נזק ישיר לממברנה. / כריסטנסן ש.ר. // אנזים. 1990.-V. 43.-P. 33-46.

202. Kumar S. מוטיב ה-RRC השמור בכל חלבוני Ret/kappaB חיוני לפעילות קושרת ה-DNA וויסות החיזור של האונקופרוטאין v-Rel / S. Kumar, A. B. Rabson, C. Gelinas // Mol. תָא. ביול. -1992.-מס' 12.-P. 3094-3106.

203. Kurose I. תחמוצת החנקן מתווך הפחתה הנגרמת על ידי תאים של אנרגיה מיטוכונדריאלית בתאי הפטומה: השוואה לפרץ חמצוני. / Kurose I., Miura S., Fukumura D. // Cancer Res. 1993. - V. 53.-P. 2676-2682.

204. Kuross S.A. ברזל Nonheme בממברנות אריתרוציטים בודדים: קשר עם פוספוליפידים ותפקיד פוטנציאלי בחמצן שומנים. / Kuross S.A., Hebbel R.P. //דָם. 1988. - V. 72. - P. 1278-1285.

205. Larsson R. טרנסלוקציה והגברה של פעילות פוספוטרנספראז של חלבון קינאז C בעקבות חשיפה של תאי אפידרמיס עכברים לחמצון. / R. Larsson, P. Cerutti // Cancer Res. 1989. - V. 49. - P. 56275632.

206. לאו א.ת.י. מסלולי איתות מנוגדים הנגרמות על ידי ארסניט מעודדים שגשוג תאים או אפופטוזיס בתאי ריאה מתורבתים. / Lau A.T.Y., Li M., Xie. ר' ואח'. // קרצינוגנזה. 2004.- ו' 25.- עמ' 21-28.

207. לי ק.ה. אינדוקציה של אפופטוזיס בקו תאי הפטומה אנושי חסר p53 על ידי התמרה של גן p53 פראי: עיכוב על ידי נוגד חמצון. / Lee K.H., Kim K.C., Yang Y.J. etal.//Mol. תאים.-2001.-V. 12.-P. 17-24.

208. Lee J. Y. אינדוקציה של אפופטוזיס אנדותל על ידי 4-hydroxyhexenal. / Lee J. Y., Je J. H, Kim D. H. et al. // יורו. J Biochem. 2004.-V.271. -P.1339-1347.

209. Lemaire G. אפקטים ציטוסטטיים דיפרנציאליים של תורמי NO ותאים מייצרים NO. / Lemaire G., Alvarez-Pachon F.J., Beuneu C., et al. // FreeRad. ביול. Med. 1999. - V. 26. - עמ' 1274-83.

210. Lepoivre M. שינויים בפעילות ribonucleotide reductase בעקבות אינדוקציה של מסלול יצירת ניטריט בתאי אדנוקרצינומה. / Lepoivre M., Chenais B., Yapo A., et al. // ג'יי ביול. Chem. 1990.- V. 265.-P. 14143 - 14149.

211. ביטוי Leung S. Y. Phospholipase A2 group IIA באדנוקרצינומה בקיבה קשור להישרדות מורחבת וגרורות תכופות פחות. / Leung S. Y., Chen X, Chu K. M. // Proc Natl Acad Sci USA. 10 בדצמבר 2002; 99 (25): 16203-16208.

212. Li D. נזק ל-DNA חמצוני ו-8-hydroxy-2-deoxyguanosine DNA glycosylase/apurinic lyase בסרטן שד אנושי. / Li D., Zhang W., Zhu J., Chang P. // Mol. מסרטן.- 2001.- ו' 31.- עמ' 214-223.

213. Li J. Superoxide תוך תאי משרה אפופטוזיס ב- VSMCs: קוטב של פוטנציאל הממברנה המיטוכונדריה, ציטוכרום C וקספאזות. / Li J., Li P.F., Dietz R., et al. // אפופטוזיס. 2002.-V.7. - עמ' 511-517.

214. Li N. עיכוב צמיחת תאים בפיברובלסטים NIH/3t3 על ידי ביטוי יתר של מנגן סופראוקסיד מיסמוטאז: מחקרים מכאנינסטים / N. Li, T. D. Oberley, L. W. אוברלי, W. Zhong. // J. Cell Physiol. 1998. - ו' 175, מס' 3, - עמ' 359-369.

215. Li S. תפקידה של ויסות חיזור גלוטתיון פרוקסידאז תאי בדיכוי צמיחת תאי הגידול על ידי מנגן סופראוקסיד דיסמוטאז / S.1., T. Yan, J.Q. יאנג, T.D. אוברלי, ל.וו. אוברלי. // Cancer Res. 2000.-V. 60, מס' 15.-P. 3927-39.

216. Li Z. גנים מווסתים בתאי סרטן שד אנושיים המבטאים יתר על המידה סופראוקסיד דיסמוטאז המכיל מנגן / Z. Li., A. Khaletsky, J. Wang, J. Y. Wong, L. W. Oberley, J. J. Li // Free Radic. ביול. Med. -2001. V. 33, - מס' 3. -P. 260 - 267.

217. לינד ד.ס. תחמוצת החנקן תורמת להשפעה האנטי-גידולית של אדרימיצין. / Lind D.S., Kontaridis M.I., Edwards P.D. et al. // J. Surg. Res. 1997. -V.2.-P. 283-287.

218 Lissi E. Luminol זוהר המושרה על ידי 2,2-azo-bis-(2-amidinopropan) thermolisis. / Lissi E., Pascual C., Castillo M. // Free Rad. מילון קומרס.- 1992. ו' 17. - עמ' 299-311.

219. Littel C. An intracellular GSH-peroxidase with a lipid peroxide substraat / C. Littel, P.J. O "Brien // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1968. - V. 31.-P. 145-150.

220. Liu R. רדיקלים חופשיים של חמצן מתווכים את ההדגמה של יציאת גן מנגן סופראוקסיד דיסמוטאז על ידי TNF-alfa. / R. Liu, G.R. באטנר, ל.וו. אוברלי // Free Radic Biol Med. 2000. - כרך. 28, מס' 8. - עמ' 11971205.

221. לו י.י. מעורבות של מיני חמצן חוזרים בציטוקינים והשראת גורם גדילה של ביטוי c-fos בכונדרוציטים. / LoY.Y., Cruz T.F. // J.Biol. Chem. 1995.- ו' 270.- עמ' 11727-11730.

222. לו י.י. מיני חמצן חוזרים מתווכים הפעלת ציטוקינים של קינאזות c-Jun NH2-terminal. / Lo Y.Y., Wong J.M.S., Cruz T.F.// J.Biol. Chem. -1996,-V. 271.-עמ'. 15703-15707.

223. Loborek M. השפעות מתווכות חומצות שומן על מחזור חיזור הגלוטתיון בתאי אנדותל מתורבתים. / M. Loborek, M. Toborek, B. Hennig // Amer. ג'יי קלין. נוטר. 1994. -V.59, מס' 1. - P 60-65.

224. Lonardo F. התוצר הרגיל של erbB-2 הוא טירוזין קינאז דמוי קולטן אטיפיקלי עם פעילות מכוננת בהעדר ליגנד. / לונרדו

225. F., Di Marco E., King C. R. // חדש ביול. 1990.- ו' 2.- עמ' 992-1003.

226. Longoni B. ויסות ביטוי חלבון Bcl-2 במהלך עקה חמצונית בתאי עצב ואנדותל. / Longoni B., Boschi E., Demontis

227.G.C. // ביוכימיה. ביופיס. מילון Commun.- 1999.- V.260.- עמ' 522-526.

228. Loughlin K.R. השימוש במי חמצן כדי להגביר את היעילות של דוקסורוביצין הידרוכלוריד בקו תאי גידול של שלפוחית ​​השתן. / Loughlin K.R., Manson K., Cragnale D., et al. // J. Urol.- 2001.- V. 165.- P. 1300-1308.

229 לורי או.ה. מדידת חלבון עם ריאגנט Folin phenol. / Lowry O. H., Rosenbrough N. J., Farr A. L., Randall R. J. // J. Biol. Chem. -1951.-V. 193.-עמ'. 265-275.

230. לונדברג א.ס. שליטה על מחזור התא ואפופטוזיס. / לונדברג א.ס. ויינברג ר.א. // כתב העת האירופי לסרטן. 1999.-V. 35.- מס' 4.-P. 531-539.

231. Luo D. עיכוב של סינתאז תחמוצת החנקן על ידי אנתרציקלינים אנטי-נאופלסטיים. / Luo D., Vincent S.R. // ביוכימיה. פרמקול. 1994. V. 11.-P. 2111 -2112.

232. Maccarone M. תרכובות תורמות תחמוצת החנקן מעכבות פעילות lipoxygenase. / Maccarone M., Corasanti M.T., Guerreri P. // Biochem Biophys Res Commun. 1996.- V.219.- P.128.-133.

233. Malins D.C. התקדמות של סרטן שד אנושי למצב גרורתי קשורה לנזק DNA המושרה על ידי רדיקלי הידרוקסיל. / Malins D.C., Polissar N.L., Guncelman S.J. //Proc.Nat.Acad.Sci. ארה"ב.- 1996.- V.93.- P. 25572563.

234. Mannervik B. האיזואנזימים של גלוטתיון טרנספראז. / B. Mannervik // התקדמות באנזימולוגיה ותחומים קשורים בביולוגיה מולקולרית. 1985.-V. 57.-עמ' 357-417.

235. Mannick J. B. S-Nitrosylation של קספסות מיטוכונדריאליות. / Mannick J. B., Schonhoff C., PapetaN., וכו'. // J. Cell Biol.- 2001.-V. 154.- נ.6.- עמ' 1111-1116.

236. Maragos C.M. קומפלקסים של תחמוצת חנקן/נוקלאופיל מעכבים את התפשטות במבחנה של תאי מלנומה A3 75 באמצעות שחרור תחמוצת חנקן. / Maragos C. M., Wang J. M., Hraibie J. A. et al. // ביטול. מילון 1993.- ו' 53.- עמ' 564568.

237. Marietta M.A. מבנה ומנגנון סינתזה של תחמוצת החנקן. / Marietta M.A. // ג'יי ביול. Chem. -1993.- ו' 268.- עמ' 12231-12234.

238 חברים J.M. תפקידו של סוג חמצן תגובתי באפופטוזיס: ערכים לטיפול בסרטן. / Mates JM, Sanchez-Jimenez FM. // Cell Mol Biol. -2000.-V.46.-P. 199-214.

239. מתיוס נ.ע. ויסות בתיווך תחמוצת החנקן של רגישות לכימות בתאים סרטניים. / Matthews N.E., Adams M.A., Maxwell L.R. et al. // J. Natl. מכון הסרטן-2001.-V. 93.-עמ' 1879-1885.

240. מקורד ג'יי.מ. סופראוקסיד וסופראוקסיד דיסמוטאז / J.M. מק'קורד, J.A. בויל, E.D. יום, ל.ג'יי. ריזולו // אד. מיכלסון א.מ. 1977. - עמ' 128-132.

241. מקורמיק מ.ל. רמות Superoxide dismutase ו-catalase בגידולי כליה והווריאציות האוטונומיות שלהם באוגר הסורי / McCormick M.L. // קרצינוגנזה. 1991.-V. 12. - עמ' 977-983.

242 Menconi M J. חדירות יתר הנגרמת על ידי תורם תחמוצת החנקן של מונו-שכבות של אפיתל מעיים מתורבת: תפקיד של רדיקל סופראוקסיד, רדיקל הידרוקסיל ופרוקסיניטריט. / Menconi M. J., Tsuji N., Unno M., ועוד. // הלם. 1996. - V.6. - עמ' 19-24.

243. Menehini R. הומאוסטזיס של ברזל, עקה חמצונית ונזקי DNA. / Menehini R. // Free Rad. ביול. Med. 1997.- ו' 23.- עמ' 783-792.

244. ל- Meyer M. H202 ולנוגדי חמצון השפעות הפוכות על הפעלת NF-kB ו- AP-1 בתאים שלמים: AP-1 כגורם תגובה נוגד חמצון משני. / Meyer M., Schereck R., Baeuerle P.A. // EMBO J.- 1993.- V. 12.-P. 2005-2015.

245 Mignotte B. Mitichondria ואפופטוזיס. / Mignotte B., Vayssiere J-L. // יורו. J Biochem. -1998.- V.252.- P.l-15.

246. מילס ג'יי.סי. הבלבול של הממברנה האפופטוטי מווסת על ידי זרחון אור מיוזין. / Mills J.C., Stone N.I., Erhardt J., Pittman R.N. // J. Cell Biol.-1998.-V. 140.-P.627-636.

247. Min K. הטרנספורטר ABCG2 עמידות מול תרופות (חלבון עמידות לסרטן השד) מזרים את Hoechst 33342 ומתבטא יתר על המידה בתאי גזע המטופואטיים. / Min K., Turnquist H., Jackson J., et al. // מחקר סרטן קליני.-2002.-V. 8. עמ' 22-28.

248. Miura T. Adriamycin-Fe אינאקטיבציה של אנזימים בממברנות אריתרוציטים במהלך חמצון שומנים. / Miura T., Muraoka S., Ogiso T. // Res. קהילה. מולק. פאתול. פרמקול. 1995. - V. 87. - עמ' 133-143.

249. Miura Y. מחקרי תהודה פרמגנטית אלקטרון in vivo על מתח חמצוני הנגרם על ידי הקרנת רנטגן בעכברים שלמים. / Miura Y., Anzai K., Urano S., Ozawa T. // Free Radical Biology and Medicine.- 1997.- V.23. עמ' 533540.

250. Modolell M. חמצון של N-hydroxyl-L-arginine לחנקן תחמוצת המתווך על ידי נשימה נשימה: מסלול חלופי לסינתזה של NO. / Modolell M., Eichmann K., Soler G. //FRBS Let. 1997.- V. 401.- P. 123126.

251. Morcos E. תחמוצת החנקן שנוצרה באופן אנדוגני מווסת את צמיחת התאים בשורות תאי סרטן שלפוחית ​​השתן. / Morcos E., Jansson D.T., Adolfson J., et al. // אורולוגיה. 1999.- V. 53.- P. 1252-1257.

252. Moriya M. מעבורת חד-גדילית phagemid למחקרי מוטגנזה בתאי יונקים: 8-oxoguanin ב-DNA גורם להעברות ממוקדות של GC TA בתאי כליות סימיאן. / מוריה מ' // פרוק. נאטל. Acad. מדע ארה"ב.- 1993. V. 90. - עמ' 1122-1126.

253. Mozart M. Nitric Oxide משרה אפופטוזיס ב-NALM-6, קו תאי לוקמיה עם רמות נמוכות של חלבון cyclin E. / Mozart M., Scuderi R., Celsing F., Aguilar-Santelises M. // Cell Prolif. - 2001.- ו' 34.- 369-78.

254. Mueller C. זיהוי של גן חדש רגיש לחיזור, Id3, המתווך גידול תאים המושרה על ידי אנגיוטנסין II. / Mueller C., Baudler S., Welzel H., et al. // מחזור. 2002.- ו' 105.- עמ' 2423-2428.

255. המופתי ש.י. קידום מגורה של אלכוהול של גידולים במערכת העיכול. / המופתי ש.י. // גילוי סרטן. הקודם -1998.- V.22.- P.195-203.

256. Murrell G. A. C. מודולציה של ריבוי פיברובלסטים על ידי רדיקלים חופשיים של חמצן. / Murrell G. A. C., Francis M. J. O., Bromley L. // Biochem. J.-1990. ו' 265.-פ'. 659-665.

257. Musarrat J. רלוונטיות פרוגנוסטית ואטיולוגית של 8-hydroxyguanosine בקרצינוגנזה של השד האנושי./ Musarrat J., Arezina-Wilson J., Wani A.A. // אירו J. Cancer.- 1996.- V. 32A.- P. 1209-1214.

258 Musch M.W. שחרור מגורה של אנטיגן של חומצה ארכידונית, פעילות ליפוקסיגנאז ושחרור היסטמין בתאי מאסט משובטים. / Musch M.W., Siegel M.I. // ביוכימיה. ביופיס. מילון קהילה. 1985.-V. 126.-עמ' 517-525.

259. ביטוי Nakano T. Manganese superoxide dismutase מתאם עם מצב p53 והישנות מקומית של קרצינומה צוואר הרחם שטופלה בהקרנות / T. Nakano, K. Oka and N. Taniguchi // Cancer Res. 1996. - V. 56.-P. 2771-2775.

260. Nakaya N. דפוס ספציפי של זרחון p53 במהלך עצירת מחזור התא המושרה על ידי תחמוצת חנקן. / Nakaya N., Lowe S.W., Taya Y., Chenchik A., Enikolopov G. // Oncogene.- 2000.- V. 19. 6369-6375.

261. Nalbone G. Phospholipase פעילות של מיוציט חדרי הלב של חולדה בתרבית מושפעת מהטבע של חומצות שומן רב בלתי רוויות תאיות. / Nalbone G., Grynberg A., Chevalier A., ​​et al. // שומנים. 1990.- ו' 25.- עמ' 301-306.

262. Neidle S. האינטראקציה של דאונומיצין ואדריאמיצין עם חומצות גרעין. / Neidle S., Sanderson M.R. // היבטים מולקולריים של פעולת תרופות נגד סרטן. Eds. Neidle S., Warring M.J. - לונדון, - 1983.- עמ' 35-55.

263. Nindl G. השפעת מי חמצן על התפשטות, אפופטוזיס וייצור interleukin-2 של תאי Jurkat T. / Nindl G., Peterson N.R., Hughes E.F. // Biomed Sci Instrum. 2004. - V.40. - עמ' 123-128.

264 Nishiyama M. האם פעילות ציטוטוקסית של אנטרציקלינים יכולה להיות קשורה לנזק ל-DNA? / Nishiyama M., Horichi N., Mazuzi Z., et al. // תרופה נגד סרטן Des. 1990.- V.5.- N 1.- עמ' 135-139.

265. Nojima H. ​​נקודות ביקורת למחזור התא, יציבות הכרומוזומים והתקדמות הסרטן. / Nojima H.// Hum cell.-1997.-V. 10.-P.221-230.

266. Nose K. פעילויות שעתוק של גנים של תגובה מוקדמת בקו תאים אוסטאובלסטי של עכבר. / Nose K., Shibanuma M., Kikuchi K.// Eur. J Biochem. 1991.-V. 201. - עמ' 99-106.

267. Nussler K. A. דלקת, ויסות חיסוני וסינתאז תחמוצת החנקן הניתן לשרירה. / Nussler K., Billiar T. R. // J. Leukoc. ביול.-1993.~V.54.-P.171-178.

268. אוברלי, ל.ו. Superoxide Dismutase. 1982- (Oberley, L. W. ed.) -V. 2, 127 עמ'.

269. אוברלי ת.ד. לוקליזציה Immunohistcchemica של אנזימים נוגדי חמצון ברקמות אוגר סורי בוגר ובמהלך התפתחות הכליות / Oberley T.D., Oberley L.W., Slattery A.F., Lauchner L.J. ו-Elwell J.H. // Am. ג'יי פאתול. 1990. - V. 56. - עמ' 137-199.

270. אוברלי ל.ו. תפקידו של האנזים נוגד החמצון בהנצחת תאים וטרנספורמציה / Oberley L.W and Oberley T.D. // מול. תָא. Biocem. -1988.-V. 84.-P. 147-153.

271. אוברלי ת.ד. אפנון במבחנה של רמות אנזים נוגדי חמצון בכליות אוגר רגילות וגידול בכליות אוגר המושרה על ידי אסטרוגן / Oberley T.D., Schultz J.L. ואוברלי ל.וו. // רדיק חופשי. ביול. Med. 1994. - V. 16, -P. 741-751.

272. אוברלי ת.ד. ניתוח אימונוגולד של אנזימים נוגדי חמצון בקרצינומה של תאי כליה אנושיים. / Oberley T.D., Sempf J.M., Oberley M.J., McCormick M.L., Muse K.E. ואוברלי ל.וו. // ארכיון Virchows. -1994.-V. 424.-עמ'. 155-164.

273. Oberley T. רמות אנזים נוגדי חמצון כפונקציה של מצב גדילה בתרבית תאים. / Oberley T., Schuetz J., Oberley L. // Free Radical Biology and Medicine. 1995.-V. 19, מס' 1.-פ. 53-65.

274. אוברלי ל.ו. טיפול נגד סרטן על ידי ביטוי יתר של סופראוקסיד דיסמוטאז. / אוברלי ל.ו. // אות חיזור נוגד חמצון. 2001. - ו' 3. - עמ' 461-72.

275. Okada S. נזק לרקמות המושרה על ידי ברזל וסרטן: תפקידם של רדיקלים חופשיים מסוג חמצן תגובתי. / Okada S. // Patholgy Int. 1996.- ו' 46.- עמ' 311-332.

276. אורלוב ש.נ. אפופטוזיס בתאי שריר חלק של כלי הדם: תפקיד הצטמקות התאים. / Orlov S.N., Dam T.V., Tremblay J.et al. // ביוכימיה. ביופיס. מילון קהילה. 1996. ו' 221. עמ' 708-715.

277. Padmaja S. התגובה של תחמוצת חנקן עם רדיקלי פרוקסיל אורגניים. / Padmaja S, Huie RE. // ביוכימיה ביופיס. Res.Commun. 1993. - V. 195. -P. 539-544.

278. Pagnini U. מודולציה של פעילות אנתרצילין בתאי גידול חלבי כלבים במבחנה על ידי מדרוקסיפרוגסטרון אצטט. // Pagnini U, Florio S, Lombardi P, ועוד. // Res Vet Sci.- 2000.- V.69.- N.3. עמ' 255-62.

279. Pandey S. מתח חמצוני והפעלה של פרוטאזום פרוטאז במהלך אפופטוזיס הנגרמת על ידי חסך בסרום בתאי הפטומה של חולדה; עיכוב מוות של תאים על ידי מלטונין. / Pandey S., Lopez C., Jammu A. // אפופטוזיס. -2003.-V.8.-P. 497-508.

280. פארק ק.ג.מ. עדויות לגירוי צמיחת גידול אנושי על ידי חומצת האמינו L-arginine. / Park K.G.M., Heyes P.H., Blessing K., et al. // Soc. 1991.- V. 50.- P. 139A-145A.

281. פארק ק.ג.מ. L-arginine מגרה ציטוטוקסיות טבעית של לימפוציטים אנושיים. / Park K.G.M., Heyes P.H., Garlick P.J. et al. //פרוק. נוטר. soc. 1991.- V. 50.- P. 772A-776A.

282. פרקין ד.מ. סטטיסטיקת סרטן עולמית בשנת 2000. / Parkin D.M. // The Lancet Oncology. 2001. - ו' 2.- עמ' 533-543.

283. Patel R. P. הפחתת Cu(II) על ידי הידרופרוקסידים ליפידים: השלכות על חמצון תלוי-נחושת של ליפופרוטאין בצפיפות נמוכה. / Patel R. P., Svistunenko D., Wilson T., et al. // Biochem J. 1997.- V. 322.- P. 425433.

284. Pervin S. ציטוסטזיס המושרה על ידי תחמוצת החנקן ועצירת מחזור התא של קו תאי סרטן השד האנושי (MDA-MB-231): תפקיד פוטנציאלי של cyclin Dl. / Pervin S., Singh R., Chaudhuri G. // Proc. נאטל. Acad. מדע ארה"ב 2001.-V.98.-P. 3583-3588.

285. Pcivova J. השפעת תרופות חוסמות בטא-אדרנורצפטור על שחרור חומצה ארכידונית מפוספוליפידים בתאי תורן של חולדה מגורה. / Pcivova J., Drabikova K., Nosal R. // סוכן ופעולה. 1989. - ו' 27. - עמ' 29-32.

286. Pietraforte D. מסלול חמצון של אלקטרון אחד של פירוק פרוקסיניטריט בפלסמת דם אנושית: עדות להיווצרות רדיקלים במרכז טריפטופן. / Pietraforte D., Minetti M. // Biochem J.- 1997. V. 321.- P. 743-750.

287. Pignatti C. תחמוצת החנקן מתווך או התפשטות או מוות של תאים בקרדיומיוציטים. / Pignatti C., Tantini D., Stefanelli C. // חומצות אמינו. - 1999.-V. 16.-P. 181-190.

288. פלסניאק ל.א. קונפורמציה של פוספוליפיד מיסלרי הקשור לאתר הפעיל של פוספוליפאז A2. / Plesniak L.A., Yu L., Dennis E.A. // ביוכימיה. 1995 - ו' 34. - עמ' 4943-4951.

289. Polyak K. מודל לאפופטוזיס המושרה על ידי p53. / Polyak K., Xia Y., Zweier J.L., Kinzler K.W., Vogeldstein B. // Nature.- 1997.- V.389.- P. 237-238.

290. פוטר א.ג'יי. ניתוח ציטומטרי זרימה של הספציפיות של שלב מחזור התא של נזק ל-DNA הנגרם על ידי קרינה, מי חמצן ודוקסורוביצין. / Potter A.J., Gollahon K.A., Palanca B.J., et al. // קרצינוגנזה.- 2002.-V.23.- עמ' 389-401.

291. פריור ו.א. תגובות רדיקליות חופשיות בביולוגיה: התחלות של חימצון שומנים אוטומטי על ידי אוזון וחנקן דו חמצני.// Pryor W.A. // סביבה. פרספקטיבה בריאותית.- 1976.-V. 16,-P. 180-181.

292. Radi R. Peroxinitrite חמצון של sulfhydrils. / Radi R., Beckman J.S., Bush K.M. et al. // ג'יי ביול. Chem. - 1991.- V. 226. - P. 4244-4250.

293. Radomski M. K. Human Carcinoma של המעי הגס: סינתזה דיפרנציאלית של תחמוצת חנקן קובעת את יכולתם לצבור טסיות. / Radomski M. K., Jenkins D. C., Holmes L. // Cancer Res. 1991.-V.51.-P. 6073-6078.

294. ראו ד.נ. ייצור של תחמוצת חנקן ומטבוליטים אחרים המכילים ברזל במהלך המטבוליזם הרדוקטיבי של ניטרופרוסיד על ידי מיקרוזומים ועל ידי תיולים. / Rao D.N., Cederbaum A.I. // Arch Biochem Biophys. 1995.- ו' 321.- עמ' 363-371.

295. Ray L. E. בידוד וכמה מאפיינים של גלוטתיון רדוקטאז מאריתרוציטים של ארנב. / Ray L.E., Prascott J.M. //פרוק. soc. Exp. ביול. 1975.- V. 148.-P. 402-409.

296. Renooij W. אסימטריה טופולוגית של חילוף החומרים של פוספוליפידים בממברנות אריתרוציטים של חולדה. / Renooij W., Van Golde L. M. G., Zwaal R. F. A., et al. // אירו J Biochem. 1976.- ו' 61.- עמ' 53-58.

297. Rice-Evance C. אינטראקציות של רדיקלים חופשיים-שומנים והשלכותיהם הפתולוגיות. / Rice-Evance C., Burdon R. // פרוג. Lipid Res. -1993. ו' 32.- עמ' 71-110.

298. ריילי פ.א. רדיקלים חופשיים בביולוגיה: מתח חמצוני והשפעות קרינה מייננת. / ריילי פ.א. // Int. ג'יי רדיאט. ביול. 1994, V.65.- עמ' 2733.

299. Risom L. נזק ל-DNA חמצוני וביטוי גן הגנה בריאת העכבר לאחר יציאה קצרת טווח לחלקיקי פליטת דיזל בשאיפה. / Risom L., Dybdahl M., Bornholdt J. et al. // קרצינוגנזה. - 2003.-V. 24.-עמ' 1847-1852.

300. ריצו מ.ט. אינדוקציה של אפופטוזיס על ידי חומצה אראשידונית בתאי לוקמיה מיאלואידית כרונית. / Rizzo M.T., Regazzi E., Garau D., Acard L. et al. // Cancer Res. 1999.- ו' 59.- עמ' 5047-5053.

301. Robles S. J. עצירת מחזור תאים קבועה בשגשוג אסינכרוני של פיברובלסטים אנושיים נורמליים שטופלו ב- doxorubicin או etoposide אך לא בקמפטוטצין. / Robles S. J. // Biochem. פרמקול. 1999.- V.58.- עמ' 675-685.

302. ייצור Romagnani P. IP-10 ו-Mig על ידי תאים גלומרולריים בגלומרולונפריטיס שגשוג אנושי וויסות על ידי תחמוצת חנקן. // Romagnani P, Lazzeri E, Lasagni L, Mavilia C, ועוד. // ריבה. soc. Nephrol.- 2002.- V.13.- N.I.- P.53-64.

303. Rose D. השפעות של חומצות שומן ומעכבי סינתזת איקוסנואידים על הצמיחה של שורת תאי סרטן שד אנושית בתרבית. / Rose D., Connolly M. // Cancar Res. 1990.-V. 50.- עמ' 7139-7144.

304. רוסי מ.א. ניתוח של פעילות האנזים גלוטתיון בשתי הפטומות שונות של חולדות ובכבד תקין ביחס לתפקידן בעמידות ללחץ חמצוני. / Rossi M.A., Dianzani M. // Tumori. -1988.-כרך. 74.-עמ' 617-621.

305. Sacai T. Inhibition of NO synthase induction by a anti-cancer drug 4"-epi-doxorubicin in rats. / Sacai T., Muramatsu I., Hayashi N. et al.// Gen. Pharmacol. 1996. - Vol. 8. - P. 13727 - 13727.

306. Salvemini D. Nitric Oxide מפעיל אנזימים Cyclooxigenase./ Salvemini D., Misko T. P., Masferer J. L. //Proc.Natl. Acad. סיי. ארה"ב. 1993.-V.90.- עמ' 7240-7244.

307 Salvemini D. ויסות ייצור פרוסטגלנדין על ידי תחמוצת חנקן; ניתוח in vivo. / Salvemini D., Settle S.L., Masferer J.L. / British J. Pharmacol.- 1995.-Y. 114,- עמ' 1171-1178.

308. Sandler S. אסטרטגיות ניסויות חדשות למניעת התפתחות סוכרת מסוג 1. / Sandler S, Andersson AK, Barbu A, ועוד. // יו פי אס. J. Med. סיי.- 2000. V.105. - נ.2.- עמ' 17-34.

309. Sandstrom P.A. ייצור אוטוקריני של קטלאז חוץ-תאי מונע אפופטוזיס של קו תאי ה-CEM האנושי במדיום ללא cerum. / Sandstrom P.A., Buttke T.M. //Proc.Natl. Acad. סיי. ארה"ב. 1993.-V.90.-P. 4708-4712.

310. Schenk H. השפעה ברורה של thioredoxin ונוגדי חמצון על ההפעלה של גורמי שעתוק NF-kB ו-AP-1. / Schenk H., Klein M., Erdbrugger W., et al. //Proc.Natl. Acad. סיי. ארה"ב. 1994.- V 91.- עמ' 1672-1676.

311. Schreck R. תוצרי ביניים חמצן תגובתיים ככל הנראה כשליחים בשימוש נרחב בהפעלה של גורם שעתוק NF-kappa B ו-HIV-1. / Schreck R., Richer P., Baeuerle P. A. // EMBO Journal. 1991. - מס' 10.-P. 2247-2258.

312. Schuler M. Mechanisms of p53-dependent apoptosis.// Schuler M., Green D.R. // ביוכימיה. soc. טרנס.- 2001.- V.29.- P.684-688.

313 Scorrano L. חומצה ארכידונית גורמת למוות של תאים דרך מעבר החדירות המיטוכונדריאלי. / Scorrano L., Penzo D., Petronilli V., Pagano F., Bernardi P. // J. Biol. Chem.- 2001.- V. 276.- P. 1203512040.

314. Scorza G. תפקידם של אסקורבט וחלבון טיולים בשחרור תחמוצת החנקן מ-S-nitroso-albumin ו-S-nitroso-glutathione בפלזמה אנושית. / Scorza G., Pietraforte D., Minetti M. // Free Rad. ביול. Med. 1997.-V.22.-P. 633-642.

315. Sedlis S.P. השפעות של lysophosphatidylcholine על תאי לב מתורבתים: מתאם של קצב הספיגה ומידת הצטברות עם פגיעה בתאים. / Sedlis S.P., Seqeira J.M., Ahumada G.G., et al. // J. Lab. קלינ. Med. -1988.-V. 112.-עמ' 745-754.

316. Sen C.K. נוגדי חמצון וויסות חיזור של שעתוק גנים. / Sen C.K., Packer L. // FASEB J. 1996.- V. 10.- P. 709-720.

317 סריל ד.נ. לחץ חמצוני וקרצינוגנזה הקשורה לקוליטיס כיבית: מחקרים בבני אדם ובמודלים של בעלי חיים. / Seril D.N., Liao J., Yang G-Y., Yang C.S. // קרצינוגנזה.- 2003.- V.24. עמ' 353-362.

318. Sevanian A., Muakkassah-Kelley S.F., Montestruque S. The impact of phospholipase A2 and glutathione peroxidase על סילוק הפרוקסידים של שומני הממברנה // Arch. Biochem. ביופיס. -1983. ו' 223. - עמ' 441-452.

319. Shen J. Liver tumorigenicity of trimethylarsine oxide בחולדות Fischer 344 זכרים - קשר עם נזק ל-DNA חמצוני ושגשוג תאים משופר. / Shen J., Wanibuchi H., Salim E.I. et al. // קרצינוגנזה. -2003.-V. 24.-עמ' 1827-1835.

320. Shi Q. השפעת שיבוש הגן של תחמוצת החנקן סינתאז II על צמיחת הגידול וגרורות. // Shi Q, Xiong Q, Wang B, ועוד. // Cancer Res.-2000.- V. 60.-P. 2579-2583.

321. Shibanuma M. אינדוקציה של שכפול DNA וביטוי של protooncogenes c-myc ו-c-fos בתאי Balb/3T3 שקטים על ידי xanthine-xanthine oxidase. / M. Shibanuma, T. Kuroki, M. Nose // Oncogene. -1988.- V. 3.-P. 17-21.

322. Shibanuma M. גירוי על ידי מי חמצן של ביטוי גנים של משפחת סינתזת DNA וזרחון של חלבון ספציפי בתאי Balb/3T3 שקטים. / M. Shibanuma, T. Kuroki, K. Nose // Oncogene. 1990. - ו' 3. - עמ' 27-32.

323. ShinouraN. רמת הביטוי של Bcl-2 קובעת תפקוד אנטי או פרואפופטוטי. / Shinoura N., Yoshida Y., Nishimura M., Muramatsu Y., Asai A. // Cancer Res.- 1999.- V. 59.- P. 4119-4128.

324. Siegert A. תחמוצת החנקן של שורות תאי אדנוקרצינומה של המעי הגס אנושיים מקדמת פלישת תאי גידול. / Siegert A., Rosenberg C., Schmitt W.D., ועוד. //בר. J. Cancer.-2002.-V.86.-N.8. עמ' 1310-1315.

325. Sies H. // עקה חמצונית: מחמצנים ונוגדי חמצון. נ.י.: עיתונות אקדמית. 1991.- 128 עמ'.

326. Singh S. Niyric oxide, המתווך הביולוגי של העשור: עובדה או בדיה. / Singh S., Evans T.V. //Eur.Respir. י' -1997, - V.10 - עמ' 699-707.

327. Smalowski W. E. חשיפת תחמוצת החנקן מעכבת אינדוקציה של תאי רוצח המופעלים על ידי לימפוקין על ידי השראת אפופטוזיס מבשר. /

328. Smalowski W.E., Yim C.-Y., McGregor J.R. // תחמוצת החנקן: ביולוגיה וכימיה. 1998.- ו' 2.- עמ' 45-56.

329. סמית' T.R. נזק ל-DNA וסיכון לסרטן השד. / Smith T.R., Miller M.S., Lohman K.K. // קרצינוגנזה. 2003. - ו' 24. - עמ' 883-889.

330. סנו א.ת. קרצינוגנזה של מתכות: השלכות מהניסטיות. / שלג א.ת. // Pharmacol Ther. 1992.- V.53.- עמ' 31-65.

331.St. קלייר או.קיי. DNA משלים המקודד לסרטן המעי הגס מנגן סופראוקסיד דיסמוטאז וביטוי הגן שלו בתאים אנושיים. /רחוב. קלייר או.קיי. והולנד ג'יי.סי. // Cancer Res. 1991. - V. 51. - עמ' 939-943.

332. Stein C. S. מעורבות של תחמוצת החנקן בהפחתה בתיווך IFN-גמא של התפשטות תאי שריר חלקים במיקרו-כלי. / Stein C.S., Fabry Z., Murphy S., Hart M.N. // מול. אימונול. 1995.- ו' 32.- עמ' 96573.

333 Stirpe F. גירוי על ידי xanthine oxidase של פיברובלסטים שוויצרים 3T3 ולימפוציטים אנושיים. / Stirpe F., Higgins T., Tazzori P. L., Rosengurt E. // Exp. Cell Res. 1999.-V. 192.-עמ' 635-638.

334. Sun Y. רדיקלים חופשיים, אנזימים נוגדי חמצון וקרצינוגנזה. / Y. Sun // Free Radic. ביול. Med. 1990. - ו' 8, - עמ' 583-599.

335. Sun Y. הוריד אנזימים נוגדי חמצון בתאי כבד עכברים עובריים שעברו טרנספורמציה ספונטנית בתרבית. / Sun Y., Oberley L.W., Elwell J.H. ו-Sierra-Rivera E. // קרצינוגנזה. 1993. - V. 14. - P. 1457-1463.

336. Takei Y. עדויות למעורבות של cyclooxygenase-2 בשגשוג של שני קווי תאים סרטניים במערכת העיכול. / Takei Y., Kobayashi I., Nagano K., et al. // פרוסטגלנד. לוקוטריאנס ואסנט. חומצות שומן. 1996.-V.55.-P. 179-183.

337. Terwel D. S-nitroso-N-acetylpenicillamine ו-nitroprusside מעוררים אפופטוזיס בשורת תאים נוירונים על ידי ייצור של מולקולות תגובתיות שונות. / Terwel D, Nieland LJ, Schutte B, ועוד. // יורו. J. Pharmacol.-2000.-V. 14.-עמ' 19-33.

338. Tham D.M. ביטוי מוגבר של גלוטציה פרוקסידאז חוץ תאית בעכברים עם קוליטיס ניסיוני הנגרמת על ידי דקסטרן נתרן סולפט. / Tham D.M., Whitin J.C., Cohen HJ. // רופא ילדים מילון 2002. - ו' 5. - עמ' 641-646.

339. Thannickal V.J. רגולציה תלויה ובלתי תלויה של מיני חמצן חוזרים על ידי גורמי גדילה מיטוגניים ו-TGF-(31. / Thannickal V.J. // FASEB J.- 2000.- V.14.- P. 1741-1748.

340. תומאס ו.ג'יי. תפקידם של רדיקלים חופשיים שמקורם בחמצן וחנקן אוקסיד באנטי-פרוליפרציה הנגרמת על ידי ציטוקינים של תאי סרטן הלבלב. / Thomas W.J., Thomas D.L., Knezetic J.A., ועוד. // נוירופרמקולוגיה.-2002.- V.-42.-N.2.-P.262-269.

341. Tormos C. תפקידו של גלוטתיון בהשראת אפופטוזיס ו-c-fos ו-c-jun mRNAs על ידי מתח חמצוני בתאי גידול / Tormos C., Javier Chaves F., Garcia M.J., ועוד. // Cancer Lett. 2004. - V.208.- P.103-113.

342. Tsudji S. עדות למעורבות של cyclooxygenase-2 בשגשוג של שתי שורות תאים סרטניים במערכת העיכול. / Tsudji S., Kawano S., Sawaoka

343. H., Takei Y. I I Prostagland. Leukotriens an Essent. חומצות שומן. 1996.-V.55.-P. 179-183.

344. אום ה.ד. פאס מתווך אפופטוזיס במונוציטים אנושיים על ידי מסלול תלות ביניים בחמצן תגובתי. / Um H.D., Orenstein J.M., Wahl S.M. // J. Immunol. 1996.- V.156.- עמ' 3469-34-77.

345. Umansky V. תאי אנדותל פעילים מעוררים אפופטוזיס בתאי לימפומה: תפקיד של תחמוצת החנקן. / Umansky V., Bucur M., Schirrmacher V., et al. /int. J. Oncol. 1997.- ו' 10.- עמ' 465-471.

346. Van der Woude C.J. דלקת כרונית, אפופטוזיס ונגעים טרום ממאירים במערכת העיכול. / Van der Woude C.J., Kleibeuker J.H., Jansen P.L., Moshage H. // Apoptosis.- 2004.- V.9.- P. 123-130.

347. Vaskovsky V.E. מגיב אוניברסלי לניתוח פוספוליפידים. / Vaskovsky V.E., Kostetsky E., Vasendin I.A. // J. Chromatography/-1975. -V. 115.-P.129-142.

348. Vaskovsky V.E. ריאגנט שונה של Junguikkel לגילוי פוספוליפידים ותרכובות זרחניות אחרות על כרומטוגרמות של שכבה דקה. / Vaskovsky V.E., Latyshev N. // J. Chromatography/-1975.-V. 115.-P. 246-249.

349. Vetrovsky P. מנגנון אפשרי של ייצור תחמוצת חנקן מ-N-hydroxy-L-arginine או hydroxylamine על ידי יון סופראוקסיד. / Vetrovsky P., Stoclet J., Entlicher G. // Int.J. Biochem. תָא. ביול. 1996.- V28.- עמ' 1311-1318.

350. Wang H. כימות מתח חמצוני תאי על ידי בדיקת dichlorofluorescein באמצעות קורא microplate. / Wang H., Joseph J. A. // Free Rad. ביול. מד.- 1999. V.27.- עמ' 612-616.

351. Wasylyk C. המרה אונקוגנית של Ets משפיעה על ויסות חיזור in vivo ו-in vitro. / Wasylyk C., Wasylyk B. // Nucleic Acids Res. 1993. כרך. 21.-עמ' 523-529.

352. וינברג ר.א. גנים מדכאי גידול. / ויינברג ר.א. // מדע.-1991.-V.254.-P. 1138-1146.

353. Weinstein D. M. Cadiac peroxinitrite והפרעה בתפקוד החדר השמאלי בעקבות טיפול דוקסורוביצין בעכברים. / Weinstein D.M., Mihm M.J., Bauer J.A. // J Pharmacol Exp. טר. 2000.- ו' 294.- עמ' 396401.

354. וויטין ג'יי.סי. גלוטציה פרוקסידאז חוץ-תאית מופרש בזולטרלית על ידי תאי אבוביות פרוקסימליות של הכליה האנושיות. / Whitin J.C., Bhamre S., Tham D.M., Cohen H. J. // Am. J. Renal. פיזיול. 2002.- V. 283,- P. F20 - F28.

355. ווילסון ר.ל. רדיקלים חופשיים פרוקסי אורגניים כסוכנים אולטימטיביים לרעילות חמצן. / ווילסון ר.ל. // מתח חמצוני. L., Acad. ללחוץ. - 1985.- עמ' 41-72.

356. וינטר מ.ל. תכולת קרבוניל המושרה על ידי רדיקלים חופשיים בחלבון של אוגרים שטופלו באסטרוגן שנבדקה על ידי הפחתת סודיום בורו(3H) הידריד / Winter M.L. וליהר ג'יי.ג. // ג'יי ביול. Chem. 1991. - V. 66, No. 2. - P. 14446-14450.

357. Xu Q. הגנה סלולרית מפני אפופטוזיס המושרה על ידי H202 באמצעות מסלול MAP kinase-MKP-1. / Xu Q., Konta T., Nakayama K. ועוד. // רדיק חופשי. ביול. Med. 2004. - V.36. - עמ' 985-993.

358. Xu W. תחמוצת החנקן מגבירה את הביטוי של DNA-PKcs כדי להגן על תאים מפני חומרים אנטי-גידוליים הפוגעים ב-DNA. / Xu W., Liu L., Smith G.C., Charles L.G. //נאט. תָא. ביול. 2000.- V.2.- N.6.- P.339-345.

359. Yamamoto S. קידום גידול ומפל חומצה ארכידונית. / Yamamoto S. // Nippon Yakurigaku Zasshi.- 1993.-V. 101.-נ.6.- עמ' 34961.

360. Yamamoto T. תורמי תחמוצת החנקן. / Yamamoto T., Bing R.J. //פרוק. soc. Exp. ביול. Med. 2000.- ו' 225.- עמ' 1-10.

361. Yang J.Q. איתות מיטוגניים v-Ha-ras באמצעות סופראוקסיד ומיני חמצן תגובתיים נגזרים. / Yang JQ, Buettner GR, Domann FE, Li Q,

362. Engelhardt JF, Weydert CD, Oberley LW. 11 Anticancer Res.- 2001.- V. 21.-P. 3949-56.

363. יאנג א.ה. אפנון במבחנה של אנזימים נוגדי חמצון באפיתל כליות תקין וממאיר. / א.ה. יאנג, T.D. אוברלי, ל.וו. אוברלי, S.M. שמיד, ק.ב. קאמינגס. // In Vitro Cell Dev. ביול. 1987 - V. 23, No. 8.-P. 546-558.

364. Yang F. מודולציה של תחמוצת החנקן עוררה אפופטוזיס על ידי היעד p53 במורד הזרם p21 (WAF1/CIP1). / Yang F., Knethen A., Brune B. // J. Leukoc. ביול. -2000. -V.69. - עמ' 916-922.

365. Yu B. P. הגנות סלולריות מפני נזק ממיני חמצן תגובתיים. / B. P. Yu. // פיזיול. סקירה. 1994. - ו' 74, מס' 1. - עמ' 139-162.

366 Zhang R. Thioredoxin-2 Inhibits Mitochondria-Located ASK 1-Mediated Apoptosis in JNK-Independent Manner. / Zhang R., Al-Lamki R., Bai L. ועוד. // Circ Res. 2004. - V.94 - עמ' 1483 - 1491.

367. ג'אנג X.M. תאי מלנומה גרורתיים בורחים ממעקב חיסוני באמצעות המנגנון החדש של שחרור תחמוצת חנקן כדי לגרום לתפקוד לקוי של אימונוציטים. / X.M. Zhang, Q. Xu // Eur. J. Surg. - 2001, - V.167. - N. 7, - P. 484-489.

שימו לב שהטקסטים המדעיים שהוצגו לעיל מפורסמים לסקירה ומתקבלים באמצעות זיהוי טקסט של מסה מקורית (OCR). בהקשר זה, הם עשויים להכיל שגיאות הקשורות לחוסר השלמות של אלגוריתמי זיהוי. אין שגיאות כאלה בקובצי ה-PDF של עבודת גמר ותקצירים שאנו מספקים.


ויסות אנדוקריני, פאראקריני ואוטוקריני. בדרך כלל, תאים מתחלקים אך ורק בהשפעת גורמים שונים של הסביבה הפנימית של הגוף (וחיצונית - ביחס לתא). זהו ההבדל הבסיסי שלהם מתאי טרנספורמציה שמתחלקים בהשפעת גירויים אנדוגניים. ישנם שני סוגים של ויסות פיזיולוגי - אנדוקרינית ופאראקרינית. הוויסות האנדוקריני מתבצע על ידי איברים מיוחדים (בלוטות אנדוקריניות), כולל בלוטת יותרת המוח, בלוטות יותרת הכליה, בלוטת התריס, הפרתירואיד, הלבלב ובלוטות המין. הם מפרישים את תוצרי פעילותם לדם ויש להם השפעה כללית על הגוף כולו.
ויסות פרקריני מאופיין בכך שבאותה רקמה תאים שכנים פועלים זה על זה באמצעות חומרים פעילים מופרשים ומפוזרים. ממריצים מיטוגניים אלו (גורמי גדילה של פוליפפטיד) כוללים גורם גדילה אפידרמיס, גורם גדילת טסיות דם, אינטרלוקין-2 (גורם גדילה של תאי T), גורם גדילה עצבי ועוד רבים אחרים.
ויסות אוטוקריני, האופייני לתאי גידול, שונה מוויסות פאראקריני בכך שאותו תא הוא גם מקור לגורם גדילה וגם מטרתו. התוצאה היא "עירור" מיטוגני מתמשך, המקיים את עצמו, של התא, המוביל לרבייה בלתי מווסתת. במקרה זה, התא אינו זקוק לגירויים מיטוגניים חיצוניים והופך לאוטונומי לחלוטין.
העברת אותות מיטוגנית היא תהליך רב-שלבי. בהתאם לסוג התא ולגירוי המיטוגני הספציפי, מתממש אחד ממסלולי האיתות הרבים. מה שנקרא מפל קינאז MAP מתואר להלן כ"אב טיפוס".
גורמי גדילה (מווסת התפשטות) מופרשים על ידי תאים מסוימים ופועלים באופן פרקריני על אחרים. אלו סנאים קטנים. שרשרת הפוליפפטיד של EGF (גורם גדילה אפידרמיס) מורכבת, למשל, מ-53 חומצות אמינו. ישנן מספר משפחות של גורמי גדילה, שנציג של כל אחד מהם מאוחד על ידי קווי דמיון מבניים ותפקודיים. חלקם מעוררים שגשוג (למשל, EGF ו-PDGF, גורם גדילה שמקורו בטסיות, גורם גדילה שמקורו בטסיות), בעוד שאחרים (TGF-p, TNF, אינטרפרונים) מדכאים אותו.
רצפטורים ממוקמים על פני התא. לכל תא יש רפרטואר קולטנים משלו, ובהתאם, סט תגובות מיוחד משלו. משפחה חשובה מאוד מבחינה תפקודית נוצרת על ידי מה שנקרא קולטני טירוזין קינאז (TKR), שיש להם פעילות אנזימטית (חלבון קינאז). הם מורכבים ממספר תחומים (בלוקים מבניים ותפקודיים): חוץ-תאיים (באינטראקציה עם ליגנד - במקרה זה, עם גורם גדילה), טרנסממברנה ותת-ממברנה, עם פעילות חלבון קינאז של טירוזין. בהתאם למבנה, TCRs מחולקים למספר תת מחלקות.
עם קשירה לגורמי גדילה (למשל, EGF), מולקולות הקולטן מתמזגות, התחומים התוך-תאיים שלהן מתכנסים ומעוררים אוטופוספורילציה בין-מולקולרית של טירוזין. העברת האות הטרנסממברנית הזו היא תחילתו של גל "עירור", אשר לאחר מכן מתפשט בצורה של מפל של תגובות זרחן לתוך התא ובסופו של דבר מגיע למנגנון הכרומוזום של הגרעין. ל-TCRs יש פעילות של טירוזין קינאז, אך ככל שהאות עובר לתוך התא, סוג הזרחון משתנה לסרין/תראונין.
חלבוני ראס. אחד החשובים שבהם הוא מסלול האיתות הכולל חלבוני Ras (זו תת-משפחה של מה שנקרא חלבוני G היוצרים קומפלקסים עם נוקלאוטידים גואניל; Ras-GTP הוא הצורה הפעילה, Ras-GDP אינו פעיל). מסלול זה, אחד המרכזיים בוויסות חלוקת התאים באאוקריוטים גבוהים יותר, שמור עד כדי כך שמרכיביו יכולים להחליף את ההומולוגיות המקבילות בתאי תסיסנית, שמרים ונמטודות. הוא מתווך אותות סביבתיים רבים ונראה שהוא מתפקד בכל תא בגוף. ראס ממלא תפקיד של מעין קרוסלת שדרכו כמעט כל האותות הנכנסים לתא חייב לעבור. תפקידו הקריטי של חלבון זה בוויסות חלוקת התאים ידוע מאז אמצע שנות ה-80, אז נמצאה הצורה המופעלת של הגן המקביל (Ras oncogene) בגידולים אנושיים רבים. הפעלת אונקוגנים (אונקוגנים הם גנים הגורמים לחלוקת תאים בלתי מווסתת) היא אחד האירועים העיקריים של קרצינוגנזה. מדובר בפגיעה כזו בגן תקין המעורב בוויסות רביית התאים (פרוטו-אונקוגן - גן תאי תקין שיכול לגרום לצמיחת גידול אם המבנה שלו מופרע), מה שגורם לו לפעול באופן קבוע (פעיל) ובכך לגרום לחלוקת תאים רציפה (לא מווסתת) באותה מידה. מכיוון שגנים תאיים רבים (פרוטו-אונקוגנים) מעורבים בוויסות רביית התאים, שפגיעה בהם עשויה לגרום לצמיחת גידול, אזי, בהתאם, ישנם אונקוגנים רבים (כמה עשרות ואולי מאות).
במצב ספציפי של מסלול האיתות בתיווך Ras (לדוגמה, במהלך האינטראקציה של EGF עם הקולטן), הדימריזציה של האחרון מובילה לאוטפוספורילציה של אחד משאריות הטירוזין בתחום התת-ממברני שלו. כתוצאה מכך, מתאפשרת הרכבה עצמית ("גיוס" לקומפלקס) של מספר חלבונים הממוקמים במורד הזרם במסלול האיתות (Grb2 adapter protein, Sos1 protein). קומפלקס מולטי חלבון זה ממוקם בממברנת הפלזמה.
מפל קינאז של MAP. קינאזות MAP (מינזות חלבון משופעלות מיטוגן) הן קינאזות חלבון סרין/תרונין המופעלות כתוצאה מגירוי תאים מיטוגני. מפל הקנאז נוצר כתוצאה מהפעלה רציפה של אנזים אחד על ידי אחר, העומד "גבוה יותר" במסלול האיתות. כתוצאה מהגירוי של חלבון Ras ויצירת הקומפלקס התת-ממברני, גוברת הפעילות של שני קינאזות סרין/תרונין MAP ציטופלזמיות (הידועות גם כ-ERK1 ו-ERK2, חלבון קינאזות חלבון חוץ-תאי מווסתות אותות 1 ו-2), העוברות מהציטופלזמה לגרעין התא, שם הם מווסתים את גורמי המפתח של הטרנסקריפט של החלבון.
הפעלת תמלול. קבוצת גנים הקובעת את כניסת התא לשלב ה-S מופעלת על ידי גורם השעתוק AP-1, קומפלקס של חלבוני Jun ו-Fos (הגנים המקודדים להם, c-Jun ו-c-Fos, הם בין הפרוטו-אונקוגנים; c - מהתא, מציין את מקורם התאי, בניגוד לאונקוגנים הנגיפיים v-F-Juos). גורמי שעתוק אלו יכולים לקיים אינטראקציה זה עם זה כדי ליצור הומו- והטרודימרים רבים הנקשרים לאזורי DNA מסוימים ומעוררים סינתזת RNA על הגנים הסמוכים לאזורים אלו. קינאז MAP מגבירים את פעילות AP-1 בשתי דרכים:
מתווך, מפעיל את הגנים המקודדים את גורמי התעתוק הללו, ובכך מגדיל את תוכנם בתא;
זרחון ישיר של שאריות הסרין והתרונין הכלולים בהרכבם.
כתוצאה מהפעלת גנים מיוצרים החלבונים הדרושים לסינתזת ה-DNA והמיטוזה שלאחר מכן. חלק מהחלבונים החדשים שנוצרו (Fos, Jun, Myc), הידועים כחלבוני תגובה מוקדמת מיידית (חלבונים מוקדמים), מבצעים פונקציות רגולטוריות; נקשרים לאזורים ספציפיים של DNA, הם מפעילים גנים סמוכים. קבוצה נוספת מורכבת מאנזימים כגון thymidine kinase, ribonucleotide reductase, dihydrofolate reductase, thymidylate synthase, ornithine decarboxylase, DNA polymerases, topoisomerases, ואנזימים הקשורים ישירות לסינתזת DNA. בנוסף, סינתזת החלבון הכוללת משופרת, מכיוון שכל המבנים התאיים משוכפלים עם כל מחזור הכפלה.
יישום האות המיטוגני. התוצאה של העברת האות המיטוגני היא יישום תוכנית מורכבת של חלוקת תאים.
מחזור התא. תאים יכולים להיות באחד משלושה מצבים - במחזור החלוקה, בשלב המנוחה עם אפשרות חזרה למחזור, ולבסוף, בשלב ההתמיינות הסופית, בו אובדת לחלוטין יכולת ההתחלקות. רק אותם תאים ששמרו על יכולת ההתחלקות יכולים ליצור גידולים.
מחזור השכפול של תאים אנושיים שונים משתנה בין 18 שעות (תאי מח עצם) ל-450 שעות (תאי קריפטה המעי הגס), בממוצע - 24 שעות. מיטוזה (M) וסינתזה של DNA (שלב S), שביניהם מבחינים ב-2 תקופות ביניים (פער) - G1 ו-G2; במהלך interphase (התקופה שבין שתי חלוקות), התא גדל ומתכונן למיטוזה. במהלך התקופה של שלב G1, יש רגע (מה שנקרא נקודת הגבלה R) שבו נעשית בחירה בין כניסה למחזור החלוקה הבא או מעבר לשלב המנוחה G0. כניסת תא למחזור החלוקה היא תהליך הסתברותי הנקבע על ידי שילוב של מספר תנאים (פנימיים וחיצוניים); עם זאת, לאחר ביצוע הבחירה, השלבים הבאים מבוצעים באופן אוטומטי. למרות שתא עלול להיחסם בשלב זה או אחר של מחזור החלוקה, בדרך כלל זה עשוי להיות תוצאה של כמה נסיבות מיוחדות.
חשובים במיוחד במחזור הם הרגעים שבהם התא נכנס לשלב סינתזת ה-DNA (גבול שלב G/S) ולמיטוזה (גבול שלב G2/M), בהם יש "נקודות ביקורת" (מחסומים) מיוחדות הבודקות את שלמות ה-DNA (מוכנותו לשכפול) במקרה הראשון, ואת השלמת השכפול במקרה השני. תאים עם DNA פגום או לא משוכפל נחסמים בגבול השלבים המקבילים, מה שמונע את האפשרות להעביר פגמים במבנה שלו לצאצאים בצורה של מוטציות, מחיקות והפרעות אחרות. מערכת מעקב כלשהי, שככל הנראה קיימת בתא, גורמת למערכת תיקון ה-DNA, שלאחריה התא יכול להמשיך לנוע במחזור. אלטרנטיבה לתיקון היא אפופטוזיס, שמבטלת באופן קיצוני את הסיכון להופעת שיבוט של תאים פגומים (פוטנציאליים גידוליים) בגוף. הבחירה הספציפית תלויה בתנאים רבים, כולל המאפיינים האישיים של התא.
תהליך שכפול ה-DNA מורכב וארוך (אורך מספר שעות), שכן יש לשכפל בדיוק את כל החומר הגנטי של התא. אם מתרחשות בו חריגות כלשהן, התא נחסם בדרך למיטוזה (בגבול שלב G2/M) ויכול גם לעבור אפופטוזיס. בקושי ניתן להעריך יתר על המידה את הערך המגן של המחסומים, שכן הפגמים התפקודיים שלהם מביאים בסופו של דבר הן להתמרת גידול של התא והן להתקדמות של גידול שכבר נוצר.
תגובות מחזוריות. ישנן שתי משפחות של חלבונים ש"מניעים" את מחזור התא - ציקלין(susHp)-תלויי serine/threonine protein kinases (Cdk, cyclin-dependent kinases) והציקלין עצמם. ציקלינים מווסתים את פעילות Cdk ובכך את יכולתם לשנות מבני מטרה המעורבים ישירות במטמורפוזות מחזוריות. עם השתתפותם, מבוצעים שלבים חשובים כל כך של המחזור כמו פירוק הממברנה הגרעינית, עיבוי כרומטין, היווצרות ציר ועוד מספר אחרים. Cdk פעילים רק בשילוב עם אחד מהציקלינים. בהקשר זה, ההרכבה וההפעלה של קומפלקסים רבים של Cdkcyclin, כמו גם הדיסוציאציה שלהם, הם רגעי המפתח של מחזור התא.
כפי שמרמז שמם, ציקלינים מסונתזים ומתכלים בנקודות מוגדרות בהחלט במחזור, השונות עבור ציקלינים שונים. ישנם שלושה מחלקות עיקריות שלהם: נייציקלינים, הנחוצים למעבר GyS, S-cyclins - למעבר של שלב ה-S, ו-G2 (או מיטוטי) - ציקלינים לכניסה למיטוזה. לתאי יונקים יש גם כמה משפחות Cdk המעורבות בהשפעות רגולטוריות שונות. הסרה של ציקלין כזה או אחר מהסביבה התוך תאית אך ורק ברגע מסוים חשובה לא פחות מהמראה שלו (סילוק הציקלינים מהסביבה התוך תאית מושגת הן על ידי הפירוק שלהם והן על ידי חסימת הסינתזה), למשל, במיטוזה (בגבול של מטא-ואנפאזה), כתוצאה מפרוטאוליזה מהירה, אחת מהגרדית; אם זה לא קורה, לא ניתן להשלים מיטוזה וחלוקת תאי הבת לא מתרחשת.
התקדמות בשלב S דורשת הפעלה של קינאזות Cdk2, Cdk4 ו-Cdk6, אשר מקיימות אינטראקציה עם ציקלינים בשלב vL (בפרט, עם cyclin D). הקומפלקס של Cdc2 עם הציקלין הראשון משלב ה-IL משרה שעתוק של הגן של הציקלין הבא וכו', מרחיק את התאים לאורך המחזור. Cdc2-cyclin D מוחלף בתחילה ב-Cdc2-cyclin E, שבתורו, מוחלף ב-Cdc2-cyclin A, המפעיל את מנגנון סינתזת ה-DNA. כאשר התא נכנס לשלב S, הציקלינים μL מתכלים ומופיעים שוב רק בשלב G1 של המחזור הבא.
מחסומים (מחסומים - אנגלית). כל גורם לחץ (למשל חוסר בחומרים מזינים, היפוקסיה, במיוחד נזק ל-DNA) חוסם את מחזור התנועה באחת משתי המחסומים שהוזכרו לעיל. במהלך כיבויים אלה, מופעלים מנגנוני פיקוח שיכולים:
לזהות נזק ל-DNA;
לשדר אות מצוקה שחוסם סינתזת DNA או
מיטוזה;
להפעיל מנגנוני תיקון DNA.
זה מבטיח את יציבות הגנום. כפי שהוזכר לעיל, מנגנון הבקרה של G/S חוסם את שכפול הדנ"א ומפעיל תהליכי תיקון (או גורם לאפופטוזיס), בעוד שמנגנון הבקרה של G2/M מעכב מיטוזה עד להשלמת השכפול. פגמים במנגנונים אלו עלולים להוביל לתאי בת עם גנום פגום.
מנגנון המחסום כולל קומפלקסים של Cdk-cyclin ומספר חלבונים נוספים - Rb, p53 ואחרים. השילוב שלהם יוצר מערכת של "בלמים" שאינם מאפשרים לתא להתחלק בהיעדר גירויים נאותים. הגנים המקודדים לחלבונים אלה נקראים גנים מדכאים. המשמעות המיוחדת של מערכת זו טמונה בעובדה שהתמרה סרטנית של תא מתאפשרת רק לאחר השבתתו. בתא סומטי, ישנם שני אללים של כל אחד מהגנים, כולל גנים מדכאים, ולכן נדרשים שני אירועים בלתי תלויים להשבתתם (לדוגמה, מחיקה של אלל אחד ומוטציה של אחר). מסיבה זו גידולים "ספורדיים" מופיעים לעתים רחוקות יחסית (ההסתברות למספר מוטציות עצמאיות שיתרחשו בתא אחד, ומשפיעות על אותו מיקום של שני הכרומוזומים, נמוכה יחסית), וגידולים "משפחתיים" שכיחים ביותר (במשפחות "סרטן", אחד משני האללים העוברים בתורשה של גן מדכא כזה או אחר פגום בתחילה). במקרה האחרון, מערכת ה"בלמים" בכל התאים של אורגניזם נתון מסופקת על ידי אלל תקין אחד בלבד, מה שמפחית בחדות את מהימנותו ומגביר את הסיכון לגידול. זה בדיוק מה שקורה ברטינובלסטומה תורשתית (מחיקה של אלל Rb אחד) ותסמונות תורשתיות אחרות (מחיקה או פגיעה באלל p53 אחד או גנים מדכאים אחרים).
בתאים עם חלבון מדכא p53 פגום או חסר, מחסום GyS פגום. הדבר בא לידי ביטוי בכך שנזק ל-DNA המושרה מקרינה מייננת או בכל דרך אחרת אינו מוביל לשימור תאים בגבול הפאזה G 1/S, וגם לא לקפופטוזה. כתוצאה מכך מצטברים באוכלוסייה תאים בעלי הפרעות מרובות במבנה ה-DNA; אי יציבות הגנום מופיעה ומתגברת עם הזמן, מה שתורם להופעתם של שיבוטים חדשים של תאים. הברירה הטבעית שלהם היא הבסיס להתקדמות הגידול - ה"סחיפה" המתמדת של הגידול לאוטונומיה וממאירות יותר ויותר.
אפופטוזיס (או מוות תאי מתוכנת) היא תופעה ביולוגית נרחבת של "התאבדות" של תאים, אשר נגרמת על ידי מגוון גירויים חיצוניים או על ידי קונפליקטים "פנימיים" בלתי פתירים (לדוגמה, חוסר היכולת לתקן נזקי DNA). תפקידה של אפופטוזיס גדול לא רק בתהליכי היווצרות במהלך העובר (היווצרות של איברים, החלפת רקמות מסוימות באחרות, ספיגת איברים זמניים וכו'), אלא גם בשמירה על הומאוסטזיס רקמות באורגניזם בוגר.
בוויסות הומאוסטזיס של רקמות, מוות תאים מבצע פונקציה משלימה למיטוזה. בתאי גידול, תוכנית המוות של התאים נחסמת ברוב המקרים, מה שתורם תרומה משמעותית לעלייה במסת הגידול.
מנגנונים של אפופטוזיס. חשיבות מהותית היא העובדה שמנגנוני האפופטוזיס הם שמרניים ביותר ושומרים על הדפוסים הבסיסיים שלהם באורגניזמים מרוחקים מאוד במונחים אבולוציוניים. נסיבות אלו אפשרו לזהות גנים ביונקים (במיוחד בבני אדם) ההומולוגיים לגנים של אפופטוזיס בנמטודה, אורגניזם בו התגלתה ונחקרה לראשונה המערכת הגנטית השולטת בתהליך זה.
כתוצאה מכך זוהו גנים ממשפחת Bcl-2 ביונקים. תפקידו של Bcl-2 עצמו וחלק מההומולוגים שלו הוא אנטי-אפופטוטי (מונע מוות של תאים), בעוד שבני משפחה אחרים, כגון Bax, הם פרו-אפופטוטיים. חלבוני Bax ו-Vs1-2 מסוגלים להיווצר מורכבים אחד עם השני. בהתאם לתכולה התוך-תאית היחסית של חלבונים פרו ואנטי-אפופטוטיים, גורלו של תא נתון נחרץ. מנגנון הפעולה של חלבונים ממשפחת Bcl-2 אינו ברור לחלוטין.
יש חשיבות תפקודית רבה למנגנון האפופטוזיס המושרה באמצעות קולטנים ספציפיים CD95 (חלבון קולטן טרנסממברנלי של 45 kDa שכאשר נקשר לליגנד או נוגדנים ספציפיים, מעביר אות לאפופטוזיס) ו-TNF-R (קולטן לגורם נמק של גידול, קולטן לגורם נמק של גידול). קולטנים אלה, המאוחדים על ידי הדמיון של תחומים תאיים, הם חלק ממשפחה גדולה. ליגנדים (מולקולות המקיימות אינטראקציה ספציפית עם קולטני TNF-R ו-CD95) הם TNF ו-CD95-L, בהתאמה, שהם חלבונים טרנסממברניים, אך יכולים לתפקד גם בצורה מסיסה, "חופשית". מעניין במיוחד מנקודת מבט אונקולוגית, TNF הוא ציטוקין המיוצר על ידי תאים רבים (מקרופאגים, מונוציטים, תאים לימפואידים, פיברובלסטים) בתגובה לדלקת, זיהום וגורמי לחץ אחרים. זה גורם למגוון רחב של תגובות הפוכות לפעמים, כולל חום, הלם, נמק גידול, אנורקסיה; כמו גם שינויים אימונו-רגולטוריים, רביית תאים, התמיינות ואפופטוזיס. במקרה זה, אפופטוזיס מתבצע בהשתתפות ציסטאין פרוטאז ICE ספציפי, אשר הורס חלבוני יעד תוך תאיים רבים. ביטוי יתר של ICE בתא גורם לאפופטוזיס. size=5 face="Times New Roman">

וו. פלמינג ניסח את מושג המיטוזה כתהליך מחזורי, ששיאו הוא פיצול כל כרומוזום לשני כרומוזומי בת והפצתם על פני שני תאים שזה עתה נוצרו. באורגניזמים חד-תאיים, תוחלת החיים של התא עולה בקנה אחד עם תוחלת החיים של האורגניזם. באורגניזם של בעלי חיים וצמחים רב-תאיים, נבדלות שתי קבוצות של תאים: מתחלקים כל הזמן (מתרבים) ומנוחים (סטטיים). מערך התאים המתרבים יוצר מאגר שגשוג.

בקבוצות של תאים מתרבים, המרווח בין השלמת המיטוזה בתא האב לבין השלמת המיטוזה בתא הבת שלו נקרא מחזור התא. מחזור התא נשלט על ידי גנים מסוימים. מחזור התא השלם כולל אינטרפאזה ומיטוזה. בתורו, מיטוזה עצמה כוללת קריוקינזיס (ביקוע גרעין) וציטוקינזיס (חלוקת ציטופלזמה).

מחזור התא מורכב מאינטרפאזה (תקופה מחוץ לחלוקה) ומחלוקת התא עצמה.

אם התא מתכוון להתחלק אי פעם, אז האינטרפאזה יורכב מ-3 תקופות. מיד לאחר עזיבת המיטוזה, התא נכנס לתקופה הפרה-סינתטית או G1, ואז עובר לתקופה הסינתטית או S, ולאחר מכן לתקופה הפוסט-סינתטית או G2. תקופת G2 מסיימת את האינטרפאזה ואחריה התא נכנס למיטוזה הבאה.

אם התא אינו מתכנן להתחלק שוב, אז הוא סוג של יוצא ממחזור התא ונכנס לתקופה רדומה, או תקופת G0. אם תא בתקופת G0 רוצה להתחלק שוב, אז הוא יוצא מתקופת G0 ונכנס לתקופת G1. לפיכך, אם תא נמצא בתקופת G1, אז הוא בהחלט יתחלק במוקדם או במאוחר, שלא לדבר על תקופות S ו-G2, כאשר התא יכנס למיטוזה בעתיד הקרוב.

תקופת ה-G1 יכולה להימשך בין 2-4 שעות למספר שבועות או אפילו חודשים. משך תקופת ה-S נע בין 6 ל-8 שעות, ותקופת ה-G2 - בין מספר שעות לחצי שעה. משך המיטוזה הוא בין 40 ל-90 דקות. יתר על כן, השלב הקצר ביותר של מיטוזה יכול להיחשב אנפאזה. זה לוקח רק כמה דקות.

תקופת ה-G1 מאופיינת בפעילות סינתטית גבוהה, במהלכה על התא להגדיל את נפחו לגודל תא האם, ומכאן למספר האברונים והחומרים השונים. לא ברור למה, אבל התא לפני הכניסה למיטוזה הבאה חייב להיות בגודל השווה לתא האם. ועד שזה יקרה, התא ממשיך להישאר בתקופת G1. ככל הנראה, החריג היחיד לכך הוא המחשוף, שבו הבלסטומרים מתחלקים מבלי להגיע לגודל התאים המקוריים.

בתום תקופת G1 נהוג להבחין במומנט מיוחד הנקרא נקודת R (נקודת הגבלה, נקודת R), שלאחריו התא נכנס בהכרח לתקופת S למשך מספר שעות (בדרך כלל 1–2). פרק הזמן שבין נקודת R לתחילת תקופת S יכול להיחשב כתקופת הכנה למעבר לתקופת S.

התהליך החשוב ביותר שמתרחש בתקופת S הוא הכפלה או שכפול של DNA. כל שאר התגובות המתרחשות בזמן זה מכוונות להבטיח סינתזת DNA - סינתזה של חלבוני היסטון, סינתזה של אנזימים המווסתים ומבטיחים סינתזה של נוקלאוטידים ויצירת גדילי DNA חדשים.

המהות של תקופת ה-G2 אינה ברורה לחלוטין כיום, אולם במהלך תקופה זו מתרחשת היווצרות של חומרים הנחוצים לתהליך המיטוזה עצמו (חלבונים של microtubules ציר ביקוע, ATP).

המעבר של התא בכל תקופות מחזור התא נשלט בקפדנות על ידי מולקולות רגולטוריות מיוחדות המספקות:

1) מעבר התא דרך תקופה מסוימת של מחזור התא
2) מעבר מתקופה אחת לאחרת.

יתרה מכך, המעבר בכל תקופה, כמו גם המעבר מתקופה אחת לאחרת, נשלט על ידי חומרים שונים. אחד המשתתפים במערכת הרגולטורית הם חלבונים תלויי ציקלין (cdc). הם מווסתים את פעילות הגנים האחראים למעבר התא לאורך תקופה מסוימת של מחזור התא. ישנם מספר זנים שלהם, וכולם נמצאים כל הזמן בתא, ללא קשר לתקופת מחזור התא. עם זאת, קינאזות חלבון תלויות ציקלין דורשות מפעילים מיוחדים כדי לתפקד. הם ציקלינים. ציקלינים לא תמיד נמצאים בתאים, אבל הם מופיעים ונעלמים. זה נובע מהסינתזה וההרס המהיר שלהם. סוגים רבים של ציקלין ידועים. הסינתזה של כל ציקלין מתרחשת בתקופה מוגדרת בהחלט של מחזור התא. בתקופה אחת נוצרים כמה ציקלינים, ובאחרת אחרים. כך, המערכת "ציקלינים - חלבונים תלויי ציקלין קינאזות" שולטת בתנועת התא דרך מחזור התא.

ויסות מחזור התא

שלוש קבוצות של תאים נבדלות על פי פוטנציאל ההתרבות שלהן:

1. תאים סטטיים או לא מתרבים - אין להתרבות בתנאים פיזיולוגיים רגילים. הכרומטין מתעבה עד כדי כך שפעילות התעתיק של הגרעין (לוקוציטים מפולחים, תאי פיטום, אריתרוציטים) נשללת. תאים סטטיים כוללים גם מיוציטים ונוירונים, שבהם הכרומטין מתעבה, אשר קשור לביצוע פונקציות ספציפיות על ידם בהעדר שגשוג.

2. תאים שגדלים או מתרבים באיטיות עם פעילות מיטוטית נמוכה (לימפוציטים, כונדרוציטים, הפטוציטים).

3. חידוש אוכלוסיות תאים בהן רמה גבוהה של שגשוג מפצה על ידי מוות תאים. באוכלוסיות אלו, עיקר התאים עובר התמיינות סופית (סופית) ומתים (המערכת ההמטופואטית). תאי גזע שומרים על פוטנציאל ההתרבות שלהם לאורך כל חייהם.

קבוצה מיוחדת של תאים המתרבים ללא הרף הם תאים סרטניים. אלו הם תאים צעירים לנצח, מונצחים ("אלמוות").

יש ויסות אנדוגני (פנימי) ואקסוגני (חיצוני) של ריבוי. גורמים המעכבים התפשטות נקראים מעכבי התפשטות. גורמים המגבירים את הסבירות להתפשטות נקראים מקדמי התפשטות, או מיטוגנים. מיטוגנים יכולים להיות פפטידים מסוימים.

מחזור התא הוא תקופת חייו של התא מחלוקה אחת לאחרת, או מחלוקה למוות. מחזור התא מורכב מאינטרפאזה (תקופה מחוץ לחלוקה) ומחלוקת התא עצמה.

בתום תקופת G1 נהוג להבחין במומנט מיוחד הנקרא נקודת R (נקודת הגבלה, נקודת R), שלאחריו התא נכנס בהכרח לתקופת S תוך מספר שעות (בדרך כלל 1–2). פרק הזמן בין נקודת ה-R לתחילת תקופת ה-S יכול להיחשב כהכנה למעבר לתקופת S.

התהליך החשוב ביותר שמתרחש בתקופת S הוא הכפלה או שכפול של DNA. כל שאר התגובות המתרחשות בזמן זה בתא מכוונות להבטיח סינתזת DNA. תהליכי עזר כאלה כוללים סינתזה של חלבוני היסטון, סינתזה של אנזימים המווסתים ומבטיחים סינתזה של נוקלאוטידים ויצירת גדילי DNA חדשים.

המעבר של התא בכל תקופות מחזור התא נשלט בקפדנות. כאשר תאים נעים במחזור התא, מופיעות ונעלמות בתוכם מולקולות מווסתות מיוחדות, מופעלות ומעכבות, המספקות: 1) מעבר התא דרך תקופה מסוימת של מחזור התא ו-2 מעבר מתקופה אחת לאחרת. יתרה מכך, המעבר בכל תקופה, כמו גם המעבר מתקופה אחת לאחרת, נשלט על ידי חומרים שונים. כעת ננסה לברר מהם החומרים הללו ומה הם עושים.

המצב הכללי נראה כך. התא מכיל כל הזמן חלבוני אנזים מיוחדים, שבאמצעות זרחון של חלבונים אחרים (על ידי שיירי סרין, טירוזין או ת'רונין בשרשרת הפוליפפטיד), מווסתים את פעילות הגנים האחראים למעבר התא לאורך תקופה מסוימת של מחזור התא. חלבוני האנזים הללו נקראים חלבון קינאזות תלויות ציקלין (cdc). יש כמה סוגים שלהם, אבל לכולם יש תכונות דומות. למרות שמספרם של קינאזות חלבון תלויות ציקלין הללו עשוי להשתנות בתקופות שונות של מחזור התא, הן נוכחות בתא ללא הרף, ללא קשר לתקופת מחזור התא, כלומר, הן נוכחות בעודף. במילים אחרות, הסינתזה או הכמות שלהם אינם מגבילים או מווסתים את מעבר התאים במחזור התא. עם זאת, בפתולוגיה, אם הסינתזה שלהם נפגעת, מספרם מופחת, או שיש צורות מוטציות עם תכונות משתנות, אז זה, כמובן, יכול להשפיע על מהלך מחזור התא.

מדוע קינאזות חלבון תלויות ציקלין כאלה בעצמן אינן מסוגלות לווסת את מעבר התאים בתקופות של מחזור התא. מסתבר שהם נמצאים בתאים במצב לא פעיל, וכדי שיופעלו ויתחילו לעבוד יש צורך במפעילים מיוחדים. הם ציקלינים. ישנם גם סוגים רבים ושונים שלהם, אבל הם לא תמיד נמצאים בתאים: הם מופיעים ונעלמים. בשלבים שונים של מחזור התא נוצרים ציקלינים שונים, אשר על ידי קשירה ל-Cdk יוצרים קומפלקסים שונים של Cdk-ציקלין. קומפלקסים אלו מווסתים שלבים שונים של מחזור התא ולכן נקראים G1-, G1/S-, S- ו-M-Cdk (איור מהאיורים שלי cyclins). לדוגמה, המעבר של תא דרך תקופת G1 של מחזור התא מסופק על ידי קומפלקס של חלבון קינאז-2 (cdk2) ו-cyclin D1 תלוי-ציקלין, חלבון קינאז-5 תלוי-ציקלין (cdk5) ו-cyclin D3. המעבר דרך נקודת הגבלה מיוחדת (R-point) של תקופת G1 שולטת בקומפלקס של cdc2 ו-cyclin C. המעבר של התא מתקופת G1 של מחזור התא לתקופת S נשלט על ידי הקומפלקס של cdk2 ו-cyclin E. המעבר של התא מתקופת S לתקופת G2 מצריך את קומפלקס cdk2 ו-cyclin-B, תלוי ב-cyclin-A proteinc. המעבר של התא מתקופת G2 למיטוזה (תקופת M). Cyclin H בשילוב עם cdk7 נדרש לצורך זרחון והפעלה של cdc2 בקומפלקס עם cyclin B.


ציקלינים הם סוג חדש של חלבונים שהתגלו על ידי טים האנט, הממלאים תפקיד מפתח בשליטה בחלוקת התא. השם "ציקלינים" הופיע בשל העובדה שריכוז החלבונים ממעמד זה משתנה מעת לעת בהתאם לשלבי מחזור התא (לדוגמה, הוא נופל לפני תחילת חלוקת התא).

הציקלין הראשון התגלה על ידי האנט בתחילת שנות ה-80 תוך כדי ניסוי בביצי צפרדע וקיפוד ים. מאוחר יותר, ציקלין נמצאו ביצורים חיים אחרים.

התברר שהחלבונים הללו השתנו מעט במהלך האבולוציה, כמו גם מנגנון השליטה במחזור התא, שהגיע מתאי שמרים פשוטים לבני אדם בצורה "שימורים".

טימותי האנט (R. Timothy Hunt), יחד עם עמית האנגלי פול מ. Nurse והאמריקאי לילנד ה. הארטוול, קיבלו את פרס נובל לפיזיולוגיה או רפואה בשנת 2001 על גילוי המנגנונים הגנטיים והמולקולריים של ויסות מחזור התא, תהליך החיוני לצמיחה, התפתחות ועצם קיומם של יצורים חיים

נקודות ביקורת למחזור התא

1. נקודת היציאה משלב G1, הנקראת Start - ביונקים ונקודת ההגבלה בשמרים. לאחר מעבר דרך נקודת ההגבלה R בסוף G1, הופעתה של S הופכת לבלתי הפיכה, כלומר. תהליכים המובילים לחלוקת התא הבאה יוצאים לדרך.
2. נקודה S - בדיקת דיוק השכפול.

3. מעבר נקודה G2/M - אימות השלמת שכפול.
4. מעבר ממטאפאזה לאנפאזה של מיטוזה.

תקנת שכפול

לפני תחילת השכפול Sc, קומפלקס ORC (תסביך זיהוי מקור) יושב על ori, מקור השכפול. Cdc6 קיים לאורך כל מחזור התא, אך ריכוזו עולה בתחילת ה-G1, שם הוא נקשר לקומפלקס ה-ORC, שאליו מצטרפים חלבוני Mcm ליצירת הקומפלקס הפרה-רפליקטיבי (pre-RC). לאחר הרכבה קדם-RC, התא מוכן לשכפול.

כדי להתחיל שכפול, S-Cdk נקשר לחלבון קינאז (?), אשר מזרחן טרום-RC. יחד עם זאת, Cdc6 מתנתק מ-ORC לאחר תחילת השכפול וזרחן, ולאחר מכן הוא עובר בכל מקום על ידי SCF ומתכלה. שינויים בטרום-RC מונעים הפעלה מחדש של שכפול. S-Cdk גם מזרחן כמה מתחמי חלבון Mcm, מה שגורם לייצוא שלהם מהגרעין. דה-פוספורילציה לאחר מכן של חלבונים יתחיל מחדש את תהליך היווצרות טרום-RC.

Cyclins הם מפעילי Cdk. ציקלינים, כמו גם Cdks, מעורבים בתהליכים שונים מלבד בקרת מחזור התא. ציקלינים מחולקים ל-4 מחלקות בהתאם לזמן הפעולה במחזור התא: ציקלינים G1 / S, S, M ו-G1.
ציקלינים G1/S (Cln1 ו-Cln2 ב-S. cerevisiae, cyclin E בבעלי חוליות) מגיעים לשיא בשלב ה-G1 המאוחר ונופלים בשלב ה-S.

קומפלקס G1/S cyclin-Cdk מפעיל את התחלת שכפול הדנ"א על ​​ידי כיבוי מערכות שונות המעכבות Cdk של שלב S בשלב G1. ציקלינים G1/S גם יוזמים שכפול צנטרוזום בבעלי חוליות ויצירת גוף ציר בשמרים. הירידה ברמות G1/S מלווה בעלייה בריכוז ה-S cyclins (Clb5, Clb6 ב-Sc ו-cyclin A בבעלי חוליות), היוצר את קומפלקס S cyclin-Cdk, הממריץ ישירות את שכפול ה-DNA. רמת ה-S cyclin נשארת גבוהה לאורך שלבי S, G2 והתחלת המיטוזה, שם היא מסייעת בהתחלת המיטוזה בחלק מהתאים.

M-cyclins (Clb1,2,3 ו-4 ב-Sc, cyclin B בבעלי חוליות) מופיעים אחרונים. ריכוזו עולה כאשר התא נכנס למיטוזה ומגיע למקסימום במטאפאזה. קומפלקס M-cyclin-Cdk כולל הרכבת ציר ויישור כרומטידים אחות. הרס שלו באנפאזה מוביל ליציאה ממיטוזה וציטוקינזיס. ציקלינים G1 (Cln3 ב-Sc ו-cyclin D בבעלי חוליות) עוזרים בתיאום צמיחת תאים עם כניסה למחזור תאים חדש. הם יוצאי דופן מכיוון שהריכוז שלהם אינו משתנה עם שלב מחזור התא, אלא משתנה בתגובה לאותות ויסות צמיחה חיצוניים.

מוות תאים מתוכנת

בשנת 1972, Kerr et al. פרסם מאמר בו המחברים הציגו עדויות מורפולוגיות לקיומו של חומר שאינו נמק סוג מיוחדמוות של תאים, שהם כינו "אפופטוזיס". המחברים דיווחו על כך שינויים מבנייםתאים עוברים שני שלבים במהלך אפופטוזיס:

1 - היווצרות של גופים אפופטוטיים,

2 - phagocytosis שלהם והרס על ידי תאים אחרים.

הסיבות למוות, התהליכים של הטבע המורפולוגי והביוכימי של התפתחות מוות תאי יכולים להיות שונים. עם זאת, ניתן לחלק אותם בבירור לשתי קטגוריות:

1. נמק (מהיוונית פקרוזיס - נמק) ו

2. אפופטוזיס (מהשורשים היווניים, כלומר "נפילה" או "התפוררות"), המכונה לעתים קרובות מוות תאי מתוכנת (PCD) או אפילו התאבדות תאים (איור 354).


שני מסלולים של מוות תאים

א – אפופטוזיס (מוות תאי מובהק): / – התכווצות ספציפית של התא ועיבוי כרומטין, 2 – פיצול של הגרעין, 3 – פיצול גוף התא למספר גופים אפופטוטיים; ב - נמק: / - נפיחות של התא, רכיבים ואקואולרים, עיבוי כרומטין (קריורקסיס), 2 - נפיחות נוספת של אברוני הממברנה, תמוגה של כרומטין גרעיני (קריוליזה), 3 - קרע של מרכיבי הממברנה של התא - תמוגה של התא

N. היא הצורה הלא ספציפית השכיחה ביותר של מוות תאי. זה יכול להיגרם מפגיעה קשה בתא כתוצאה מטראומה ישירה, קרינה, חשיפה לחומרים רעילים עקב היפוקסיה, תמוגה של תאים בתיווך משלים וכו'.

התהליך הנמק עובר מספר שלבים:

1) פרנקרוזיס - בדומה לשינויים נמקיים, אך הפיכים;

2) נקרוביוזיס - שינויים דיסטרופיים בלתי הפיכים, המאופיינים בדומיננטיות של תגובות קטבוליות על פני אנבוליות;

3) מוות של תאים שקשה לקבוע את מועד תחילתו;

4) אוטוליזה - פירוק של מצע מת בפעולת אנזימים הידרוליטים של תאים מתים ומקרופאגים. במונחים מורפולוגיים, נמק שווה ערך לאוטוליזה.

למרות ריבוי העבודות, אין הגדרה מוסכמת ומדויקת למושג "אפופטוזיס".

אלופטוזיס מאופיינת בדרך כלל כצורה מיוחדת של מוות תאי, השונה מנמק מבחינת תכונות מורפולוגיות, ביוכימיות, גנטיות מולקולריות ואחרות.

א' הוא מוות תאי הנגרם על ידי אותות פנימיים או חיצוניים, אשר כשלעצמם אינם רעילים או הרסניים. א' הוא תהליך פעיל הדורש אנרגיה, שעתוק גנים וסינתזת חלבון דנובו.

נמצאו מספר לא מבוטל של חומרים הגורמים לאפופטוזיס של תאים אלה, בנוסף לקרינה וגלוקוקורטיקואידים:

יונופורים Ca2+

אדנוזין

AMP מחזורי

טריבוטילטין

היפרתרמיה

המחקר של הקינטיקה של פירוק DNA בתאים לימפואידים in vivo ו-in vitro הראה:

הסימנים המובהקים הראשונים של ריקבון מופיעים, ככלל, יותר משעה לאחר החשיפה, לעתים קרובות יותר עד סוף השעה השנייה.

פיצול פנימי נמשך מספר שעות ומסתיים בעיקר ב-6, לעתים רחוקות יותר 12 שעות לאחר החשיפה.

מיד לאחר תחילת הפירוק, הניתוח מגלה מספר רב של שברי DNA קטנים, והיחס בין שברים גדולים לקטנים אינו משתנה באופן משמעותי במהלך האפופטוזיס.

השימוש במעכבי סינתזת ATP, חלבון ותעתוק גנים מאט את תהליך האפופטוזיס. אין תלות כזו במקרה של נ.

כפי שניתן לראות מהשוואת ההגדרות של נמק ואפופטוזיס, ישנם גם קווי דמיון וגם הבדלים משמעותיים בין שני סוגי המוות של התא.

מאפיין נֶמֶק

אפופטוזיס

מבחינה פונקציונלית סיום בלתי הפיך של חייה;
מבחינה מורפולוגית הפרה של שלמות הממברנות, שינויים בגרעין (pyknosis, rhexis, lysis), ציטופלזמה (בצקת), הרס תאים; אובדן של מיקרוווילי ומגעים בין-תאיים, עיבוי של כרומטין וציטופלזמה, ירידה בנפח התא (התכווצות), היווצרות שלפוחיות מממברנת הפלזמה, פיצול תאים ויצירת גופים אפופטוטיים;
מבחינה ביוכימית הפרה של ייצור אנרגיה, קרישה, מחשוף הידרוליטי של חלבונים, חומצות גרעין, שומנים; הידרוליזה של חלבונים ציטופלזמיים ופירוק DNA בין-נוקלאוזומלי;
מבחינה גנטית - אובדן מידע גנטי; ובשיאו באוטוליזה או הטרוליזה שלו עם תגובה דלקתית. סידור מחדש מבני ותפקודי של המנגנון הגנטי ושיאו בספיגתו על ידי מקרופאגים ו(או) תאים אחרים ללא תגובה דלקתית.

מוות תאי מווסת על ידי אינטראקציות בין-תאיות בדרכים שונות. תאים רבים באורגניזם רב תאי זקוקים לאותות על מנת להישאר בחיים. בהיעדר אותות או גורמים טרופיים כאלה, התאים מפתחים תוכנית של "התאבדות" או מוות מתוכנת. למשל, תאי תרבית נוירונים מתים בהיעדר גורם גדילה עצבי (NGF), תאי הערמונית מתים בהיעדר אנדרוגנים באשכים, תאי שד מתים כאשר רמת ההורמון פרוגסטרון יורדת וכו'. במקביל, תאים יכולים לקבל אותות המעוררים תהליכים בתאי מטרה המובילים למוות באפופטוזיס. לפיכך, הידרוקורטיזון גורם למוות של לימפוציטים, וגלוטמט גורם למוות של תאי עצב בתרבית רקמה, גורם נמק של גידול (TNF) גורם למוות של מגוון תאים. תירוקסין (הורמון בלוטת התריס) גורם לאפופטוזיס של תאי זנב ראשן. בנוסף, ישנם מצבים שבהם מוות תאים אפופטוטי נגרם על ידי גורמים חיצוניים, כמו קרינה.

המושג "אפופטוזיס" הוצג במחקר של מוות של כמה תאי כבד עם קשירה לא מלאה של וריד השער. במקרה זה, נצפית תמונה מוזרה של מוות תאים, המשפיעה רק על תאים בודדים בפרנכימה הכבד.

התהליך מתחיל בעובדה שתאים שכנים מאבדים מגע, נראה שהם מתכווצים (השם המקורי של צורת מוות זו הוא shrinkagenecrosis - נמק על ידי דחיסה של תאים), עיבוי ספציפי של כרומטין מתרחש בגרעינים לאורך הפריפריה שלהם, ואז הגרעין מפוצל לחלקים נפרדים, ולאחר מכן התא מתפצל לפלסמה נפרדת על ידי פיצול עצמו ies.

אפופטוזיס הוא תהליך שמוביל לא לתמוגה, לא לפירוק התא, אלא לפירוק שלו, להתפוררות. גורלם של גופים אפופטוטיים הוא גם יוצא דופן: הם עוברים פגוציטים על ידי מקרופאגים או אפילו תאים שכנים נורמליים. במקרה זה, תגובה דלקתית אינה מתפתחת.

חשוב לציין שבכל המקרים של אפופטוזיס, בין אם במהלך התפתחות עוברית, באורגניזם בוגר, ברגיל או תהליכים פתולוגיים- המורפולוגיה של תהליך מוות התא דומה מאוד. זה עשוי להצביע על המשותף של תהליכי אפופטוזיס באורגניזמים שונים ובאיברים שונים.

מחקרים על עצמים שונים הראו כי אפופטוזיס היא תוצאה של יישום מוות תאי מתוכנת גנטית. העדות הראשונה לנוכחות של תוכנית גנטית למוות תאי (PCD) הושגה על ידי לימוד התפתחות הנמטודה Caenorhabditiselegans. תולעת זו מתפתחת תוך שלושה ימים בלבד, וגודלה הקטן מאפשר להתחקות אחר גורלם של כל תאיה, החל מהשלבים המוקדמים של המחשוף ועד לאורגניזם הבוגר מינית.

התברר שבמהלך התפתחות Caenorhabditiselegans נוצרים רק 1090 תאים, מתוכם חלק מתאי עצב בכמות של 131 חלקים מתים מאליהם באפופטוזיס ונשארים 959 תאים בגוף. נמצאו מוטנטים שבהם הופר תהליך חיסול של 131 תאים. זוהו שני גנים ced-3 ו-ced-4, שתוצריהם גורמים לאפופטוזיס ב-131 תאים. אם גנים אלה נעדרים או משתנים ב-Caenorhabditiselegans מוטנטי, אז אפופטוזיס אינו מתרחש והאורגניזם הבוגר מורכב מ-1090 תאים. נמצא גם גן נוסף, ced-9, שהוא מדכא אפופטוזיס: כאשר ced-9 עובר מוטציה, כל 1090 התאים מתים. אנלוגי לגן זה נמצא בבני אדם: הגן bcl-2 הוא גם מדכא אפופטוזיס בתאים שונים. התברר שלשני החלבונים המקודדים על ידי גנים אלו, Ced-9 ו-Bc1-2, יש תחום טרנסממברני אחד והם ממוקמים בקרום החיצוני של המיטוכונדריה, הגרעינים והרשת האנדופלזמית.

מערכת פיתוח האפופטוזיס התבררה כדומה מאוד בנמטודות ובעלי חוליות; היא מורכבת משלושה קישורים: מווסת, מתאם ואפקטור. ב-Caenorhabditiselegans, המווסת הוא Ced-9, החוסם את חלבון המתאם Ced-4, שבתורו אינו מפעיל את חלבון האפקטור Ced-3, פרוטאז הפועל על חלבונים ציטושלדיים וגרעיניים (טבלה 16).


כרטיסייה. 16. התפתחות של מוות תאי מתוכנת (אפופטוזיס)

סימן ──┤ - עיכוב התהליך, סימן ─→ - גירוי התהליך

אצל בעלי חוליות, מערכת PCD מורכבת יותר. כאן, המווסת הוא חלבון Bc1–2, המעכב את חלבון המתאם Apaf-1, הממריץ את מפל ההפעלה של פרוטאינזים מיוחדים, קספסות.

אנזימים - משתתפים בתהליך האפופטוזיס

לכן,

לאחר שהתחיל בתא, השפלה כזו ממשיכה במהירות "עד הסוף";

לא כל התאים נכנסים לאפופטוזיס בבת אחת או בפרק זמן קצר, אלא בהדרגה;

הפסקות DNA מתרחשות לאורך DNA מקשר (בין-נוקלאוזומלי);

השפלה מתבצעת על ידי אנדו-, אך לא אקסונוקליזות, ואנדונוקליזות אלה מופעלות או מקבלות גישה ל- DNA לא כתוצאה מאינטראקציה ישירה עם סוכן המעורר אפופטוזיס, אלא בעקיפין, מכיוון שזמן לא מבוטל, ולכן מתגבר על ידי מגע של תאים עם תאים כזו עם התנגדות כזו של התאים של התאים. ואכן, אם השפלה הייתה מופעלת על ידי אינטראקציה ישירה של אנדונוקלאזים או כרומטין עם סוכן, אז, למשל, במקרה של פעולת קרינה מייננת, אפופטוזיס היה מתרחש במהירות ובו-זמנית כמעט בכל התאים.

בהתבסס על מסקנות אלו, פענוח המנגנון המולקולרי של התפתחות אפופטוזיס "התמקד" בזיהוי של אנדונוקלאזים המבצעים פרגמנטציה של DNA והמנגנונים המפעילים אנדונוקלאזים.

אנדונוקליזות

1. הפירוק מתבצע על ידי DNase I. התהליך מופעל על ידי Ca2+ ו-Mg2+ ומעוכב על ידי Zn2+.

עם זאת, ישנן עובדות המעידות על מעורבותו של DNase I בתהליך פיצול ה-DNA. לפיכך, ידוע כי אנזים זה נעדר בגרעין, אולם טענה זו אינה בעלת משקל רב, שכן הגודל הקטן יחסית של המולקולות שלו, 31 kDa, במקרה של הפרה של חדירות הממברנה הגרעינית, הופך את השתתפותו של DNase I בפירוק ה-DNA ממשית למדי. דבר נוסף הוא שבמהלך עיבוד במבחנה של כרומטין, DNase I גורם לשברים לא רק בחלק המקשר, אלא גם ב-DNA נוקלאוזומלי.

2. אנדונוקלאז נוסף הנחשב כאנזים פירוק ה-DNA העיקרי הוא אנדונוקלאז II [Barry 1993]. נוקלאז זה, בעת עיבוד גרעינים וכרומטין, מבצע פיצול DNA בין-נוקליזומלי. למרות העובדה שפעילותו אינה תלויה ביוני מתכת דו ערכיים, שאלת המעורבות של אנדונוקלאז II בפירוק ה-DNA עדיין לא נפתרה, שכן האנזים לא נמצא רק בליזוזומים, אלא גם משתחרר מגרעיני התא.

3. אנדונוקלאז במשקל מולקולרי של 18 kDa. אנזים זה בודד מגרעיני התימוציטים של חולדה שמתו באפופטוזיס [Gaido, 1991]. זה נעדר בתימוציטים רגילים. פעילות האנזים מתבטאת בסביבה ניטרלית ותלויה ב-Ca2+ ו-Mg2+.

4. γ-נוקלאז במשקל מולקולרי של 31 kDa, בעל תלות "קלאסית" ביוני Ca, Mg ו-Zn. פעילותו של אנזים זה גדלה בגרעיני התימוציטים של חולדות שטופלו בגלוקוקורטיקואידים.

5. אנדונוקליאז במשקל מולקולרי של 22.7 kDa אנזים שפעילותו מתבטאת בגרעינים של תימוציטים של חולדה רק לאחר פעולת הגלוקוקורטיקואידים ומדוכאת על ידי אותם מעכבים כמו פירוק DNA בין-נוקלאוזומלי.

קספסות הן ציסטאין פרוטאזות המבקעות חלבונים בחומצה אספרטית. בתא, caspases מסונתזים בצורה של מבשרים סמויים, procaspases. יש קספסות יוזמות ומשפיעות. התחלת קספסות מפעילה צורות סמויות של קספסות אפקטוריות. יותר מ-60 חלבונים שונים משמשים כמצעים לפעולת קספסים מופעלים. זהו, למשל, הקינאז של מבני הדבקה מוקדיים, שהשבתתם מובילה להפרדה של תאים אפופטוטיים משכניהם; אלה הם lamins, אשר מפורקים תחת פעולת caspases; מדובר בחלבונים ציטושלדיים (חוטים ביניים, אקטין, ג'סלין), שהשבתתם מביאה לשינוי בצורת התא ולהופעת בועות על פניו, המולידות גופים אפופטוטיים; זהו פרוטאז CAD משופעל שמבקע DNA למקטעים נוקלאוזומליים של אוליגונוקלאוטידים; אלו הם אנזימים לתיקון DNA, שדיכוים מונע את שחזור מבנה ה-DNA, ועוד רבים אחרים.

דוגמה אחת להתגלגלות של תגובה אפופטוטית תהיה התגובה של תא להיעדר אות מגורם טרופי נדרש, כגון גורם גדילה עצבי (NGF), או אנדרוגן.

בציטופלזמה של תאים בנוכחות גורמים טרופיים, משתתף נוסף בתגובה, חלבון Bad הפוספוריל, נמצא בצורה לא פעילה. בהיעדר גורם טרופי, חלבון זה עובר דה-פוספורילציה ונקשר לחלבון Bc1-2 על גבי הממברנה החיצונית של המיטוכונדריה, ובכך מעכב את תכונותיו האנטי-אפופטוטיות. לאחר מכן, החלבון הפרופופטוטי הממברנה Bax מופעל, ופותח את הדרך ליונים לחדור למיטוכונדריה. במקביל, ציטוכרום c יוצא מהמיטוכונדריה דרך הנקבוביות שנוצרות בממברנה לתוך הציטופלזמה, הנקשרת לחלבון המתאם Apaf-1, אשר בתורו מפעיל פרו-קספאז 9. קספאז מופעל 9 מעורר מפל של פרו-קספסות אחרות, כולל קספס 3, שמתחיל להתערבב חלבונים, חלבונים, וכו'. מוות תאים אפופטוטי של, התפרקותו לחתיכות, לגופים אפופטוטיים.

גופים אפופטוטיים, המוקפים בממברנת הפלזמה של התא ההרוס, מושכים מקרופאגים בודדים, הבולעים אותם ומעכלים אותם עם הליזוזומים שלהם. מקרופאגים אינם מגיבים לתאים נורמליים סמוכים, אלא מזהים תאים אפופטוטיים. זה נובע מהעובדה שבמהלך האפופטוזיס, האסימטריה של קרום הפלזמה מופרעת ו-phosphatidylserine, פוספוליפיד טעון שלילי, מופיע על פני השטח שלו, הממוקם בדרך כלל בחלק הציטוזולי של קרום הפלזמה הביליפידית. לפיכך, על ידי פגוציטוזיס סלקטיבי, רקמות מתנקות, כביכול, מתאי אפופטוטיים מתים.

כפי שהוזכר לעיל, אפופטוזיס יכולה להיגרם ממספר גורמים חיצוניים, כגון קרינה, פעולת רעלנים מסוימים ומעכבי חילוף החומרים בתאים. נזק בלתי הפיך ל-DNA גורם לאפופטוזיס. הסיבה לכך היא שגורם השעתוק המצטבר, חלבון p53, לא רק מפעיל את חלבון p21 המעכב את הקינאז התלוי בציקלין ועוצר את מחזור התא בפאזה G1 או G2, אלא גם מפעיל את הביטוי של הגן bax, שתוצר שלו גורם לאפופטוזיס.

זמינות נקודות בקרהבמחזור התא יש צורך לקבוע את השלמת כל שלב שלו. עצירת מחזור התא מתרחשת כאשר ה-DNA ניזוק בתקופת ה-G1, כאשר ה-DNA משוכפל באופן חלקי בשלב ה-S, כאשר ה-DNA ניזוק בתקופת ה-G2, וכאשר החיבור של ציר החלוקה עם הכרומוזומים מופרע.

אחת מנקודות הבידוק במחזור התא היא המיטוזה עצמה, שאינה עוברת לאנפאזה אם הציר אינו מורכב כראוי ובהיעדר קשרים מלאים בין מיקרוטובולים לקינטוכורים. במקרה זה, אין הפעלה של קומפלקס APC, אין פירוק של קוהזינים המחברים בין כרומטידות אחיות, ואין פירוק של ציקלינים מיטוטיים, הכרחי למעבר לאנפאזה.

נזק ל-DNA מונע מתאים להיכנס לתקופת S או מיטוזה. אם הנזקים הללו אינם קטסטרופליים וניתן לשחזר אותם על ידי סינתזת DNA מתקנת, אזי החסימה של מחזור התא מוסרת, והמחזור מגיע לסיומו. אם נזק ל-DNA משמעותי, אז איכשהו מתרחשת ייצוב והצטברות של חלבון p53, שריכוזו בדרך כלל נמוך מאוד בגלל חוסר היציבות שלו. חלבון p53 הוא אחד מגורמי השעתוק הממריצים את הסינתזה של חלבון p21, שהוא מעכב של קומפלקס CDK-cyclin. זה גורם למחזור התא להפסיק בשלב G1 או G2. בעת חסימה בתקופת G1, תא עם נזק ל-DNA אינו נכנס ל-S-phase, שכן הדבר עלול להוביל להופעת תאים מוטנטים, ביניהם עשויים להיות תאי גידול. חסימה בתקופת G2 מונעת גם את תהליך המיטוזה של תאים עם נזק ל-DNA. תאים כאלה, עם מחזור תאים חסום, מתים לאחר מכן באפופטוזיס, מוות תאי מתוכנת (איור 353).

עם מוטציות שמובילות לאובדן גנים של חלבון p53, או עם השינויים שלהם, חסימת מחזור התא אינה מתרחשת, תאים נכנסים למיטוזה, מה שמוביל להופעת תאים מוטנטיים, שרובם אינם ברי קיימא, בעוד שאחרים יוצרים תאים ממאירים.

נזק סלקטיבי למיטוכונדריה, שבה משתחרר ציטוכרום c לתוך הציטופלזמה, הוא גם גורם שכיח לאפופטוזיס. המיטוכונדריה ורכיבים תאיים אחרים מושפעים במיוחד מהיווצרות מיני חמצן תגובתיים רעילים (ATC), שבפועלם נוצרות תעלות לא ספציפיות בעלות חדירות יונים גבוהה בקרום המיטוכונדריאלי הפנימי, כתוצאה מכך מתנפחת המטריצה ​​המיטוכונדריאלית והקרום החיצוני נקרע. במקביל, חלבונים המומסים בחלל הבין-ממברני, יחד עם ציטוכרום c, נכנסים לציטופלזמה. בין החלבונים המשתחררים נמצאים גורמים המפעילים אפופטוזיס ופרו-קספאז 9.

רעלנים רבים (ריצין, רעלן דיפתריה וכו'), כמו גם אנטי-מטבוליטים, עלולים לגרום למוות של תאים על ידי אפופטוזיס. כאשר סינתזת החלבון נפגעת ברטיקולום האנדופלזמי, פרו-קספאז 12 הממוקם שם מעורב בהתפתחות של אפופטוזיס, אשר מפעיל מספר קספאזות אחרות, כולל קספאז 3.

חיסול - הסרת תאים בודדים על ידי אפופטוזיס, נצפית גם בצמחים. כאן, אפופטוזיס כולל, כמו בתאי בעלי חיים, שלב אינדוקציה, שלב אפקטור ושלב פירוק. המורפולוגיה של מוות תאי צמחים דומה לשינויים בתאי בעלי חיים: התעבות כרומטין ופיצול גרעיני, פירוק אוליגונוקלאוטיד DNA, התכווצות פרוטופלסטים, פיצול שלו לשלפוחיות, קרע פלסמודסמטה וכו'. עם זאת, שלפוחיות פרוטופלסט נהרסות על ידי הידרולאזות של השלפוחיות עצמן, מכיוון שלצמחים אין תאים מקבילים לפגוציטים. לפיכך, PCD מתרחש במהלך הצמיחה של תאי כובע שורש, במהלך היווצרות נקבים בעלים, ובמהלך היווצרות קסלם ופלואם. נפילת עלים קשורה למוות סלקטיבי של תאים באזור מסוים של החיתוך.

התפקיד הביולוגי של אפופטוזיס, או מוות תאי מתוכנת, הוא גדול מאוד: מדובר בהסרה של תאים שעבדו בדרכם או שהם מיותרים בשלב נתון של התפתחות, כמו גם הסרה של תאים שהשתנו או פתולוגיים, במיוחד מוטנטים או נגועים בנגיפים.

לכן, על מנת שתאים יתקיימו באורגניזם רב-תאי, יש צורך באותות להישרדותם - גורמים טרופיים, מולקולות אותות. אותות אלו יכולים להיות מועברים למרחקים ולהיקלט על ידי מולקולות הקולטן המתאימות על תאי המטרה (אות הורמונלי, אנדוקריני), זה יכול להיות חיבור פרקריני כאשר האות מועבר לתא שכן (לדוגמה, שידור של נוירוטרנסמיטר). בהיעדר גורמים טרופיים כאלה, תוכנית האפופטוזיס מיושמת. במקביל, ניתן לגרום לאפופטוזיס על ידי מולקולות איתות, למשל, במהלך ספיגה של זנב ראשנים תחת פעולת תירוקסין. בנוסף, פעולתם של מספר רעלים המשפיעים על קישורים בודדים של חילוף החומרים בתאים יכולה גם לגרום למוות של תאים באמצעות אפופטוזיס.

אפופטוזיס בפתוגנזה של מחלות

1. במערכת החיסון

2. מחלות אונקולוגיות

3. זיהום ויראלי (השראת אפופטוזיס: ג. חסר חיסוני אנושי, ג. אנמיה עוף; מעכב אפופטוזיס: ציטומגלווירוס, ג. אפשטיין-בר, ג. הרפס)

4. A. ו-NEURONS OF CEREBRAL CORTEX

עקרונות תיקון אפופטוזיס בתא

גילוי התהליך המוסדר של מוות תאים - אפופטוזיס - אפשר להשפיע על שלביו האישיים בצורה מסוימת על מנת לווסת או לתקן.

ניתן לחלק באופן היפותטי תהליכים ביוכימיים של התפתחות אפופטוזיס למספר שלבים:

פעולתו של גורם הגורם לאפופטוזיס;

העברת אות ממולקולת הקולטן לגרעין התא;

הפעלה של גנים ספציפיים לאפופטוזיס;

סינתזה של חלבונים ספציפיים לאפופטוזיס

הפעלה של אנדונוקלאזים

פיצול DNA (איור 2.4).

כיום מאמינים שאם התא מת באפופטוזיס, משתמעת האפשרות של התערבות טיפולית, אם בגלל נמק, אז התערבות כזו היא בלתי אפשרית. בהתבסס על ידע על ויסות מוות תאי מתוכנת, נעשה שימוש במגוון רחב של תרופות להשפעה על תהליך זה בסוגי תאים שונים.

לפיכך, מידע על ויסות הקולטן של אפופטוזיס התא נלקח בחשבון בטיפול בגידולים תלויי הורמונים.

טיפול חוסם אנדרוגנים נקבע לסרטן הערמונית.

סרטן השד נסוג לעיתים קרובות עם שימוש באנטגוניסטים לקולטן אסטרוגן.

מידע על מסלולי העברת האותות הביוכימיים של ויסות אפופטוזיס מאפשר שימוש יעיל בטיפול נוגדי חמצון, תרופות המווסתות את ריכוז הסידן, מפעילים או מעכבים של קינאזות חלבון שונות וכו'. לתיקון אפופטוזיס בסוגי תאים שונים.

המודעות לתפקידה של אפופטוזיס במוות תאי העצימה את החיפוש אחר השפעות פרמקולוגיות המגנות על תאים מפני אפופטוזיס.

מעכבי פרוטאזות ספציפיות נחקרים באופן פעיל כסוכנים תרופתיים. אלה הם, ככלל, טרי- או טטרפפטידים המכילים חומצה אספרטית (Asp). השימוש בפרוטאזות כאלה למטרות טיפוליות מוגבל על ידי יכולתם הנמוכה לחדור לתוך התא. עם זאת, למרות זאת, Z-VAD-FMK, מעכב רחב של פרוטאזות דמויי ICE, שימש בהצלחה בניסויים in vivo להפחתת אזור האוטם במודל שבץ.

בשנים הקרובות ניתן לצפות להופעתם של תרופות חדשות לטיפול ומניעה של מחלות שונות, אשר בבסיסן יעמוד עקרון ויסות תהליכי האפופטוזיס.

הגישות היעילות ביותר לתיקון של אפופטוזיס הן אלה הקשורות לוויסות של גנים ספציפיים לאפופטוזיס. גישות אלו מהוות את הבסיס של ריפוי גנטי, אחד מתחומי הטיפול המבטיחים לחולים במחלות הנגרמות כתוצאה מתפקוד לקוי של גנים בודדים.

עקרונות הריפוי הגנטי כוללים את השלבים הבאים:

זיהוי רצף ה-DNA שיש לטפל בו;

קביעת סוג התאים בהם יתבצע הטיפול;

הגנה על DNA מפני הידרוליזה על ידי אנדונוקלאזים;

הובלה של DNA לתוך התא (גרעין).

גישות ריפוי גנטי מאפשרות

שפר את העבודה של גנים בודדים (טרנספורמציה של גנים המעכבים אפופטוזיס, כגון הגן bcl-2),

להחליש את הביטוי שלהם. לעיכוב סלקטיבי של ביטוי גנים, נעשה כיום שימוש בטכניקת האנטי-סנס אוליגונוקלאוטיד (אנטיסנס). השימוש באנטי-חושים מפחית את הסינתזה של חלבונים מסוימים, מה שמשפיע על ויסות תהליך האפופטוזיס.

מנגנון הפעולה של אנטי-סנס נחקר באופן פעיל. במקרים מסוימים, אוליגונוקלאוטידים אנטי-סנס קצרים (13-17 בסיסים), בעלי רצפים המשלימים לרצפי נוקלאוטידים של RNA שליח (mRNA) של חלבונים בודדים, יכולים למעשה לחסום מידע גנטי בשלב שלפני השעתוק (איור 2.5). אוליגונוקלאוטידים אלה, הנקשרים ל-DNA, יוצרים מבנה סלילי משולש. קישור כזה עשוי להיות בלתי הפיך או לגרום לפירוק סלקטיבי של קומפלקס הטריפלט, מה שמוביל בסופו של דבר לעיכוב של ביטוי גנים ומוות תאים. במקרים אחרים מתרחשת קישור משלים של האנטי-סנס ל-mRNA, מה שגורם להפרת תרגום ולירידה בריכוז החלבון המתאים.


מתחם שלישייה

אורז. ויסות ביטוי גנים על ידי אוליגונוקלאוטידים אנטי-סנס.

כעת הוכח בצורה משכנעת שלטכנולוגיית אנטי-סנס יש חשיבות רבה לוויסות של גנים בודדים בתרבית תאים. דיכוי מוצלח של הגן bcl-2 בניסויים בתרבית תאים מעורר תקוות לשימוש עתידי באנטיסנס לטיפול בחולי סרטן. ניסויים במבחנה רבים הראו כי אנטי-חושים גורמים לעיכוב של התפשטות תאים והתמיינות. תוצאה זו מאשרת את הסיכויים לשימוש טיפולי בטכנולוגיה זו.