30.06.2020

Bunkový cyklus a jeho regulácia. Študijná príručka: Molekulárne mechanizmy regulácie bunkového cyklu Regulácia regenerácie tkaniva


Bunkový šírenie- zvýšenie počtu buniek mitózou,

čo vedie k rastu tkaniva, na rozdiel od iného spôsobu jeho zvýšenia

masy (napr. edém). Nervové bunky sa nemnožia.

V dospelom organizme prebiehajú vývinové procesy spojené s

s delením a špecializáciou buniek. Tieto procesy môžu byť buď

malé fyziologické a zamerané na obnovenie or-

ganizmu v dôsledku porušenia jeho celistvosti.

Význam proliferácie v medicíne je určený schopnosťou buniek

prúd rôznych tkanív k deleniu. Proces hojenia je spojený s delením buniek.

hojenie rán a oprava tkaniva po chirurgických operáciách.

Bunková proliferácia je základom regenerácie (obnovy)

stratené časti. Zaujímavý je problém regenerácie

lieky na rekonštrukčnú chirurgiu. Rozlišujte medzi fyziologickými

reparačná a patologická regenerácia.

Fyziologické- prirodzená obnova buniek a tkanív v

ontogenézy. Napríklad zmena červených krviniek, kožných epitelových buniek.

Reparačný- zotavenie po poškodení alebo odumretí lepidla

prúd a tkanivá.

Patologické- proliferácia tkanív, ktoré nie sú totožné so zdravými tkanivami

mňam. Napríklad rast jazvového tkaniva v mieste popálenia, chrupavky - at

miesto zlomeniny, pomnoženie buniek spojivového tkaniva v mieste nášho

cervikálne tkanivo srdca, rakovinový nádor.

V poslednej dobe je zvykom deliť bunky živočíšneho tkaniva podľa

schopnosť rozdeliť sa do 3 skupín: labilné, stabilné a statické.

TO labilné obsahujú bunky, ktoré sa rýchlo a jednoducho aktualizujú

počas života organizmu (krvinky, epitel, hlien

zastaviť gastrointestinálny trakt, epidermis atď.).

TO stabilný zahŕňajú bunky z orgánov, ako je pečeň, pankreas

žľaza, slinné žľazy a pod., ktoré zisťujú obmedzene

nová schopnosť deliť sa.

TO statické zahŕňajú bunky myokardu a nervového tkaniva, ktoré

raž, podľa väčšiny výskumníkov, nezdieľajú.

Štúdium fyziológie buniek je nevyhnutné na jej pochopenie.

togenetickej úrovni organizácie života a mechanizmov samoregulácie

bunky, ktoré zabezpečujú holistické fungovanie celého organizmu.

Kapitola 6

GENETIKA AKO VEDA. PRAVIDLÁ

DEDIČSTVO ZNAKY

6.1 Predmet, úlohy a metódy genetiky

Dedičnosť a variabilita sú základné vlastnosti

živé bytosti, pretože sú charakteristické pre živé bytosti akejkoľvek úrovne organizácie

downgrading. Veda, ktorá študuje vzorce dedičnosti a zmeny

vosti, je tzv genetika.

Genetika ako veda študuje dedičnosť a dedičnosť

volatilita, konkrétne sa zaoberá spol Ďalšie problémy:

1) uchovávanie genetickej informácie;

2) prenos genetickej informácie;

3) implementácia genetickej informácie (jej využitie v špecifickom

znaky vyvíjajúceho sa organizmu pod vplyvom vonkajšieho prostredia);

4) zmena genetickej informácie (typy a príčiny zmien,

mechanizmy).

Prvá etapa vývoja genetiky - 1900-1912 Od roku 1900 - znovu

pokrývajúce zákony G. Mendela vedcami H. De Vries, K. Correns, E. Cher-

mak. Uznávanie zákonov G. Mendela.

Druhá fáza 1912–1925 - vytvorenie chromozómovej teórie T. Mor-

Ghana. Tretia fáza 1925–1940 - objav umelej mutagenézy a

genetické procesy evolúcie.

Štvrtá etapa 1940–1953 - výskum génovej kontroly

fyziologické a biochemické procesy.

Piatou etapou od roku 1953 do súčasnosti je vývoj molekulárnej

biológia.

Boli známe samostatné informácie o dedičnosti vlastností

veľmi dlho, ale vedecký základ pre prenos znakov bol prvý

stanovil G. Mendel v roku 1865 v diele: „Pokusy na rastlin

hybridy." Boli to pokročilé myšlienky, ale súčasníci nedali

význam jeho objavu. Pojem „gén“ v tom čase ešte neexistoval a G. Men-

del hovoril o „dedičných sklonoch“ obsiahnutých v pohlavných bunkách

kah, ale ich povaha bola neznáma.

V roku 1900 nezávisle od seba H. De Vries, E. Chermak a K. Kor-

Rens znovu objavil zákony G. Mendela. Tento rok sa považuje za rok narodenia

genetiky ako vedy. V roku 1902 vyrobili T. Boveri, E. Wilson a D. Setton

Lali navrhol vzťah dedičných faktorov s chromozómami.

V roku 1906 W. Betson zaviedol termín „genetika“ a v roku 1909 W. Johansen –

„gén“. V roku 1911 T. Morgan s kolegami sformuloval hlavné princípy

zheniya chromozomálna teória dedičnosti. Dokázali, že gény

umiestnené v určitých lokusoch chromozómov v lineárnom poradí,

určité znamenie.

Hlavné metódy genetiky: hybridologické, cytologické a

matematický. Genetika aktívne využíva metódy iných súvisiacich

vedy: chémia, biochémia, imunológia, fyzika, mikrobiológia atď.

KAPITOLA 1. Prehľad literatúry

1.1. Regulácia proliferácie nádorových buniek

1.1.1. Hlavné regulačné mechanizmy proliferačnej aktivity v cicavčích bunkách

1.1.2. Vlastnosti regulácie proliferatívnych procesov v nádorových bunkách

1.2. Regulácia apoptózy v nádorových bunkách

1.2.1. Charakteristika procesu apoptózy, jeho hlavné štádiá a mechanizmy regulácie

1.2.2. Dysregulácia apoptózy v nádorových bunkách

1.3. Regulácia bunkovej proliferácie a apoptózy voľnými radikálmi

1.3.1. Charakterizácia hlavných foriem voľných radikálov v živých systémoch

1.3.2. Voľné radikály a karcinogenéza

1.3.3. Voľné radikály protinádorovej aktivity antracyklínových antibiotík

1.3.4. Antioxidačné enzýmy ako regulátory koncentrácie voľných radikálov v bunkách

1.3.5. Antioxidačné enzýmy v rôznych typoch nádorových buniek

1.3.6. Úloha voľných radikálov a antioxidačných enzýmov v regulácii bunkovej proliferačnej aktivity

1.3.7. Mechanizmy indukcie apoptózy voľnými radikálmi

1.4. Úloha oxidu dusnatého pri regulácii proliferačnej aktivity a bunkovej apoptózy

1.4.1. Charakteristika a hlavné cesty tvorby oxidu dusnatého v nádorových bunkách

1.4.2. Účasť oxidu dusnatého na regulácii proliferatívnych procesov

1.4.3. Dvojaká úloha oxidu dusnatého pri regulácii apoptózy

1.4.4. Kombinovaný účinok oxidu dusnatého a voľných radikálov na proliferáciu a indukciu apoptózy nádorových buniek

KAPITOLA 2. Materiál a metódy výskumu

2.1. Materiál a predmety štúdia

2.2. Výskumné metódy

KAPITOLA 3. Výsledky vlastného výskumu a ich diskusia

3.1. Štúdium účinku aktivovaných kyslíkových metabolitov a oxidu dusnatého na proliferatívnu aktivitu nádorových buniek in vitro 95 Vplyv aktivovaných kyslíkových metabolitov na proliferatívnu aktivitu nádorových buniek

Účinok donorov oxidu dusnatého na proliferatívnu aktivitu nádorových buniek

3.2. Štúdium vplyvu metabolitov aktivovaného kyslíka a oxidu dusnatého na indukciu apoptózy v nádorových bunkách 106 Štúdium vplyvu metabolitov aktivovaného kyslíka na indukciu apoptózy v nádorových bunkách

Štúdium účinku donorov oxidu dusnatého na indukciu apoptózy v nádorových bunkách

3.3. Štúdium kinetiky interakcie exogénnych voľných radikálov s nádorovými bunkami 113 Štúdium kinetiky rozkladu terciárneho butylhydroperoxidu v bunkových suspenziách

Štúdium antiradikálovej aktivity supernatantov nádorových buniek

3.4. Štúdium úlohy kyseliny arachidónovej v regulácii proliferácie nádorových buniek 119 Inkorporácia kyseliny α-arachidonovej do fosfolipidov pri prechode nádorových buniek zo stavu proliferácie do pokojového stavu.

Vplyv voľných radikálov a oxidu dusnatého na výťažok kyseliny arachidónovej a jej zabudovanie do nádorových buniek a jednotlivých fosfolipidov

Regulácia aktivity enzýmov metabolizmu fosfolipidov voľnými radikálmi

3.5. Skúmanie závislosti aktivity antioxidačných enzýmov od závažnosti proliferatívnych procesov v nádoroch v experimente

Aktivita antioxidačných enzýmov pri Ehrlichových karcinómoch s rôznou závažnosťou proliferatívnych procesov 147 Aktivita antioxidačných enzýmov v závislosti od mitotického indexu benígnych a malígnych nádorov prsníka

3.6. Štúdium kombinovaného účinku voľných radikálov a oxidu dusnatého na proliferáciu a apoptózu nádorových buniek 157 Kombinovaný účinok oxidu dusnatého a voľných radikálov na proliferáciu nádorových buniek 157 Úloha oxidu dusnatého v regulácii apoptózy nádorových buniek indukovanej voľnými radikálmi

Modulačný účinok oxidu dusnatého na protinádorovú aktivitu doxorubicínu

Úvod k práci (časť abstraktu) na tému "Regulácia proliferácie a apoptózy nádorových buniek voľnými radikálmi"

Zhubné novotvary sú jednou z hlavných príčin úmrtí vo väčšine priemyselných krajín. Celosvetový rozsah problému chorobnosti a úmrtnosti na rakovinu možno posúdiť na základe odborných posudkov Medzinárodnej agentúry pre výskum rakoviny. V roku 2000 sa tak počet nových prípadov rakoviny vo svete odhadoval na viac ako 10 miliónov ľudí a počet úmrtí - na 6,2 milióna. Predpokladá sa, že výskyt zhubných nádorov sa do roku 2020 zvýši na 15 miliónov, zatiaľ čo úmrtnosť sa zvýši na 9 miliónov ročne. Najdôležitejšou podmienkou úspešnosti protirakovinového boja je poznanie mechanizmov patogenézy malígneho bujnenia, ktoré je nevyhnutné pre vytvorenie adekvátnej terapeutickej stratégie. Moderné chápanie etiológie a mechanizmov rakoviny, dosiahnuté pokrokom v základnej medicíne a biológii, dáva predstavu o množstve základných vlastností, ktoré zhubné nádory majú. Kľúčovými parametrami nádorového rastu sú zvýšená schopnosť proliferácie, strata schopnosti úplnej diferenciácie a apoptickej smrti, invazívny rast a metastázy. Vďaka týmto vlastnostiam majú nádorové bunky výhodu oproti bunkám normálnych tkanív počas rastu a prežívania za rovnakých podmienok. Napriek obrovskému celosvetovému úsiliu a dosiahnutým úspechom v oblasti výskumu rakoviny však problém etiopatogenézy zhubných nádorov zostáva vo všeobecnosti nevyriešený.

Štúdium bunkových a molekulárnych mechanizmov regulácie proliferácie a apoptózy nádorových buniek je jednou z prioritných oblastí modernej onkológie a patologickej fyziológie. V zdravých tkanivách sa vytvára rovnováha medzi procesmi bunkovej proliferácie a bunkovej smrti. Naproti tomu malígny rast je založený na autonómnej a neobmedzenej proliferácii buniek, ktoré tvoria nádorové tkanivo. Zároveň sa v transformovaných bunkách objavuje rezistencia na indukciu apoptózy, ktorá je tiež jedným z kľúčových mechanizmov ich prežitia. Bunkové mechanizmy spúšťania a aktivácie apoptózy sú v dôsledku genetických mutácií narušené, čo vedie k zníženiu schopnosti transformovaných buniek aktivovať program bunkovej smrti a podmieňuje progresiu nádorového procesu a môže byť aj jednou z príčin multidrogovej rezistencie. Štúdium mechanizmov regulácie proliferácie a apoptózy nádorových buniek je dôležité nielen z hľadiska pochopenia patogenetických znakov vývoja a fungovania nádorov, ale umožňuje nám identifikovať aj nové oblasti terapie malígnych novotvarov. /

V poslednej dobe sa dosiahol významný pokrok v štúdiu úlohy molekúl rôznych tried v regulácii bunkového rastu. Regulačné molekuly, predovšetkým hormóny a rastové faktory, interagujú s bunkovými štruktúrami, rast modulujúce faktory zahŕňajú aj udalosti, ktoré sa vyskytujú vo vnútri buniek počas prenosu signálu za účasti mediátorových systémov. Pri pochopení mechanizmov, ktoré riadia reprodukciu buniek, zohráva dôležitú úlohu objasnenie povahy intracelulárnych signálov zodpovedných za prepnutie metabolizmu na novú úroveň, keď sa zmení stav proliferácie a pokoja.

Metabolity aktívneho kyslíka (AKM), ako je superoxidový aniónový radikál, hydroxylové, alkoxylové a peroxidové radikály, oxid dusnatý (NO) atď., sú základnými zložkami normálneho fungovania buniek. Zohrávajú dôležitú úlohu pri regulácii aktivity enzýmov, udržiavaní stability membrány, transkripcii niektorých génov, sú nevyhnutnými prvkami pre fungovanie množstva mediátorových systémov a pôsobia ako mediátory pri tvorbe bunkovej odpovede. To podnecuje veľký záujem o štúdium úlohy voľných radikálov v regulácii proliferácie nádorových buniek.

Hromadné údaje v literatúre o molekulárnych mechanizmoch pôsobenia rôznych molekúl voľných radikálov naznačujú ich účasť na regulácii bunkového rastu a diferenciácie. Je známe, že superoxidový radikál a peroxid vodíka v nízkych koncentráciách stimulujú delenie buniek. Oxid dusnatý sa tiež podieľa na regulácii proliferácie rôznych buniek, vrátane nádorových.

Antioxidačné enzýmy (AOF) riadením koncentrácie radikálov môžu pôsobiť ako regulátory proliferácie. Tento predpoklad je potvrdený skutočnosťou inverznej korelácie medzi rýchlosťou rastu hepatómu a obsahom Cu, ba - superoxiddismutázy v ňom. Vysoká aktivita AOF teda nie je len faktorom odolnosti nádorov voči účinkom voľných radikálov, ale môže tiež inhibovať neobmedzené delenie buniek novotvaru.

V patogenéze onkologických ochorení má mimoriadny význam porušenie programovanej bunkovej smrti (apoptóza). Údaje z mnohých štúdií naznačujú, že vďaka svojej vysokej chemickej aktivite môže AKM poškodiť vnútrobunkové štruktúry a byť induktormi a mediátormi apoptózy. Apoptózu vyvolávajú aj faktory chemickej a fyzikálnej povahy, ktoré pri pôsobení na bunky vyvolávajú oxidačný stres. Medzi tieto faktory patrí ionizujúce žiarenie a niektoré protirakovinové lieky (napríklad antracyklínové antibiotiká a cisplatina), ktoré po vstupe do bunky vedú k tvorbe voľných radikálov. Predpokladá sa, že povaha pôsobenia AKM na bunky je spojená s ich intra- a extracelulárnymi hladinami, avšak neboli identifikované žiadne špecifické vzory, čo znamená, že je dôležité študovať vplyv kyslíkových radikálov na proliferáciu a apoptózu nádorových buniek. v závislosti od koncentrácie.

Oxid dusnatý, ktorý je regulátorom vnútrobunkových a medzibunkových procesov, sa priamo podieľa na realizácii apoptotického programu. Predpokladá sa, že oxid dusnatý môže zvýšiť cytotoxicitu voľných radikálov a zlúčeniny generujúce NO, ktoré vstupujú do oxidačnej reakcie voľných radikálov, môžu vytvárať ešte toxickejšiu zlúčeninu - peroxydusitan, ktorý poškodzuje DNA a spôsobuje kovalentné modifikácie proteínov v bunke. , čím sa iniciuje apoptóza. V mnohých štúdiách sa však NO považuje skôr za antioxidant, ktorý inhibuje rozvoj radikálnych oxidačných reakcií. Zároveň neexistuje jednoznačná odpoveď na otázku, či je NO aktivátorom alebo inhibítorom apoptózy.

Množstvo základných problémov dôležitých pre pochopenie vzorcov interakcie medzi molekulami voľných radikálov a nádorových buniek a regulačných mechanizmov proliferácie nádorových buniek zostáva nepreskúmaných. Patrí medzi ne najmä objasnenie toho, aké deje sú počiatočné a rozhodujúce pri interakcii nádorových buniek s organickými hydroperoxidmi. V súčasnosti len málo štúdií berie do úvahy možnosť a dôležitosť modulácie aktivovanými metabolitmi kyslíka rôznych štádií regulácie bunkového delenia: interakcie ligand-receptor, fungovanie systému „druhých poslov“, aktivácia a/alebo inhibícia molekuly efektorových buniek. Mechanizmy vplyvu AKM na kľúčové zložky vnútrobunkového signalizačného systému nádorových buniek nie sú dostatočne prebádané. Otázka spoločného účinku kyslíkových radikálov a NO na proliferatívny potenciál nádorových buniek zostáva nepreskúmaná. Riešenie týchto problémov by mohlo slúžiť ako základ pre pochopenie patogenetických mechanizmov neoblastomagenézy, čo by zase mohlo viesť k rozvoju efektívnejších prístupov ku komplexnej patogenetickej terapii malígnych novotvarov.

Účel a ciele štúdie.

Cieľom tejto štúdie bolo študovať úlohu voľných radikálov, oxidu dusnatého a antioxidačných enzýmov v mechanizmoch regulácie proliferácie a apoptózy nádorových buniek.

Na dosiahnutie cieľa boli stanovené tieto úlohy:

4. Štúdium úlohy kyseliny arachidónovej v mechanizmoch regulácie proliferácie a apoptózy nádorových buniek. Vyhodnotiť účinok voľných radikálov na uvoľňovanie kyseliny arachidónovej z fosfolipidov membrán nádorových buniek a ukázať úlohu enzýmov metabolizmu fosfolipidov v tomto procese.

Vedecká novinka

Po prvý raz sa uskutočnila komplexná štúdia vplyvu látok generujúcich voľné radikály a donorov oxidu dusnatého v širokom rozsahu koncentrácií na aktivitu proliferatívnych procesov v bunkách experimentálnych nádorových línií a na indukciu apoptózy v nich. Zistilo sa, že smer účinku študovaných zlúčenín sa mení v závislosti od koncentrácie, a to so znížením dávky, inhibičný účinok na proliferáciu a indukciu apoptózy klesá a keď koncentrácia dosiahne 10-6 M alebo menej, pozoruje sa stimulácia reprodukcie buniek.

Prvýkrát bola študovaná kinetika interakcie organických peroxidov s nádorovými bunkami a bola zistená extracelulárna produkcia glutatiónperoxidázy a nízkomolekulárnych zložiek s antiradikálovou aktivitou.

Prvýkrát bola ukázaná koncentračná závislosť vplyvu voľných radikálov na uvoľňovanie kyseliny arachidónovej z membránových fosfolipidov a vzťah tohto procesu s proliferáciou a apoptózou nádorových buniek. Zistilo sa, že pri pôsobení vysokých koncentrácií AKM, ktoré inhibujú proliferačné procesy a indukujú apoptózu, dochádza k významnému uvoľňovaniu kyseliny arachidónovej z membránových fosfolipidov a inhibícii jej inkorporácie do nich. Na rozdiel od toho AKM v nízkych dávkach stimulujúcich proliferáciu vedie k menej výraznému uvoľňovaniu mastných kyselín pri zachovaní opravy fosfolipidov. Ukázalo sa, že uvoľňovanie kyseliny arachidónovej z membránových fosfolipidov je sprostredkované aktiváciou fosfolipázy A. Vplyv oxidu dusnatého na tieto procesy bol podobný, ale menej výrazný.

Boli získané nové údaje o závislosti aktivity antioxidačných enzýmov od závažnosti proliferatívnych procesov v bunkách experimentálneho nádoru, benígnych a malígnych nádorov ľudského prsníka. Rýchlo rastúce nádory sa vyznačujú nízkou aktivitou antioxidačných enzýmov, zatiaľ čo s poklesom závažnosti proliferatívnych procesov dochádza k zvýšeniu aktivity antioxidačných enzýmov.

Schopnosť donorov oxidu dusnatého (dusitan sodný, nitroprusid sodný a L-arginín) chrániť nádorové bunky pred toxické pôsobenie peroxyradikály a doxorubicín. Experimentálne bola preukázaná možnosť použitia donoru NO -nitrózoguanidínu na zvýšenie protinádorovej účinnosti doxorubicínu.

Teoretický a praktický význam

Výsledky štúdie významne rozširujú základné chápanie mechanizmov regulácie proliferačnej aktivity a apoptotickej smrti nádorových buniek. Ukázalo sa, že látky generujúce voľné radikály a donory oxidu dusnatého v závislosti od koncentrácie môžu aktivovať proliferatívnu aktivitu aj apoptózu nádorových buniek, čo potvrdzuje existenciu vnútrobunkového regulačného systému spoločného pre tieto procesy, ktorého súčasťou je kyslík a dusíkové radikály.

Získané výsledky tvoria nové predstavy o biochemických zákonitostiach interakcie nádorových buniek s aktivovanými metabolitmi kyslíka, dokazujúce možnosť extracelulárnej regulácie úrovne oxidácie voľných radikálov a interakcie peroxidov s vnútrobunkovým signálnym systémom.

Údaje o vzťahu medzi aktivitou antioxidačných enzýmov a intenzitou proliferatívnych procesov môžu slúžiť ako základ pre výber dodatočných informatívnych kritérií pri hodnotení biologických charakteristík nádorov, najmä ich proliferačnej aktivity, ktorú je možné použiť ako prognostické faktory. Získané údaje naznačujú, že donory oxidu dusnatého môžu chrániť nádorové bunky pred poškodením voľnými radikálmi a pôsobiť ako faktory rozvoja rezistencie voči liekom. To všetko by malo prispieť k starostlivejšiemu výberu liekov, ktoré dokážu stimulovať tvorbu oxidu dusnatého a peroxidov v tele pacientov so zhubnými ochoreniami pri predpisovaní chemoterapie. Okrem toho práca experimentálne zdôvodňuje možnosť využitia donorov oxidu dusnatého na zvýšenie protinádorovej účinnosti antracyklínových antibiotík.

Návrhy, ktoré je potrebné obhajovať 1. Superoxidový radikál, organické peroxidy a donory oxidu dusnatého môžu v závislosti od koncentrácie vykazovať cytotoxickú aktivitu proti nádorovým bunkám a indukovať ich apoptózu a stimulovať ich proliferáciu.

2. Účinok peroxidov a donorov oxidu dusnatého na proliferáciu a apoptózu je sprostredkovaný interakciou s lipidovým systémom prenášajúcim signál, vrátane kyseliny arachidónovej.

3. Aktivita antioxidačných enzýmov je znížená vo fáze rýchleho logaritmického rastu experimentálnych nádorov v porovnaní s fázou pomalého stacionárneho rastu a pri malígnych nádoroch mliečnej žľazy s najvyšším mitotickým indexom.

4. Donory oxidu dusnatého (dusitan sodný, nitroprusid sodný a L-arginín) znižujú inhibičný účinok peroxyradikálov na proliferáciu nádorových buniek a inhibujú indukciu apoptózy in vitro.

Schválenie práce

Hlavné výsledky práce boli oznámené na sympóziu krajín SNŠ „Klinické a experimentálne aspekty bunkovej signalizácie“ (Moskva, 28. – 29. septembra 1993), na V. All-Russian Conference on Cell Pathology (Moskva, 29. novembra -30, 1993), na VI. sympóziu o biochémii lipidov (Petrohrad, 3. - 6. októbra 1994), na Druhej medzinárodnej konferencii o klinickej chemiluminiscencii (Berlín, Nemecko, 27. - 30. apríla 1996), na II. kongrese Biochemickej spoločnosti Ruskej akadémie vied (Moskva, 19. – 32. mája 1997), na medzinárodnej konferencii „Regulácia biologických procesov voľnými radikálmi: úloha antioxidantov, lapačov voľných radikálov a chelátorov“ (Moskva-Jaroslavl , 10. – 13. mája 1998), na regionálnej vedeckej konferencii „Aktuálne otázky kardiológie » (Tomsk, 14. – 15. septembra 2000), na 7. kongrese ESACP (Caen, Francúzsko, 1. – 5. apríla 2001), v 7. medzinárodná konferencia „Eikosanoidy & iné bioaktívne lipidy pri rakovine, zápale a súvisiacich ochoreniach“ (Nashville, USA, 14. – 17. október 2001), na VI. medzinárodnej konferencii „Bioantioxidant“ (Moskva, 16. – 19. apríla 2002), o hod. 3. kongres onkológov a rádiológov krajín SNŠ (Minsk, 25. – 28. mája 2004).

Publikácie

Štruktúra a rozsah dizertačnej práce

Dizertačná práca pozostáva z úvodu, 3 kapitol, záveru, záverov a zoznamu citovanej literatúry. Práca je prezentovaná na 248 stranách a je ilustrovaná 29 obrázkami a 19 tabuľkami. Bibliografia obsahuje 410 literárnych zdrojov, z toho 58 domácich a 352 zahraničných.

Podobné tézy v špecializácii "Onkológia", 14.00.14 kód VAK

  • Mechanizmy regulácie aktivity prirodzených supresorových buniek za normálnych podmienok a počas rastu nádoru 2005, doktor lekárskych vied Belsky, Jurij Pavlovič

  • Niektoré mechanizmy vplyvu nádoru na imunosupresívne a protinádorové vlastnosti buniek kostnej drene v experimente 2002, kandidátka lekárskych vied Trofimová, Evgenia Sergeevna

  • Iónový mechanizmus regulácie rastu populácií normálnych a nádorových buniek v tele 2011, doktor biologických vied Zamay, Tatyana Nikolaevna

  • Úloha porúch medzibunkových interakcií v patogenéze myelotoxického účinku antracyklínových xenobiotík 2007, doktorka biologických vied Julia Alexandrovna Uspenskaya

  • Mechanizmy voľných radikálov vo vývoji liekovej rezistencie v nádorových bunkách 2005, kandidátka biologických vied Solomka, Victoria Sergeevna

Záver dizertačnej práce na tému "Onkológia", Kondakova, Irina Viktorovna

1. Vplyv voľných radikálov na proliferáciu nádorových buniek je závislý od dávky. Kyslíkové radikály (superoxidový radikál, organické peroxidy) a donory oxidu dusnatého vo vysokej

3 5 koncentrácií (10"-10" M) inhibujú proliferáciu a pri nízkych koncentráciách (10"b-10"9 M) vykazujú aktivitu stimulujúcu rast proti ascitickým nádorovým bunkám. Výnimkou je nitrózoguanidín, ktorý neaktivuje proliferačné procesy v nádorových bunkách v rozsahu študovaných koncentrácií.

2. Stupeň indukcie apoptózy nádorových buniek organickými peroxidmi a donormi oxidu dusnatého je výraznejší so zvýšením koncentrácie použitých zlúčenín. Zvýšená programovaná bunková smrť je sprevádzaná inhibíciou ich proliferačnej aktivity.

3. Kinetika interakcie exogénnych peroxidov s ascitickými nádorovými bunkami sa vyznačuje pomalším rozpadom v porovnaní s normálnymi bunkami (lymfocyty a erytrocyty).

4. Nádorové bunky extracelulárne vylučujú glutatiónperoxidázu a nízkomolekulárne neproteínové zlúčeniny s antiradikálovou aktivitou.

5. Stav proliferačnej aktivity transformovaných buniek je charakterizovaný zvýšením metabolizmu fosfolipidov, ktorý sa prejavuje zvýšením inkorporácie kyseliny arachidónovej do membránových fosfolipidov, najmä do fosfatidylcholínu a kardiolipínu, v porovnaní s bunkami v pokoji.

6. Pôsobením voľných radikálov v koncentráciách stimulujúcich proliferáciu sa pozoruje trojnásobné zvýšenie uvoľňovania kyseliny arachidónovej z fosfolipidov nádorových buniek pri zachovaní reparačných procesov v membránach a pri pôsobení toxických dávok sa pozoruje sedemnásobné zvýšenie uvoľňovania kyseliny arachidónovej z fosfolipidov nádorových buniek. ktorý je sprevádzaný úplnou inhibíciou procesov opravy membrány. Účinok donorov oxidu dusnatého je rovnaký, ale menej výrazný. Hlavnú úlohu pri uvoľňovaní kyseliny arachidónovej z membránových fosfolipidov hrá fosfolipáza A2.

7. Pri ascite a solídnych nádoroch Ehrlichovho karcinómu je vo fáze rýchleho logaritmického rastu pozorovaný pokles aktivity antioxidačných enzýmov (superoxiddismutáza, glutatiónperoxidáza a glutatióntransferáza) v porovnaní s fázou pomalého stacionárneho rastu.

8. Pri fibroadenómoch prsníka sa zvyšuje aktivita antioxidačných enzýmov so zvýšením mitotického indexu nádoru. Naproti tomu v tkanivách rakoviny prsníka je pozorovaný pokles aktivity antioxidačných enzýmov pri najvyšších hodnotách mitotického indexu.

9. Donory oxidu dusnatého (nitroprusid sodný, dusitan sodný, L-arginín) znižujú stupeň inhibície proliferácie nádorových buniek spôsobenej látkami, ktoré generujú peroxyradikály a inhibujú apoptózu indukovanú voľnými radikálmi.

10. Kombinácia donorov oxidu dusnatého (nitroprusid sodný, dusitan sodný, L-arginín) v koncentrácii 10-4-10"5 m a doxorubicín

5 7 vedie k zníženiu nádorovej toxicity antibiotika (10" - 10" M). Nitroprusid sodný, dusitan sodný v koncentrácii 10-3 M a nitrózoguanidín v koncentrácii 10-4 M zvyšujú tumoritoxický účinok doxorubicínu.

11. Nitrozoguanidín zvyšuje terapeutickú účinnosť doxorubicínu v experimente, znižuje veľkosť Ehrlichovho karcinómu 3-krát a zvyšuje úroveň indukcie apoptózy a nekrózy nádorových buniek.

ZÁVER

Základom malígneho rastu je progresívny a autonómny nárast geneticky nestabilnej bunkovej hmoty, v ktorej sa neustále vyberajú bunky s najagresívnejším potenciálom. Dysregulácia počtu buniek v nádoroch je výsledkom nerovnováhy v procesoch proliferácie a apoptózy. Štúdium molekulárnych mechanizmov, ktoré sú základom týchto procesov, sa v posledných rokoch stalo jedným z najnaliehavejších problémov modernej onkológie a patologickej fyziológie. Dôležitosť riešenia tohto problému je daná vzťahom medzi poruchami regulácie bunkovej reprodukcie a procesov odumierania a vznikom a rozvojom zhubných nádorov, ktorý je nevyhnutný pre pochopenie patogenézy rakoviny, ako aj hľadanie nových smerov v liečba malígnych novotvarov.

V súčasnosti nie sú dobre známe mechanizmy regulácie proliferačnej aktivity a apoptózy nádorových buniek voľnými radikálmi. Dôležitou úlohou je identifikovať vedúce mechanizmy zodpovedné za konečné biologické účinky tejto triedy molekúl. Podľa literatúry je regulácia proliferačnej aktivity a apoptózy voľnými radikálmi multifaktoriálny proces, ktorý sa uskutočňuje prostredníctvom ich interakcie so špecifickými systémami prenášajúcimi signály. Dôležitú úlohu v regulácii rastu nádorových buniek a ich smrti má voľný radikál NO", ktorý je najdôležitejším biologickým efektorom. Len málo štúdií však berie do úvahy možnosť a význam modulácie voľnými radikálmi tzv. rôzne štádiá regulácie vitálnej aktivity buniek, vrátane zmien v aktivite enzýmov, génovej expresii a pod. Antioxidačné enzýmy sa doteraz z hľadiska ich možnej úlohy v regulácii proliferatívnych procesov zmenou úrovne oxidačného metabolizmu takmer vôbec neuvažovali. v bunkách.

Jednou z najmenej prebádaných zostáva otázka vplyvu nízkych dávok voľných radikálov na membránové zložky – fosfolipidy a enzýmy ich metabolizmu. Úloha oxidu dusnatého a jeho kombinácie s inými molekulami voľných radikálov pri realizácii proliferatívnych alebo apoptotických mechanizmov nie je dostatočne objasnená. Je zrejmé, že NO má významný, aj keď stále nedostatočne objasnený účinok na protinádorovú liečbu. Možnosť použitia zlúčenín generujúcich oxid dusnatý na zvýšenie účinnosti tých typov protinádorovej terapie, ktorých mechanizmus účinku je založený na poškodení malígneho tkaniva voľnými radikálmi, ako je chemoterapia s antracyklínovými antibiotikami, nebola skúmaná.

Tieto okolnosti slúžili ako východisko pre stanovenie cieľa, ktorým bolo štúdium úlohy voľných radikálov, oxidu dusnatého a antioxidačných enzýmov v regulácii proliferácie a apoptózy nádorových buniek. Toto predpokladalo:

1. Štúdium účinku aktivovaných metabolitov kyslíka, organických peroxidov a donorov oxidu dusnatého na proliferatívnu aktivitu nádorových buniek.

2. Štúdium účinku aktivovaných metabolitov kyslíka a oxidu dusnatého na indukciu apoptózy v nádorových bunkách.

3. Študovať kinetiku interakcie exogénnych peroxidov s nádorovými bunkami a zistiť úlohu enzymatických a neenzymatických antioxidantov v tomto procese.

4. Štúdium úlohy kyseliny arachidónovej v mechanizmoch regulácie proliferácie a apoptózy nádorových buniek. Zhodnoťte vplyv voľných radikálov na uvoľňovanie kyseliny arachidónovej z fosfolipidov membrán nádorových buniek a ukážte enzýmy metabolizmu fosfolipidov v tomto procese.

5. V experimente študovať závislosť aktivity antioxidačných enzýmov od rýchlosti proliferácie a štruktúrnej organizácie nádorov.

6. Posúdiť vzťah medzi aktivitou antioxidačných enzýmov a proliferáciou buniek benígnych a malígnych nádorov prsníka.

7. Štúdium spoločného účinku voľných radikálov a zlúčenín generujúcich NO na proliferáciu a apoptózu nádorových buniek.

8. Štúdium účinku donorov oxidu dusnatého na nádorový toxický účinok doxorubicínu in vitro.

9. Vyhodnoťte možnosť použitia donorov oxidu dusnatého na zvýšenie terapeutickej účinnosti antracyklínových antibiotík.

Štúdium vplyvu voľných radikálov a donorov oxidu dusnatého na proliferáciu a apoptózu nádorových buniek sa uskutočnilo na experimentálnych modeloch mastocytómu P-815 a Ehrlichovho ascitického karcinómu.

Ako výsledok štúdií sa zistilo, že účinok rôznych kyslíkových radikálov a donorov oxidu dusnatého na proliferatívnu aktivitu nádorových buniek mastocytómu P-815 a Ehrlichovho karcinómu závisí od koncentrácie a chemickej štruktúry použitých zlúčenín. Všeobecný trend ich vplyvu na nádorové bunky spočíval vo výraznom cytotoxickom účinku vysokých koncentrácií tc (10" - 10" M), ktorý sa prejavil v znížení úrovne syntézy DNA a tým aj proliferačnej aktivity. S poklesom koncentrácie (1 (U6 M a menej) došlo k zníženiu cytotoxického účinku, ktorý sa priamo zmenil na stimuláciu proliferácie nádorových buniek. Tento vzorec sa ukázal pri pôsobení superoxidového radikálu, 2,2" azo- bis (2-amidinopropán) (ABAP), ktorý produkuje peroxyradikály, terciárny butylhydroperoxid, peroxid kyseliny linolénovej a donory oxidu dusnatého, s výnimkou nitrózoguanidínu, ktorý v študovanom rozsahu koncentrácií nemá stimulačný účinok na syntézu DNA. metylester nitroarginínu prakticky nezmenil rýchlosť syntézy DNA v nádorových bunkách mastocytómu P-815 a v bunkách Ehrlichovho karcinómu viedol k takmer 50% zníženiu tohto procesu. Tieto údaje naznačujú rozdielny podiel NO vytvoreného v NO- syntázová reakcia na zabezpečenie rastovo-regulačných procesov v rôznych typoch nádorových buniek. Podobná koncentračná závislosť bola odhalená aj pri pôsobení doxorubicínu na syntézu DNA n v nádorových bunkách. Zistilo sa, že koncentrácie antibiotík (10" M a nižšie) stimulujú proliferačné procesy v nádoroch. Treba poznamenať, že existuje spoločný rozsah koncentrácií pre všetky zlúčeniny, ktoré generujú voľné radikály, vrátane doxorubicínu

10" - 10" M), v ktorých vykazujú vlastnosti podporujúce rast. Zo všetkých študovaných ACM bol najmenej toxický superoxidový aniónový radikál, ktorý stimuloval bunkovú proliferáciu už od koncentrácie 6><10"6 М.

Údaje získané v tejto práci sú v súlade s výsledkami štúdie Goloba, W. et al. ktorý odhalil aj závislosť proliferačnej aktivity nádorových buniek od koncentrácie AKM.

Zistilo sa, že lipidové hydroperoxidy v koncentrácii 1 (G6 M a menej) stimulujú delenie buniek rakoviny hrubého čreva.Autori sa domnievajú, že možným mechanizmom tohto procesu je zvýšenie expresie cyklínu a cyklín-dependentnej kinázy 4 , fosforylácia proteínov retinoblastómu, ktorá podporuje prechod buniek z fázy O0 a O. vo fáze 8, počas ktorej dochádza k syntéze DNA. Zvýšenie koncentrácie lipidových peroxidov a expozičného času viedli k oxidačnému poškodeniu DNA a zastaveniu mitózy v r. fázy O0 /Ob, ktorá prispela k zastaveniu rastu bunkovej populácie.Tieto údaje, ako aj výsledky získané v tejto práci, sú dôkazom účasti kyslíkových radikálov na regulácii proliferačnej aktivity nádorových buniek.

V súčasnosti je ťažké povedať niečo o čase, ktorý je potrebný na vyvolanie delenia nádorových buniek pôsobením voľných radikálov. Experimenty na určenie doby indukcie proliferácie bakteriálnych kmeňov a hepatocytov ukázali, že superoxidový radikál začína indukovať proliferatívnu odpoveď po 20 minútach od začiatku inkubácie. Na stanovenie tohto parametra v kultúrach nádorových buniek a tkanív sú potrebné ďalšie štúdie.

Možno teda usudzovať, že úroveň intenzity oxidačného stresu určuje jeho konečný biologický účinok v rozsahu od deštruktívneho cytotoxického účinku pri vysokých koncentráciách oxidačných činidiel až po reguláciu funkčného stavu buniek pri fyziologických koncentráciách. V rade rôznych fyziologických funkcií voľných radikálov zohráva dôležitú úlohu schopnosť ovplyvňovať proliferatívnu aktivitu buniek.

Rovnováha medzi procesmi proliferácie a apoptózy je nevyhnutná pre vývoj normálnych tkanív. Dôsledkom nerovnováhy medzi nimi je neobmedzený malígny rast. Preto je vhodné študovať účinky voľných radikálov na proliferáciu nádorových buniek v kombinácii s hodnotením ich vplyvu na apoptózu. Štúdia vplyvu peroxidov na programovanú bunkovú smrť buniek Ehrlichovho karcinómu ukázala, že najvýraznejšie výsledky sa dosiahli pri použití terciárneho butylhydroperoxidu, ktorý indukoval apoptózu v mikromolárnych koncentráciách, zatiaľ čo ABAP vyžadoval zvýšenie účinných dávok až na 10". Pokles koncentrácie peroxyradikálov v inkubačnom médiu viedol k inhibícii procesu apoptózy Možným mechanizmom indukcie apoptózy prooxidantmi je pravdepodobne oxidácia alebo redukcia SH-skupín proteínov – mediátorov programovanej bunkovej smrti, ako napr. transkripčné faktory c-Bob, c-Dt, AP-1 atď.

Na rozdiel od peroxyradikálov bol účinok doxorubicínu na indukciu apoptózy zvlnený a so zvyšujúcou sa koncentráciou nebol pozorovaný nárast programovanej smrti nádorových buniek. To naznačuje, že pri vysokých koncentráciách je hlavnou formou realizácie protinádorového účinku antibiotika vyvolanie nekrózy nádorových buniek. Je potrebné poznamenať, že spolu so zvýšením apoptotickej smrti pôsobením doxorubicínu v nízkych koncentráciách sa zvýšila aj proliferatívna aktivita nádorových buniek. Je to pravdepodobne spôsobené existenciou univerzálnych signálnych dráh, ktoré sa podieľajú na regulácii oboch procesov. O

Použitie donorov oxidu dusnatého v koncentrácii viedlo k významnej aktivácii indukcie apoptózy v porovnaní s kontrolnou hladinou. Pokles koncentrácie študovaných donorov na 10-5 M spôsobil inhibíciu štartu apoptotického programu.Pri pôsobení L-arginínu bolo pozorované zvýšenie počtu apoptoticky mŕtvych buniek 1,5-krát vyššie ako u kontroly.

Pri analýze našich údajov sme teda zaznamenali koncentračnú závislosť účinku látok, ktoré generujú voľné radikály, vrátane donorov oxidu dusnatého, od proliferačnej aktivity a indukcie apoptózy nádorových buniek. Vysoké koncentrácie týchto zlúčenín inhibovali proliferatívnu aktivitu a indukovali apoptózu nádorových buniek. Zníženie koncentrácie účinných látok v inkubačnom médiu viedlo k zvýšeniu proliferácie nádorových buniek a zníženiu procesu spúšťania programovanej bunkovej smrti. Vo všeobecnosti môže byť redoxný potenciál dôležitým faktorom ovplyvňujúcim kinetiku rastu nádoru, ktorý je determinovaný mitotickou a apoptotickou aktivitou buniek.

Fenomén stimulácie a inhibície proliferácie nádorových buniek pôsobením nízkych a vysokých koncentrácií peroxidových radikálov, doxorubicínu a zlúčenín generujúcich ME sú zaujímavé z teoretického aj praktického hľadiska. Z teoretického hľadiska sú získané výsledky v dobrej zhode s koncepciou G. Selyeho a existujúcimi myšlienkami založenými na početných literárnych údajoch, že nízke dávky toxických látok (slabý chemický stres) majú stimulačný účinok a ich vysoké dávky majú zodpovedajúcim spôsobom poškodzujúcim účinkom až do bunkovej smrti. Okrem toho získané údaje naznačujú, že porušenie v systéme regulácie syntézy oxidu dusnatého a reaktívnych foriem kyslíka môže byť ďaleko od toho, aby bolo ľahostajné k proliferačnej aktivite nádorových buniek. Z praktického hľadiska sú získané výsledky zaujímavé vzhľadom na skutočnosť, že reálne populácie nádorových buniek v tele onkologických pacientov sú heterogénne a variabilné v mnohých fenotypových znakoch. V tejto súvislosti nie je možné vylúčiť možnosť existencie bunkových klonov v jednom nádorovom uzle s rôznym prahom citlivosti na radiačné a chemoterapeutické účinky. Výsledkom je, že špecifická protinádorová terapia môže viesť k odumretiu významnej masy nádorových buniek, ale zároveň má stimulačný účinok na proliferáciu jednotlivých vysoko odolných buniek, čo vedie k zovšeobecneniu nádorového procesu.

Regulácia proliferácie a apoptózy nádorových buniek je komplexný viacstupňový proces, ktorý v počiatočnom štádiu zahŕňa interakciu regulačnej molekuly so špecifickými receptormi. Keďže receptorový aparát pre molekuly voľných radikálov (s výnimkou oxidu dusnatého) ešte nebol charakterizovaný, zdalo sa nevyhnutné študovať parametre interakcia peroxyradikálov s plazmatickou membránou a ich vplyv.na metabolizmus hlavných lipidových zložiek membrán - fosfolipidov.

Výsledkom interakcie terciárneho butylhydroperoxidu s plazmatickými membránami nádorových buniek bol jeho rozklad za vzniku peroxidových radikálov, z ktorých môže vzniknúť oxidačný reťazec lipidov, proteínov a DNA. Štúdium kinetiky rozkladu GPTB v bunkovej suspenzii mastocytómu P-815, lymfómu EL-4 a Ehrlichovho karcinómu ukázalo, že tento proces v nádorových bunkách prebieha oveľa pomalšie ako v normálnych bunkách. Okrem toho bola odhalená extracelulárna produkcia proteínov s glutatiónperoxidázovou aktivitou a zlúčenín s nízkou molekulovou hmotnosťou s výraznou antiradikálovou aktivitou. To naznačuje existenciu extracelulárnej úrovne ochrany nádorových buniek pred oxidačným stresom, čo potvrdzujú údaje SapMhot, ktoré preukázali schopnosť ľudských leukemických buniek extracelulárne produkovať katalázu.

Ďalším aspektom interakcie voľných radikálov s membránami je vplyv na metabolizmus fosfolipidov, medzi ktoré patrí kyselina arachidónová. Je prekurzorom dôležitej triedy fyziologicky aktívnych zlúčenín – eikosanoidov, ktoré mnohí výskumníci považujú za lokálne hormóny a ovplyvňujú vnútrobunkové procesy vrátane proliferácie. V tejto práci sa ukázalo, že po aktivácii proliferácie transformovaných fibroblastov sa pozoruje zvýšenie metabolizmu kyseliny arachidónovej, čo sa prejavuje zvýšením jej inkorporácie do fosfolipidov, najmä do fosfatidylcholínu a kardiolipínu.

Štúdium účinku voľných radikálov na uvoľňovanie a inkorporáciu kyseliny arachidónovej do membrán nádorových buniek ukázalo, že terciárny butylhydroperoxid v nízkych koncentráciách, aktivujúci proliferáciu nádorových buniek, zvýšil uvoľňovanie kyseliny arachidónovej z fosfolipidov 3-krát bez ovplyvňujúci proces jeho začlenenia do nich. Pôsobením toxických dávok GPTB sa zistilo, že peroxid významne (7-krát) stimuloval uvoľňovanie mastných kyselín z bunkových fosfolipidov a inhiboval reparačné procesy, čo môže byť dôležitým faktorom pri narušení štrukturálneho a funkčného stavu membrán. . Uvoľňovanie kyseliny a-arachidonovej bolo spojené s aktiváciou PLA, zatiaľ čo aktivity lyzofosfolipidovej lipázy, acylCoA: lyzofosfatidylcholínacyltransferázy a acylCoA syntetázy sa pôsobením HPTB nezmenili.

Donory oxidu dusnatého mali podobný, ale menej výrazný účinok. Inkubácia P-815 mastocytómových nádorových buniek v médiu obsahujúcom NaCl v rôznych koncentráciách viedla k zvýšeniu uvoľňovania kyseliny a-arachidonovej z fosfolipidových membrán o 36 % v porovnaní s kontrolnou hladinou. L-arginín zároveň nemal aktivačný účinok na uvoľňovanie kyseliny arachidónovej z fosfolipidov membrán nádorových buniek. Štúdia inkorporácie kyseliny arachidónovej do fosfolipidov membrán nádorových buniek ukázala, že pridanie vysokých koncentrácií NaNO2 (10" M) do inkubačného média pre nádorové bunky mastocytómu P-815 viedlo k inhibícii tohto procesu.

Účinok donorov GPTB a oxidu dusnatého v koncentráciách stimulujúcich proliferáciu sa teda prejavuje zvýšením výťažku mastnej kyseliny, ktorá sa môže neskôr použiť ako substrát na syntézu biologicky aktívnych eikozanoidov. Metabolity kyseliny arachidónovej sa podieľajú na prenose proliferačného signálu a zvýšenie jej obsahu pôsobením voľných radikálov môže byť jednou z príčin zvýšenej proliferácie nádorových buniek. Na druhej strane nadmerné zvýšenie hladiny voľnej kyseliny arachidónovej vo vnútri buniek, ktoré bolo pozorované pri pôsobení HPTB a donoru oxidu dusnatého vo vysokých dávkach, ktoré pôsobia toxicky, vedie k apoptotickej smrti buniek novotvaru. Účasť voľnej kyseliny arachidónovej na indukcii apoptózy je podporená štúdiami preukazujúcimi jej dôležitú úlohu pri aktivácii kaspázy.

96, 160] a zvýšenie permeability mitochondriálnych membrán pre cytochróm C a AP7.

Paralelne so zvýšením koncentrácie voľnej kyseliny arachidónovej pôsobením toxických dávok peroxidu sa pozorovala akumulácia produktu hydrolýzy fosfolipázy, lyzofosfatidylcholínu. Lyzofosfatidylcholín sa tiež považuje za cytotoxický produkt, čo je detergent, ktorý ničí stabilitu lipidu b a vrstvy. Indukcia apoptózy nádorových buniek môže byť dôsledkom zvýšenia obsahu tak voľnej kyseliny arachidónovej, ako aj lyzofosfolipidov pri pôsobení vysokých koncentrácií voľných radikálov.

Zistili sme teda, že reguláciu tak proliferačnej aktivity nádorových buniek, ako aj indukciu apoptózy je možné uskutočňovať voľnými radikálmi prostredníctvom vplyvu na hladinu voľnej kyseliny arachidónovej, ktorá je pravdepodobne jednou zo zložiek univerzálneho intracelulárneho signálu. transdukčná dráha. Prepínanie a určenie špecifickej dráhy na realizáciu signálu závisí od koncentrácie aktívneho činidla.

Na udržanie stacionárnej hladiny voľných radikálov a blokovanie reťazových reakcií sa v bunkách exprimujú antioxidačné enzýmy, ktoré môžu mať významný vplyv na všetky fyziologické procesy regulované týmito vysoko aktívnymi molekulami. V prezentovanej práci bol teda zistený vzťah medzi aktivitou kľúčových enzýmov metabolizmu superoxidových radikálov, organických peroxidov a závažnosťou proliferatívnych procesov v nádorových bunkách tak v experimente na modeloch ascitického a solídneho rastu Ehrlichovho karcinómu, ako aj u človeka. nádorov. Významné (niekoľkonásobné) zvýšenie aktivity SOD bolo pozorované pri prechode buniek Ehrlichovho karcinómu z logaritmickej fázy, ktorá sa vyznačuje vyššou rýchlosťou rastu, do stacionárnej fázy. Štúdium xantínoxidázy, enzýmu katalyzujúceho tvorbu superoxidového radikálu, preukázalo jej maximálnu aktivitu v logaritmickej fáze rastu nádoru, pričom k výraznému poklesu aktivity tohto enzýmu došlo v stacionárnej fáze.

Zvýšenie aktivity xantínoxidázy v logaritmickej rastovej fáze na jednej strane a zníženie aktivity SOD na strane druhej dáva dôvod domnievať sa, že proces produkcie superoxidových radikálov prebieha aktívne pri vysokej rýchlosti rastu nádoru. , pričom je inhibovaná jeho eliminácia. Výsledky prezentované v tomto príspevku poukazujú na úzky vzťah medzi kľúčovými enzýmami metabolizmu superoxidových radikálov a aktivitou proliferatívnych procesov v nádorových bunkách. Inhibícia rýchlosti proliferácie v stacionárnej fáze rastu nádoru môže byť podľa nášho názoru spojená s výrazným zvýšením aktivity superoxiddismutázy v tejto fáze. Možno konštatovať, že SOD, riadením koncentrácie Or, je zjavne jedným z regulátorov proliferačnej aktivity. Významný rozdiel v aktivite enzýmov v ascitickej a pevnej forme je vysvetlený skutočnosťou, že ascitický nádor je charakterizovaný vysokou rýchlosťou bunkovej proliferácie.

Preukázal sa aj úzky vzťah medzi aktivitou glutatión-dependentných enzýmov a fázou a formou rastu Ehrlichovho karcinómu. Aktivita glutatión-dependentných enzýmov - GP a GT v ascitických nádorových bunkách v logaritmickej rastovej fáze bola významne nižšia v porovnaní s inými rastovými fázami a enzýmová aktivita v solídnom nádore. V stacionárnej fáze rastu bolo pozorované výrazné zvýšenie aktivity oboch enzýmov v pevnej aj ascitickej forme. Pretože tieto enzýmy regulujú intracelulárnu zásobu organických peroxidov, ich účasť na procesoch regulujúcich proliferáciu nádorových buniek je celkom pravdepodobná.

Na príkladoch malígnych a benígnych nádorov ľudskej mliečnej žľazy bolo vykonané porovnávacie hodnotenie aktivity antioxidačných enzýmov v závislosti od mitotického indexu študovaných nádorov. Tieto štúdie odhalili rovnaké trendy smerom k poklesu aktivity AOF so zvýšením počtu deliacich sa buniek, čo bolo preukázané v experimentálnych modeloch.

Zistilo sa, že závislosť enzymatickej aktivity od závažnosti proliferatívnych procesov u benígnych a malígnych nádorov má zásadné rozdiely.

Preukázali sme teda, že pri fibroadenómoch mliečnej žľazy so zvýšením mitotického indexu (do 7-12°/00) bolo pozorované zvýšenie aktivity takmer všetkých študovaných enzýmov, pričom najvýraznejšie bolo zvýšenie zaznamenané pre katalázu a glutatión transferázu. Najmenej významná bola zmena aktivity glutatiónperoxidázy. Nízke hodnoty aktivity xantínoxidázy, ktorá produkuje superoxidový radikál, boli pozorované v tkanivách benígnych nádorov s nízkou rýchlosťou proliferácie. Takéto výsledky pravdepodobne naznačujú fyziologické zvýšenie aktivity AOF v reakcii na zvýšenie produkcie aktivovaných metabolitov kyslíka počas delenia buniek, ich včasnú detoxikáciu a udržiavanie redoxnej rovnováhy v bunkách benígnych nádorov.

Naproti tomu v tkanivách rakoviny prsníka má forma závislosti aktivity AOF od mitotického indexu iný charakter. U nádorov s najvyšším mitotickým indexom (>35°/oo) bola zaznamenaná najnižšia aktivita SOD, GT, HP, GT. Jedinou výnimkou bola vysoká aktivita katalázy. Pokles aktivít GP a GR so zvýšením počtu mitóz v nádoroch bol lineárny, zatiaľ čo zmeny v SOD a HT boli vyjadrené komplexnejším vzťahom. Prezentované výsledky naznačujú, že k eliminácii AKM v nádorových bunkách nedochádza v náležitom rozsahu. Zvýšenie mitotickej aktivity malígnych nádorov môže byť sprevádzané zvýšením produkcie superoxidového radikálu. Tento predpoklad je potvrdený zvýšením aktivity xantínoxidázy, ktorá katalyzuje tvorbu endogénneho superoxidového radikálu v mnohých aktívne proliferujúcich nádoroch, ako ukázali naše experimenty. Existujúce experimentálne údaje potvrdzujú predpoklad, že jeho koncentrácia sa v aktívne proliferujúcich bunkách zvyšuje vo fyziologických medziach. Množstvo prác preukázalo vysokú konštitutívnu hladinu peroxidu vodíka v nádorových bunkách. Je pravdepodobné, že tieto radikály sa ďalej podieľajú na oxidačnej modifikácii DNA, spôsobujú genotoxický účinok a podporujú progresiu nádoru, udržiavajúc jeho malígny stav, invazívnosť a metastatický potenciál.

Napriek skutočnosti, že na definitívne závery o úlohe AOF v regulácii proliferácie nádorových buniek sú potrebné ďalšie štúdie, v súčasnosti sa uskutočnili prvé štúdie o použití týchto enzýmov v terapii nádorov. Údaje o schopnosti SOD inhibovať bunkovú proliferáciu so zvýšenou expresiou enzýmu slúžili ako základ pre prvé experimenty s použitím SOD a SOD mimetík ako protirakovinové lieky. Experiment ukázal regresiu nádorových kultúr po transfekcii cDNA enzýmu Mn-SOD do nich. Možnosť inhibície proliferácie nádorových buniek antioxidačnými enzýmami teda otvára perspektívu ich použitia ako protinádorových činidiel.

Dáta prezentované v tejto práci dokazujú možnosť regulácie voľnými radikálmi takých dôležitých funkčných stavov, ako je proliferácia a apoptóza nádorových buniek. V mechanizme týchto procesov hrá dôležitú úlohu interakcia kyslíkových a dusíkových radikálov s intracelulárnymi systémami prenosu signálu a ich konečný efekt závisí od koncentrácie. V bunke však môže naraz vzniknúť niekoľko typov molekúl voľných radikálov, ktoré môžu vzájomne pôsobiť. Vplyv tejto interakcie na proliferáciu nádorových buniek a indukciu apoptózy v nich ešte nebol dostatočne študovaný. Preto sa zdalo dôležité študovať vplyv kombinácie látok generujúcich peroxyradikály a donorov oxidu dusnatého na proliferatívnu aktivitu a apoptózu nádorových buniek. Štúdie tohto druhu môžu byť zaujímavé aj preto, že mnohé klasické metódy liečby onkologických ochorení používané v klinickej praxi (chemo-, radiačná a fotodynamická terapia) sú založené na mechanizme voľných radikálov. Preto je dôležité zhodnotiť možnosť využitia donorov oxidu dusnatého na farmakologické účely v komplexnej terapii nádorov.

Ďalšia séria experimentov bola venovaná štúdiu kombinovaného účinku voľných radikálov a NO na proliferáciu a apoptózu nádorových buniek v in vitro modelovom systéme.

Predbežné štúdie ukázali koncentračnú závislosť účinku peroxidov na proliferatívnu aktivitu buniek Ehrlichovho karcinómu, ktorá sa prejavila inhibíciou syntézy DNA pri vysokých koncentráciách a stimuláciou tohto procesu nad kontrolné hodnoty pri nízkych dávkach použitých zlúčenín.

Pri štúdiu kombinovaného účinku oxidu dusnatého a voľných radikálov na proliferáciu nádorových buniek sa ukázalo, že donory NO v netoxických koncentráciách v kombinácii so subtoxickými koncentráciami peroxidov zvýšili inkorporáciu -tymidínu do DNA v porovnaní s kontrolnou populáciou nádorové bunky inkubované len so zdrojmi peroxidových radikálov.alebo na to nemali žiadny vplyv. Kombinácia G)-donorov v rovnakých koncentráciách s cytotoxickými dávkami GPTB a ABAP, ktoré inhibovali syntézu DNA o viac ako 80 %, viedla k zníženiu antiproliferatívneho účinku voľných radikálov. Analýzou získaných údajov možno konštatovať, že oxid dusnatý znižuje toxický účinok peroxyradikálov na nádorové bunky a zvyšuje ich rast stimulujúci účinok, keď sa používa v netoxických koncentráciách, čo vo všeobecnosti naznačuje ochranné vlastnosti NO v kultúrach malígnych buniek. Tento účinok môže byť spôsobený antioxidačnými vlastnosťami oxidu dusnatého, čo pravdepodobne určuje jeho cytoprotektívny účinok. Schopnosť NO viazať organické peroxidy za vzniku peroxydusitanov, ktoré sa premieňajú na dusičnany, potvrdzuje jeho antioxidačné vlastnosti. Okrem toho je známe, že NO viaže membránové a intracelulárne komplexy železa, čo zabraňuje rozkladu peroxidov s tvorbou radikálov a rozvoju reťazových reakcií oxidácie voľných radikálov.

Štúdium kombinovaného účinku oxidu dusnatého a voľných radikálov na indukciu apoptózy v nádorových bunkách Ehrlichovho karcinómu ukázalo aktiváciu tohto procesu pri kombinovanom použití NaNCb (10"5 M) a ABAP (OD mM), L-arginínu (5x10"3 M) a ABAP (0,1 mM), L-arginín a HPTB (0,1 mM). V iných prípadoch sa pozoroval pokles apoptotickej bunkovej smrti. Na základe získaných výsledkov možno predpokladať, že kombinované použitie donorov oxidu dusnatého a voľných radikálov v nízkych koncentráciách môže viesť k zvýšenej proliferácii so súčasnou indukciou apoptózy.

Jedným zo špeciálnych prípadov účinkov voľných radikálov na nádorové bunky je chemoterapia. lieky najmä antracyklínové antibiotiká. Použitie kombinácie doxorubicínu s donormi oxidu dusnatého viedlo k významnému zvýšeniu procesov syntézy DNA v nádorových bunkách Ehrlichovho karcinómu, s výnimkou zvýšenia nádorovo toxického účinku doxorubicínu (10 "M), ktorý bol pozorovaný pri dusičnanom donory oxidu NaN02 a SNP boli pridané v koncentráciách 10" M. L-arginín v kombinácii s doxorubicínom mal výrazný cytoprotektívny účinok. Súčasne bola nájdená zlúčenina, ktorá významne posilnila cytotoxický účinok doxorubicínu. Takže nitrózoguanidín v koncentrácii

10-4M zvýšilo inhibičný účinok doxorubicínu na syntézu DNA trojnásobne.

Získané výsledky teda ukazujú, že použitie doxorubicínu v kombinácii s donormi oxidu dusnatého in vitro odhalilo prítomnosť komplexného vzorca v účinku rôznych kombinácií dávok antibiotík a donorov oxidu dusnatého na proliferatívnu aktivitu nádorových buniek. Donory oxidu dusnatého majú nejednoznačný vplyv na tumor-toxický účinok doxorubicínu, ktorý závisí od chemickej štruktúry a koncentrácie použitých zlúčenín. Odhalený pokles antiproliferatívneho účinku doxorubicínu a indukcia apoptózy nádorových buniek donormi NO naznačuje, že oxid dusnatý môže byť jedným z faktorov prispievajúcich k vzniku klonov nádorových buniek rezistentných na doxorubicín so zvýšenou proliferatívnou aktivitou.

Vyhodnotením údajov získaných v tejto práci môžeme konštatovať, že NO je pravdepodobne faktorom, ktorý chráni DNA nádorových buniek pred škodlivým účinkom doxorubicínu a prispieva k rozvoju nádorovej rezistencie voči antracyklínovým antibiotikám. Treba však poznamenať, že v niektorých situáciách došlo k zosilneniu škodlivého účinku doxorubicínu. Výsledkom je, že konečný výsledok kombinovaného pôsobenia oxidu dusnatého a voľných radikálov závisí od mnohých faktorov: od koncentrácie účinných látok, od typu buniek, od podmienok pre uskutočnenie experimentov. Vzhľadom na schopnosť niektorých protinádorových liečiv zvyšovať tvorbu NO je podľa nášho názoru potrebné ďalej skúmať protinádorovú aktivitu kombinácie liečiv používaných v chemoterapii.

Podľa nášho názoru sú nitrózozlúčeniny najsľubnejšie pre klinické využitie zo všetkých študovaných donorov oxidu dusnatého, čo potvrdzuje aj existencia protinádorových liečiv z triedy nitrózomočoviny, ktoré našli terapeutické uplatnenie. Na úplnejšie vyhodnotenie schopnosti nitrózoguanidínu modulovať protinádorový účinok doxorubicínu sa uskutočnila štúdia in vivo. Ukázalo sa, že MNNG môže zvýšiť terapeutický účinok doxorubicínu, ktorý sa prejavil vo významnom znížení veľkosti nádoru, ako aj zvýšením indukcie apoptózy a nekrózy buniek Ehrlichovho karcinómu v porovnaní s pôsobením jedného chemoterapeutického lieku. . Predtým sa ukázalo, že protinádorová účinnosť cyklofosfamidu sa zvýšila, keď bol kombinovaný s donorom NO proti leukemickým bunkám P-388. Porovnaním týchto skutočností môžeme konštatovať, že na zvýšenie účinnosti chemoterapeutických látok používaných na klinike je účelné použiť donory oxidu dusnatého. Na konečný záver o použití donorov NO v chemoterapii nádorov sú však potrebné ďalšie štúdie závislosti protinádorového účinku od dávky, chemickej štruktúry zlúčenín a štádia nádorového procesu.

Ak zhrnieme prezentované výsledky, môžeme povedať, že cicavčie bunky si vyvinuli nielen mechanizmy, ktoré im umožňujú prispôsobiť sa koexistencii s agresívnymi voľnými radikálmi, ale aj spôsoby, ako tieto vysoko aktívne molekuly využiť na reguláciu životných funkcií. Voľné radikály hrajú dôležitú fyziologickú úlohu v živote tela a ich biologické účinky zahŕňajú reguláciu proliferácie a apoptotickej bunkovej smrti. Počas malígnej transformácie sú tieto mechanizmy prispôsobené tak, aby zabezpečili maximálnu schopnosť prežitia a rastu nádorových buniek. Ak program funguje v normálnych bunkách obmedzený počet delenia a vstupu do diferenciácie a následne apoptózy sú voľné radikály v nádorových bunkách jedným z nástrojov na zabezpečenie ich nekontrolovaného rastu, mutagenézy a progresie nádoru.

Okrem všeobecne akceptovaných molekulárno-biochemických charakteristík nádorových buniek, medzi ktoré patrí prítomnosť mutácií v génoch, ktorých produkty kontrolujú proliferáciu a apoptózu, autokrinný typ regulácie rastu a aktiváciu intracelulárnych signálnych dráh, sme objavili nové atribúty rastu nádoru. . Na základe našich údajov je potrebné poznamenať, že malígne bunky sa odlišujú od normálnych takými charakteristikami, ako sú

Extracelulárna produkcia enzymatických a neenzymatických antioxidantov

Oneskorený rozklad exogénnych peroxidov

Rýchla aktivácia a vysoká indukovateľnosť enzýmov podieľajúcich sa na tvorbe lipidových signálnych molekúl

Dysregulácia redoxnej homeostázy v nádorových bunkách, inhibícia aktivity antioxidačných enzýmov v rýchlo rastúcich nádoroch

Použitie oxidu dusnatého ako faktora chrániaceho nádorové bunky pred oxidačným stresom.

Na základe výsledkov tejto štúdie a literárnych údajov je možné identifikovať niekoľko hlavných mechanizmov vplyvu voľných radikálov na proliferáciu a apoptózu nádorových buniek (obr. 29). Je potrebné zdôrazniť existenciu koncentračnej závislosti vplyvu voľných radikálov na bunkové fyziologické účinky a metabolické procesy. Vo vysokých koncentráciách majú škodlivý účinok na nádorové bunky, čo sa prejavuje inhibíciou syntézy DNA, narušením procesov opravy bunkovej membrány. Výsledkom tohto účinku je inhibícia proliferácie nádorových buniek a indukcia apoptózy v nich.

Ryža. 29. Možné mechanizmy regulácie proliferácie a apoptózy nádorových buniek voľnými radikálmi.

Naopak, nízke koncentrácie voľných radikálov zvyšujú prenos signálov stimulujúcich rast, a to aj prostredníctvom uvoľňovania kyseliny arachidónovej, aktivujú syntézu DNA, čo vedie k aktivácii proliferatívnych procesov v nádorových bunkách.

Darcovia NO môžu mať tiež nejednoznačný vplyv na procesy proliferácie a apoptózy nádorových buniek. Oxid dusnatý sa vďaka svojim multipotentným vlastnostiam, určeným ako cytotoxicitou radikálu, tak aj jeho komunikačnou aktivitou, podieľa na udržiavaní rastu nádoru.

V tomto štádiu je ťažké nájsť súvislosť medzi pôsobením všetkých faktorov, ktoré podmieňujú terapeutický účinok donorov oxidu dusnatého, možno však konštatovať, že rozhodujúci význam pri ich tvorbe má koncentrácia a chemická štruktúra zlúčenín generujúcich NO. fyziologické reakcie. V tejto práci sme získali výsledky ukazujúce zásadnú možnosť vývoja smeru využitia donorov oxidu dusnatého na zvýšenie terapeutickej účinnosti doxorubicínu. Najsľubnejšie pre vývoj smerovania využitia donorov oxidu dusnatého v onkológii je vykonávanie komplexných štúdií, ktoré kombinujú štúdium ich antikarcinogénnych, protinádorových, antimetastatických a imunomodulačných aktivít, čo môže v konečnom dôsledku viesť k ich širokému klinickému použitiu.

Na záver je potrebné poznamenať, že narušenie redoxnej homeostázy hrá dôležitú úlohu v biológii rakoviny, ktorá spočíva nielen v spúšťaní karcinogenézy, ale aj v udržiavaní rastu nádoru, čím sa určuje možnosť regulačného vplyvu na procesy voľných radikálov v malígne bunky môžu byť plodným predpokladom spôsobov, ako vytvoriť nový typ protirakovinových liekov. Kontrola intenzity reakcií voľných radikálov môže byť nevyhnutná na zlepšenie účinnosti preventívnych opatrení a protinádorovej liečby.

Zoznam odkazov na výskum dizertačnej práce Doktorka lekárskych vied Kondakova, Irina Viktorovna, 2005

1. Abbasová S.G. Systém Fas-FasL za normálnych a patologických stavov. / S.G. Abbasová, V. M. Lipkin, H. H. Trapeznikov, N.E. Kushlinsky // Vopr. Biol. Med. Pharm. Chémia. - 1999. - č. 3. - S. 3-17.

2. Avdeeva O.S. EPR štúdium molekulárnych mechanizmov pôsobenia žiarenia a metylnitrózomočoviny na tkanivá zdravých zvierat a zvierat s nádormi. / O.S. Avdeeva // Abstrakt práce. diss. cand. fyzika a matematika vedy - Moskva. 1980.- 20 s.

3. Amosov I.S. Kyslíkový stav a angioarchitektonika nádorov rôznych typov a ich zmeny počas radiačnej terapie / I.S. Amosov, R.K. Karaulov, H.A. Sazonová // Rádiobiológia. 1984. - č. 24. - S. 630635.

4. Askárová E.L. Tvorba superoxidového radikálu a fluidita membránových lipidov Acholeplasma Laidlawii počas starnutia bunkovej kultúry / E.L. Askarová, A.B. Kapitanov, V. Koltover, O.S. Tatishchev // Biofyzika. 1987. - T. XXX11, vydanie. 1. - S. 95-99.

5. Afanasiev I.B. Štúdium mechanizmu interakcie medzi protirakovinovým antibiotikom adriamycínom a O2 radikálovým aniónom./I.B. Afanasiev, N.I. Polozova // Antibiotiká a med. biotechnológie. 1986.- T. 31.- č.4.- S.261-264.

6. Belushkina H.H. Molekulárny základ apoptózy./ H.H. Belushkina., A. Hassan Hamad, S.E. Severin // Vopr. Biol. Med. Pharm. Chémia. -1998. -Č.4.-S. 15-24.

7. Blokhin H.H. Chemoterapia neoplastické ochorenia. / H.H. Blokhin, N.I. Prekladateľ// M.: Medicína, 1984. 304 s.

8. Vanin A.F. Oxid dusnatý v biomedicínskom výskume. / A.F. Vanin // Bulletin Ruskej akadémie lekárskych vied. - 2000. - č. 4. s. 3-5.

9. Yu Vartanyan JI.C. Štúdium stanovenia aktivity SOD v živočíšnych tkanivách s tetranitrotetrazolovou modrou / JI.C. Vartanyan, S.M. Gurevich // Otázky medu. chémia. 1982. - č. 5. - S.23-56.

10. Vartanyan JI.C. Tvorba superoxidových radikálov v membránach subcelulárnych organel regenerujúcej sa pečene / JI.C. Vartanyan, I.P. Sadovníková, S.M. Gurevich, I.S. Sokolova // Biochémia. 1992. - V. 57, číslo 5. - S. 671 -678.

11. Viktorov I.V. Úloha oxidu dusnatého a iných voľných radikálov v ischemickej patológii mozgu. / I.V. Viktorov // Bulletin Ruskej akadémie lekárskych vied.-2000.-№4.- S. 5-10.

12. Voskresenský O.N. Antioxidačný systém, ontogenéza a starnutie / O.N. Vokresenský, I.A. Zhutaev // Otázky medu. Chémia-1994-č.3.-S. 53-56.

13. Gause G.F. Štúdium molekulárnych mechanizmov účinku a použitie protinádorových antibiotík. / G.F. Gause, Yu.V. Angelica // Antibiotiká. 1982, - T. 27. - č. 2. - S. 9-18.

14. Grigoriev M.Yu. Apoptóza za normálnych a patologických stavov./ M.Yu. Grigoriev, E.H. Imjanitov, K.P. Hanson // Med. akad. časopis.- 2003.- T.Z.- č.3.-S. 3-11.

15. Dyatlovitskaya E. V. Lipidy ako bioefektory. / E. V. Dyatlovitskaya, V.V. Bezuglov//Biochémia.- 1998.-T. 63.-№1.-S. 3-5.

16. Kazmin S.R. Proliferatívna aktivita pri Ehrlichovom ascitickom karcinóme / S.R. Kazmin, E.V. Kolosov // Problémy onkológie. - 1979. - Číslo 7.-S. 60-64.

17. Kolomiytseva I.K. Radiačná biochémia membránových lipidov. / I.K. Kolomiytseva Moskva: Nauka.- 1989.- 181 s.

18. Kombinovaná a komplexná liečba pacientov so zhubnými nádormi. // vyd. V.E. Chissová M.: Medicína, - 1989. - 560 s.

19. Konovalová N.P. Donor oxidu dusnatého zvyšuje účinnosť cytostatickej liečby a odďaľuje rozvoj liekovej rezistencie. / N.P. Konovalová // Vopr. Onkológia.-2003.-T.49.-č.1.-S.71-75.

20. Konovalová N.P. Vplyv donoru oxidu dusnatého na terapeutickú účinnosť cytostatík a syntézu DNA.// N.P. Konovalová, JI.M. Volková, L.Yu. Jakušenko a ďalší // Ruský bioterapeutický časopis, - 2003, - č.2. 52-55.

21. Kopnin B.P. Mechanizmy účinku onkogénov a nádorových supresorov. / B. P. Kopnin // Biochémia. 2000.- T.65. - č. 1. - S. 2-77.

22. Kudrin A.B. Stopové prvky a oxid dusnatý sú polyfunkčné ligandy. /A.B. Kudrin // Vopr. Biol. Med. Pharm. Chémia. - 2000.-№ 1. - S. 3-5.

23. Kudryavtsev Yu.I. Dynamika apoptotických udalostí indukovaných faktorom nekrózy nádorov v leukemických bunkách U-937. / Yu.I. Kudryavtsev, A.A. Filchenkov, I.V. Abramenko, JI.3 Polishchuk, I.I. Slukvin, N.I. Belous // Exp. Onkológia.- 1996.-T.18.- S. 353-356.

24. Kutsy M.P. Zapojenie proteáz do apoptózy. / M.P. Kutsiy, E.A. Kuznecovová, A.I. Gaziev // Biochemistry.-1999.- v.64.-Vol.2.-S.149-163.

25. Lankin V.Z. Enzymatická regulácia peroxidácie lipidov v biomembránach: úloha fosfolipázy A2 a glutatión-S-transferázy /V.Z. Lankin, A.K. Tikhaze, Yu.G. Osis, A.M. Wiechert. // DAN ZSSR. 1985. - T. 282. - S. 204-207.

26. Levina V.I. Protirakovinové liečivo hydroxymočovina je donor oxidu dusnatého. / V A. Levina, O.V. Azizov, A.P. Arzamastsev a ďalší // Vopr. biol., med. a farma. chémia. 2001. - č. 1. - S. 47-49.

27. Lichtenštajnsko A. V. Rast nádoru: tkanivá, bunky, molekuly. / A.V. Lichtenstein, B.C. Chapot. // Patol. fyziol. a experimentovať. terapiu. -1998.-№3.- S. 25-44.

28. Lobysheva I.I. Interakcia komplexov železa obsahujúcich dinitrozyltiol s peroxydusitanom a peroxidom vodíka in vitro./I.I. Lobysheva, V.A. Serezhenkov, A.F. Vanin // Biochémia. -1999.-T.64-S. 194-2000.

29. Lutsenko C.B. Molekulárne mechanizmy protinádorovej aktivity antracyklínových antibiotík. /C.B. Lucenko, N.B. Feldman, S.G. Tumanov., S.E. Severin // Vopr. biol.med. a farma. Chémia.-2001.- č.2.-S.-3-9.

30. Lushnikov E.F. Bunková smrť (apoptóza). / E.F. Lushnikov, A.Yu. Abrosimov // M. Medicína. 2001. - 192 s.

31. Manukhina E.B. Oxid dusnatý v kardiovaskulárnom systéme: úloha pri adaptívnej ochrane. / E.B. Manukhina, I.Yu. Malyšev, Yu.V. Archipenko. // Bulletin Ruskej akadémie lekárskych vied. 2000.- №4. s. 16-21.

32. Menytsíková E.B. Biochémia oxidačného stresu. Oxidanty a antioxidanty. / Menytsikova E.B., Zenkov N.K., Shergin S.M. -Novosibirsk: Nauka, 1994. 196 s.

33. Metelitsa D.I. Aktivácia kyslíka enzýmovými systémami / D.I. Metelitsa-Moskva: Nauka, 1982. 256 s.

34. Napalkov N.P. Rakovina a demografický prechod. / N.P. Napalkov // Problémy onkológie. 2004. - T. 50. - č.2. - S. 127-144.

35. Orlov pred Kr. Elektrónová štruktúra a voľné radikálové mechanizmy protinádorovej aktivity antracyklínových antibiotík. / Orlov V.S., Lužkov V.B., Bogdanov G.N. // Odborník na aktuálne problémy. chemoterapia nádorov. - 1982.- S. 30-32.

36. Podberyozkina N.B. Biologická úloha superoxiddismutáza / N.B. Podberezkina., L.F. Osinskaya. // Ukrajinský biochemický časopis. 1989. - V. 61, č.2. - V dňoch 14.-27.

37. Proskuryakov S.Ya. Oxid dusnatý v neoplastickom procese. Proskuryakov S.Ya., Konoplyannikov A.G., Ivannikov A.I. a kol. // Problémy onkológie. 2001. - T.47. - N3. - S. 257-269.

38. Raikhlin T.N. Regulácia a prejavy apoptózy za fyziologických podmienok a v nádoroch. / Raikhlin N. T., Raikhlin A.N. // Problematika onkológie. -2002. -T48. č. 2. s. 159-171.

39. Reutov V.P. Mediko-biologické aspekty cyklov oxidu dusnatého a superoxidového anoínu. / Reutov V.P. // Bulletin Ruskej akadémie lekárskych vied. 2000.-№4.-S. 30-34.

40. Reutov V.P. Cyklické premeny oxidu dusnatého v tele cicavcov. / Reutov V.P., Sorokina E.G., Ochotin V.E., Kositsyn N.S. //Moskva, Nauka. -1998.- 159 s.

41. Ryabov G.A. Úloha oxidu dusnatého ako regulátora bunkových procesov pri vzniku zlyhania viacerých orgánov / Ryabov G.A., Azizov Yu.M. // Anestéziológia a resuscitácia. 2001 - V.1. - S. 812.

42. Saprin A.C. Oxidačný stres a jeho úloha v mechanizmoch apoptózy a rozvoji patologických procesov. / A.S. Saprin., E.V. Kalinina // Pokroky v biologickej chémii. 1999. - T. 39. - S. 289-326.

43. Sidorenko S.P. Apoptóza Fas/CD95-onocpeflyeMbifi v patogenéze lymfoidných novotvarov. / S.P. Sidorenko // Experimentálna onkológia. 1998. - T. 20. - S. 15-28.

44. Skulachev V.P. Kyslík a javy programovanej smrti. / Skulachev V.P. Moskva, 2000. - 48 s.

45. Suchanov V.A. Mechanizmy hormonálnej regulácie rastu nádorových buniek. / V.A. Sukhanov // Pokroky v biologickej chémii. - 1995.- T.35. -S. 97-134.

46. ​​​​Filchenkov A.A. Moderné predstavy o úlohe apoptózy v raste nádoru a jej význame pre protinádorovú terapiu. / A.A. Filchenkov // Exp. Onkológia.- 1998.- T. 20. S.259-269.

47. Filchenkov A.A. apoptóza a rakovina. / A.A. Filčenkov, R.S. Rack // - Kyjev: Morion, 1999.- 184 s.

48. Shapot B.C. Biochemické aspekty rastu nádoru / V.C. Chapot. Moskva: Nauka, 1975. -304 s.

49. Shvemberger I.N. Apoptóza: úloha v normálnej ontogenéze a patológii. / Shvemberger I.N., Ginkul L.B. // Problematika onkológie. -2002. T.48, - S. 153-158.

50. Emmanuel N.M. / Emmanuel N.M., Saprin A.N.// Dokl. Akadémia vied ZSSR.-1968.-T. 182.-S. 733-735.

51. Yarilin A.A. Apoptóza. Povaha javu a jeho úloha v celom organizme. / A.A. Yarilin // Pat fiziol a experimentálna terapia. 1998. -№2.-S. 38-48.

52. Abe J. Big mitogénom aktivovaná proteínkináza 1 (BMK1) je redox-senzitívna kináza. / Abe J., Kusuhara M., Ulevitch R.J. // J. Biol. Chem. -1996.-V. 271.-s. 16586-16590.

53. Adams J.M. Rodina proteínov Bcl-2: arbitri prežitia buniek. / Adams J.M., Cory S. // Veda. 1998.-V.281.- P.1322-1326.

54. Allen R.G. Oxidačný stres a génová regulácia. / Allen R.G., Tressini M. // Free Radical Biol. Med. 2000.-V.28.- S.463-499.

55. Ambrosone C.B. Oxidanty a antioxidanty pri rakovine prsníka. / Ambrosone C.B. // Antioxidačný redoxný signál. 2000. - Zv. 2, č. 4. S. 903-917.

56. Ambs S. Interaktívne účinky oxidu dusnatého a nádorového supresorového génu p53 pri karcinogenéze a progresii nádoru. / Ambs S., Hussain S.P. a Harris C.C. // FASEB J.- 1997.- Vol 11.- 443-448.

57. Amstad P. A. Mechanizmus indukcie c-fos aktívnym kyslíkom / P. A. Amstad P. A. Krupitza, G. Gerutti // Cancer Res. 1992. - Číslo 52. - S. 3952-3960.

58. Amstad P.A. BCL-2 sa podieľa na prevencii bunkovej smrti vyvolanej oxidantom a na znižovaní produkcie kyslíkových radikálov / Amstad P.A., Liu H., Ichimiya M. et all // Redox Rep. 2001. - V.6. - S.351-362.

59. Anderson K.M. Inhibítory 5-lipoxigenázy znižujú proliferáciu buniek PC-3 a iniciujú smrť nekrotických buniek. / Anderson K.M., Seed T., Vos M., et al. // prostata. 1998.- V. 37.- S. 161-173.

60. Andreas N. K. Zápal, imunoregulácia a indukovateľná syntáza oxidu dusnatého. / Andreas N. K., Billiar T. R. // J. Leukoc. Biol.-1993.- V. 54. S. 171-178.

61. Arai T. Vysoká akumulácia oxidačného poškodenia DNA, 8-hydroxyguanín, u myší s deficitom Mmh/ogg 1 chronickým oxidačným stresom./ Arai T., Kelle V.P., Minowa O., et al. // Karcinogenéza.- 2002. V. 23.- S. 2005-2010.

62. Arany I. Indukcia iNOS mRNA interferónom-gama v epitelových bunkách je spojená so zastavením rastu a diferenciáciou. / Arany I., Brysk M.M., Brysk H., et al. // Rakovinové listy. 1996.- VI10.- S. 93-96.

63. Archer S. Meranie oxidu dusnatého v biologických modeloch. / Archer S.// FASEB J.- 1993. V. 7.- S. 349-360.

64. Aust A.E. Mechanizmy oxidácie DNA. / Aust A.E., Eveleigh J.F. // P.S.E.B.M. 1999.- V.222.- S.246-252.

65. Babich M.A. Synergické zabíjanie vírusom transformovaných ľudských buniek interferónom a N-metyl-N"-nitro-N-nitrózoguanidínom. /Babich M.A., Day R.S. // Carcinogenesis. 1989. - V. 10.- P. 265-268.

66. Bachur N.R. Aktivácia NADFH cytochróm P450 reduktázy chinónových protirakovinových látok na voľné radikály. / Bachur N.R., Gordon S.L., Gee M.V. a kol. //Proc. Natl. Akad. sci. USA. 1979. - Zv. 76.-N2. - S. 954-957.

67. Bae Y.S. Tvorba peroxidu vodíka vyvolaná epidermálnym rastovým faktorom (EGF). / Bae Y.S., Kang S.W., Seo M.S., Baines I.C., a kol. // J. Biol. Chem. 1997, V. 272.- S. 217-221.

68. Balakirev M.Y. Modulácia prechodu mitochondriálnej permeability oxidom dusnatým / Balakirev M.Yu., Khramtsov V.V., Zimmer G. // European J. Biochem.- 1997.- V. 246. S. 710-718.

69. Balamurugan K. Kaspáza-3: jej potenciálne zapojenie do apoptózy lymfocytov indukovanej Cr(III) / Balamurugan K., Rajaram R., Ramasami T. // Mol Cell Biochem. 2004. - V.259. - S.43-51.

70. Bannai S. Export glutatiónu z ľudských diploidných buniek v kultúre / S. Bannai, H. Tsukeda // J. Biol. Chem. 1979. - Zv. 254. - S. 3440-3450.

71. Barnouin K. H2C>2 indukuje prechodné viacfázové zastavenie bunkového cyklu v myších fibroblastoch prostredníctvom modulácie cyklickej expresie D a P21. / Barnouin K., Dubuisson M., Child E.S., et al. // J.Biol. Chem. 2002.- V. 277.- S. 13761-13770.

72. Bartolli G. A. Predpokladaná úloha superoxiddismutázy pri kontrole rastu nádoru / G. Bartolli, G. Minotti, S. Borello // Oxyradikály a systémy zachytávajúce látky. 1983. - Elsevier Science Publishing. - S. 179-184.

73. Pivá R.F. Spektrofotometrická metóda na meranie rozkladu peroxidu vodíka katalázou. / Beers R.F., Sizer J.W. // J. Biol. Chem. -1952.-Zv. 195.-s. 133-140.

74. Benchekroun M.N. Doxorubicínom indukovaná peroxidácia lipidov a aktivita glutatiónperoxidázy v nádorových bunkových líniách vybraných na rezistenciu na doxorubicín. / Benchekroun M.N., Pourquier P., Schott B., Robert J. // Eur. J Biochem. 1993.-V. 211.-s. 141-146.

75. Bhatnagar A. Oxidačný stres mení špecifické membránové prúdy v izolovaných srdcových myocytoch. / Bhatnagar A., ​​​​Srivastava S.K., Szabo G. // Circulation Res. 1990.- V.67.- S. 535 - 549.

76. Borowits S.M. Úloha fosfolipázy A2 pri peroxidácii mikrozomálnych lipidov indukovanej t-butylhydroperoxidom. / Borowits S.M., Montgomery C. // Biochim. Biophys. Res. komun. 1989.- V. 158.- S. 1021-1028.

77. Bos J.L. Ras onkogény v ľudskej rakovine: prehľad./J.L. Bos // Cancer Res. 1989. - V.49.- S. 4682-4689.

78. Bouroudian M. Použitie mikrokolóny s kyselinou kremičitou na testovanie acyl-CoA: lyzofosfatidylcholín acyltransferázy. / Bouroudian M., Chautan M., Termine E. // Biochim. Biophys. acta. 1988.- V. 960.- S. 253-256.

79. Bouroudian M. In vitro stav inkorporácie kyseliny dokozohexaénovej do phpsfotidylcholínu pomocou enzýmov srdca potkana. / Bouroudian M., Nalbone G., Grinberg A., Leonardi J., Lafont H. // Mol. bunka. Biochem. 1990.-V.93.-P.119-128.

80. Drzý A.R. Kyselina arashidónová ako bioaktívna molekula. /A.R. Drzý // J. Clin. Invest.- 2001.-V. 107.-s. 1339-1345.

81. Breuer W. Novo dodaný transferín železa a oxidačné poškodenie buniek. / Breuer W., Greenberg E., Cabantchik Z. I. // FEBS Letters. 1997.- V. 403.-P. 213-219.

82 Briehl M.M. Modulácia antioxidačnej obrany počas apoptózy. / Briehl M.M., Baker A.F., Siemankowski L.M., Morreale J. // Oncology Res. 1997.- V. 9.- S. 281-285.

83. Brox L. Vplyv anoxie na poškodenie DNA indukované antracyklínom v línii ľudských lymfoblastoidných buniek RPMI 6410. Brox L., Gowans B., To R. a kol. // Môcť. J. Biochem.-1982.-zv.60. N.9.-P.873-876.

84. Brumell J.H. Endogénne reaktívne kyslíkové medziprodukty aktivujú tyrozínkinázy v ľudských neutrofiloch. / Brumell J.H., Burkhardt A.L., Bolen J.B., a kol.//J.Biol. Chem.- 1996.- V. 271.-P. 1455-1461.

85. Briine B. Apoptotická bunková smrť a oxid dusnatý: aktivačné a antagonistické transdukčné dráhy. / B. Briine, K. Sandau a A. von Knethen. // Biochem. Biophys. Res. Komun.- 1997.-V.229. S. 396-401.

86. Buga G.M. NG-hydroxy-L-arginín a oxid dusnatý inhibujú proliferáciu nádorových buniek Caco-2 odlišným mechanizmom. / Buga G.M., Wei L.H., Bauer P.M. a kol. // Am. J Physiol. 1998. - V. 275. - R1256 - R1264.

87. Burch H.B., Produkcia superoxidových radikálov stimuluje proliferáciu retrookulárnych fibroblastov pri Gravesovej oftalmopatii. / Burch H.B., Lahiri S., Bahn R.s., Barnes S.//Exp.Eye Res. 1997, V.2.-P.311-316.

88. Burdon R.H. Bunková proliferácia a oxidačný stres / R. Burdon, V. Gill, C. Rice-Evans // Free Radic. Res. Comm. 1989. - Číslo 7. - S. 149-159.

89. Burdon R.H. Voľné radikály a regulácia proliferácie buniek cicavcov / Burdon R.H., C. Rice-Evans. // Voľné radikály. Res. Comm. -1989,-№6.-P. 345-358.

90. Burdon R.H. Oxidačný stres a proliferácia nádorových buniek / R.H. Burdon, V. Gill, C. Rice-Evans. // Voľné radikály. Res. Comm. 1990. - Číslo 11. - S. 65-76.

91. Burdon R.H. Bunkami generované aktívne formy kyslíka a proliferácia buniek HeLa / R.H. Burdon, V. Gill. // Voľné radikály. Res. Comm. 1993. -Č.19.-P. 203-213.

92. Burdon R. H. Superoxid a peroxid vodíka vo vzťahu k proliferácii buniek cicavcov / R.H. Burdon. // Biológia a medicína voľných radikálov. 1995. - Zv. 18, č. 4. - s. 775 - 794.

93. Cabelof D. Indukcia DNA polimarázy |3 dependentnej opravy excízie bázy v reakcii na oxidačný stres in vivo. / Cabelof D., Raffoul J.J., Yanamadala S., et al. // Karcinogenéza.- 2002.- V. 23.- S. 1419-1425.

94. Cao Y. Intracelulárna neesterifikovaná kyselina arachidónová signalizuje apoptózu. / Cao Y., Pearman A. T., Zimmerman G. A. a kol. // PNAS.- 2000. V. 97. S. 11280-11285.

95. Capranico G. Sekvenčne selektívna inhibícia topoizoméry II derivátmi antracyklínu v DNA SV40: vzťah s afinitou k DNA a cytotoxicitou. / Capranico G., Zunino F., Kohn K. a kol. // Biochémia.- 1990.- V.29.- S. 562-569.

96. Cha M.S. Endogénna produkcia oxidu dusnatého vaskulárnym endotelovým rastovým faktorom down-reguluje proliferáciu buniek choriokarcinómu./Cha M.S., Lee M.J., Je G.H., et all. // Onkogén.- 2001.-V.20.-P.1486-96.

97. Chao C-C. Účasť oxidu dusnatého a železa na oxidácii DNA v ľudských pľúcnych epiteliálnych bunkách ošetrených azbestom. / Chao C-C., Park S.H., Aust A.E. // Arch. Biochem. Biophys. 1996.- V 326.- S. 152-157.

98. Chazotte-Aubert L. Oxid dusnatý zabraňuje zastaveniu bunkového cyklu vyvolanému y-žiarením tým, že zhoršuje funkciu p53 v bunkách MCF-7. / Chazotte-Aubert L., Pluquet O., Hainaut P., et al. // Biochem. Biophys. Res. komun. 2001.-V. 281.-s. 766-771.

99. Chen D-L. Ochranné účinky suplementácie selénu pri minimalizácii 5-fluóruracilom vyvolaného lipidového peroxidačného poškodenia tenkého čreva. / Chen D-L., Sando K., Chen K., Wasa M. a kol. // J. Trace Elem Exp Med. 1997.-V.10.-P. 163-171.

100 Kostol D.F. Voľná ​​radikálová chémia cigaretového dymu a jej toxikologické dôsledky. / Church D.F., Pryor W.A. // prostredie. Zdravotná perspektíva. 1985.-V. 64.- S. 111-126.

101. Cohen I. Antiapopotická aktivita homológu glutatiónperoxidázy kódovaného HTV-1. / Cohen I., Zhao L., Metivier D. a kol. // Apoptóza. -2004.-V.9.-P. 2004.

102. Cohen J.J. Programovaná bunková smrť v imunitnom systéme / Cohen J.J. // Adv. Immunol. -1991.- V.50.- S.55-85.

103 Collins J.A. Veľká fragmentácia DNA je neskorá udalosť v apoptóze./ Collins J.A. Schandl C.A., Young K.K., Veselý J. // J.Histochem. Cytochem.- 1997.- V.45.- S. 923-934.

104 Comhair S.A. Indukcia extracelulárnej glutatiónperoxidázy v astmatických pľúcach: dôkaz redoxnej regulácie expresie v ľudských epiteliálnych bunkách dýchacích ciest. / Comhair S.A., Bhathena P.R., Farver C., a kol. // FASEB J.-2001.- V.l.-P. 70-78.

105. Crawford D. Oxidačný stres indukuje protoonkogény c-fos a c-myc v myších epidermálnych bunkách / D. Crawford, L. Zbinden, P. Amstad., P. Cerutti // Oncogene. 1989. - Číslo 3. - S. 27-32.

106. Kríž J.V. Oxidačný stres inhibuje MEKK1 miestne špecifickou glutationyláciou vo väzbovej doméne ATP. / Cross J.V., Templeton D.J. // Biochem J. 2004.- V.381 (Pt 3) - S.675-683.

107. Cui S. Aktivácia myších makrofágov indukuje apoptózu v tumirových bunkách prostredníctvom mechanizmov závislých alebo nezávislých od oxidu dusnatého. / Cui S., Reichner J., Mateo R. a kol. // Cancer Res. 1994, - V. 54. - S. 2462-2467.

108 Dartsch D.C. Porovnanie antracyklínom indukovanej smrti ľudských leukemických buniek: progpamovaná bunková smrť versus nekróza. / Dartsch D.C., Schaefer A., ​​​​Boldt S., a kol. // Apoptóza. 2002, - V. 7. - S. 537-548.

109. Datta R. Zapojenie reaktívnych kyslíkových medziproduktov do indukcie transkripcie c-jun génu ionizujúcim žiarením. / R. Datta, D. Hallahan, E. Kharbanda, E. Rubin, M. K. Sherman, E. Humberman. // Biochémia. -1992.-№31.-P. 8300-8306.

110. Dekan R.T. Niektoré kritické membránové udalosti počas smrti cicavčích buniek. / Dekan R.T. // Pohľad na bunkovú smrť cicavcov. Oxford, New York, Tokio. 1987.-P. 18-38.

111. Denecker G. Apoptotická a nekrotická bunková smrť indukovaná receptorom domény smrti. / Denecker G., Vercammen D., Declercq W., Vandenabeele P. // Cell. Mol. život sci. 2001.- V.58. - S. 356-370.

112. De Wolf F. A. Porovnateľná interakcia doxorubicínu s rôznymi kyslými fosfolipidmi vedie k zmenám v poradí a dynamike lipidov. / De Wolf F.A., Maliepaard M., Van Dorsten., a kol. // Biochim. Biophys. acta. -1990.-V. 1096.-s. 67-80.

113. Dodd F. L-arginín inhibuje apoptózu vis od NO-dependentného mechanizmu v bunkách lymfómu Nb2. / Dodd F., Limoges M., Boudreau R.T., a kol. // J. Cell. Biochem. 2000.- V. 77.- S. 642-634.

114. Doi K. Nadmerná produkcia oxidu dusnatého v solídnom nádore potkanov a jej dôsledok v rýchlom raste nádoru. / Doi K., Akaike T., Horie H., et all // Rakovina.- 1996.- V.77.- S. 1598-1604.

115. Dong M. Inverzná asociácia medzi expresiou fosfolipázy A2 a COX-2 počas tumorigenézy myšieho hrubého čreva. / Dong M., Guda K., Nambiar P.R., Rezaie A. a kol. // Karcinogenéza.- 2003.-V. 24.- S. 307315.

116. Dong Z. Inverzná korelácia medzi expresiou indukovateľnej aktivity syntázy oxidu dusnatého a produkciou metastáz v bunkách myšacieho melanómu K1735. / Dong Z., Staroselsky A., Qi X., et al. // Cancer Res. 1994.-V.54.-P. 789-793.

117. Droge W. Voľné radikály vo fyziologickom riadení funkcie buniek. / Droge W. // Physiol. Rev.- 2001.- V.82. S. 47-95.

118. Dybdahl M. Tvorba aduktu DNA a oxidačný stres v hrubom čreve a pečeni potkanov Big Blue po diétnej expozícii časticiam nafty. / Dybdahl M. Dybdahl M. Risom L., Moller P., Autrup H. et.al. // Karcinogenéza 2003.-V. 24.-č. 11.-P. 1759-1766.

119. Egan S. E. Cesta k dosiahnutiu signálu. / S.E. Egan, R.A. Weinberg. // Príroda. 1993. - Vol. 365. - S. 781-783.

120. Egner P. A. Účinky superoxiddismutázy na úplnú a viacstupňovú karcinogenézu v koži myší. /P.A. Egner, T.W. Kensler. // Karcinogenéza. 1985. - Číslo 6. - S. 1167-1172.

121. Eling E.T. Bunková proliferácia a metabolizmus lipidov: dôležitosť lipoxygenázy pri modulácii mitogenézy závislej od epidermálneho rastového faktora. / E.T. Elling, C.W. Glasgow. // Recenzie rakoviny a metastáz. 1994.-V.13. - S. 397-410.

122. Elliott N.A. Indukcia stresu a mitochondriálna lokalizácia proteínov Oxrl u kvasiniek a ľudí. / Elliott N.A., Volkert M.R. // Mol Cell Biol. 2004. - V.8. - S.3180-3187.

123. Esterbauer H. Cytotoxicita a genotoxicita produktov oxidácie lipidov./ Esterbauer H. // Amer. J.Clin. Nutr. 1993, V. 57.- S. 779S-786S.

124. Faber M. Produkty peroxidácie lipidov a stav vitamínov a stopových prvkov u pacientov s rakovinou pred a po chemoterapii. / Faber M., Coudray C., Hida H. a kol. // Biol Trace Elem Res. 1995.- V.47. - P. l 17123.

125. Faktor V.M. Narušenie redoxnej homeostázy v transgénnom myšom modeli zrýchlenej hepatokarcinogenézy transformujúceho rastového faktora-alfa/c-myc. / Faktor V.M., Kiss A., Woitach J.T., a kol. // J. Biol. Chem. 1998.- V. 273.- S. 15846-15853.

126. Farinati F. Determinanty rozvoja chronickej gastritídy a črevnej metaplázie v žalúdku. / Farinati F., Cardin R., Libera G. a kol. // EUR. J. Cancer Prev.- 1995.- V.4.- S. 181-186.

127. Fattman C.L. Extracelulárna superoxiddismutáza v biológii a medicíne. / Fattman C. L., Schaefer L. M., Oury T. D. // FreeRad. Biol. Med.-2003.-V. 35.-str. 236-256.

128. Feger F. Úloha železa pri ochrane nádorových buniek pred proapoptickým účinkom oxidu dusnatého. / F. Feger, Ferry-Dumazet H., Matsuda M. M. a kol. // Cancer Res. 2001. - V. 61. - S. 5289-5294.

129. Fehsel K. DNA buniek ostrovčekov je cieľom zápalového útoku oxidu dusnatého. / Fehsel K., Jalowy A., Qi S., a kol. // Cukrovka. 1993.- V. 42.- S. 496-500.

130. Filep J.G. Zapojenie oxidu dusnatého do lýzy cieľových buniek a fragmentácie DNA vyvolanej myšacími prirodzenými zabíjačskými bunkami. / Filep J.G., Baron C., Lachance C.//Blood.- 1996.-V. 87.-P. 5136-5143.

131. Fisher S.M. Reaktívny kyslík v štádiu karcinogenézy kože v štádiu podpory nádoru. / Fisher S.M., Cameron G.S., Baldwin J.K. a kol. // lipidy. -1988.- V.23.- S.592-597.

132. Floyd R.A. Úloha 8-hydrohyguanínu v rakovinotvorbe. / Floyd R.A. // Kancerogenéza.- 1990.- V.l 1.- S. 1447-1450.

133. Floyd R.A. Úloha voľných kyslíkových radikálov v karcinogenéze a ischémii mozgu. / Floyd R.A. // FASEB J. 1990.- V. 4,- S. 2587-2597.

134. Folch J. Jednoduchá metóda na izoláciu a čistenie celkových lipidov zo živočíšnych tkanív. / Folch J., Lees M., Stanley S. // J. Biol. Chem. -1957.-V. 226.-S.497-509.

135. Forstermann U. Biochémia a molekulárna biológia syntáz oxidu dusnatého. / Forstermann U. // Drug Res. -1994.- V.44.- S. 402-407.

136. Fridovič I. Biológia kyslíkových radikálov. Superoxidový radikál je činidlom kyslíkovej toxicity; superoxiddismutáza poskytuje dôležitú obranu. / I. Fridovič // Annu. Rev. Pharm. Tox. 1989. - V. 23. - S. 239-257.

137. Fritzer-Szekeres M. Zvýšené účinky adriamycínu kombináciou s novým inhibítorom ribonukleotidovej reduktázy, trimidoxom, pri myšacej leukémii. / Fritzer-Szekeres M, Novotný L, Romanová D, et al. // Life Sci. 1998. - V.63 - S. 545-552.

138. Gaiter D. Výrazné účinky glutatióndisulfidu na jadrové transkripčné faktory kappaB a aktivačný proteín-1 / D. Gaiter, S. Mihm, W. Oroge // Eur. J Biochem. 1994. - V. 221. - S. 639-648.

139. Gamberini M. Proliferácia myších fibroblastov indukovaná autooxidáciou 1,2-dimetylhydrazínu: Úloha železa a voľných radikálov. / Gamberini M., Leite L.C.C. // Biochem. Biophys. Res. komun. 1997.-V. 234.- S. 44-47.

140. Gansauge S. Indukcia apoptózy v proliferujúcich ľudských fibroblastoch kyslíkovým radikálom je spojená s indukciou p53 a p21. / Gansauge S, Gansauge F, Gause H., et al. // FEBS Listy. 1997. - V. 404.-P. 6-10.

141. Gansauge S. Exogénny, ale nie endogénny oxid dusnatý zvyšuje rýchlosť proliferácie v senescentných ľudských fibroblastoch. / Gansauge S, Gansauge F, Nussler AK, a kol. // FEBS Listy. 1997. - V. 404. - P. - 160-164.

142. Gedik C. M. Oxidačný stres u ľudí: validácia biomarkerov poškodenia DNA. / Gedick C.M., Boyle S.P., Wood S.G. v al. // Karcinogenéza.- 2002.- V. 23.- S. 1441-1446.

143. Gerber M. Progresia nádoru a oxidačný antioxidant / M. Gerber a kol.//CancerLetters. - 1997.-V. 114.-S.211-214.

144. Gewirtz D.A. Poškodenie DNA, expresia génov, zastavenie rastu a smrť buniek. / Gewirtz D.A. // Oncol Res.- 1993.-V.5.- S.397-408.

145. Gewirtz D.A. Kritické vyhodnotenie mechanizmov účinku navrhnutého pre protinádorové účinky antracyklínových antibiotík adtiamycín a daunomicín. / Gewirtz D. A. // Biochem Pharmacol. -1999.-V. 57.-s. 727-741.

146. Ghosh J., Myers C.E. Kyselina arachidónová stimuluje rast buniek rakoviny prostaty: kritická úloha 5-lipoxygenázy. // Biochem a Biophys Res Commun. 1997.-V.235.-P.418-423.

147. Glockzin S. Aktivácia programu bunkovej smrti oxidom dusnatým zahŕňa inhibíciu proteazómu. / Glockzin S, von Knethen A, Scheffner M, a kol.//J. Biol. Chem.- 1999,-V. 274.-s. 19581-19586.

148. Goldberg H. G. Tyrozín kinázová aktivita receptora epdermálneho rastového faktora je nevyhnutná pre aktiváciu fosfolipázy A2. / Golgberg H.G., Viegas M.M., Margolis B.L. a ďalší // Biochem J. 1990. - V. 267. - S. 461-465.

149. Goldman R. Reaktívne druhy pxigen sa podieľajú na aktivácii bunkovej fosfolipázy A2. / FEBS. 1992. - V. 309. - S. 190-192.

150. Gopalakrishna R. Ca a na fosfolipidoch nezávislá aktivácia proteínkinázy C selektívnou oxidačnou modifikáciou regulačnej domény / R. Gopalakrishna, W. B. Anderson // Proc. Natl. Akad. sci. USA. 2002.-V. 86.-P. 6758-6762.

151. Gorman A. Úloha peroxidového a superoxidového aniónu počas apoptózy nádorových buniek. / Gorman A, McGowan A, Cotter TG. // FEBS Listy. 1997.-V. 404.-P.-27-33.

152. Gotoh Y. Redoxná nerovnováha vyvolaná peroxidom lipidov diferencovane sprostredkováva proliferáciu buniek CaCo-2 a zastavenie rastu. / Gotoh Y., Noda T., Iwakiri R., et al. // Profil bunky. 2002.- V. 35.- S. 221-235.

153. Zelená P.S. Mitochondriálna dysfunkcia je skorým indikátorom apoptózy indukovanej doxorubicínom. / Green P.S., Leeuwenburgh C. // Biochim. Biophys. acta. 2002.-V. 1588.-s. 94-101.

154Gregson N.A. Lyzolipidy a poškodenie membrán: lyzolecitín a jeho interakcia s myelínom. / Gregson N.A. // Biochem. soc. transakcie. - 1989.-V. 17.-P. 280-283.

155 Griendling K.K. Redoxná kontrola proliferácie hladkého svalstva ciev. / Griendling K.K., Ushio-Fukai M. // J. Lab. Clin. Med.- 1998. V. 132.-P. 9-15.

156. Guehmann S. Redukcia konzervovaného Cys je nevyhnutná pre väzbu Myb na DNA. / S. Guehmann, G. Vorbrueggen, F. Kalkbrenner, K. Moelling // Nucleic Acids Res. 1992. - Zv. 20. - S. 2279-2286.

157. Gustafson C. Peroxid vodíka stimuluje uvoľňovanie kyseliny arachidónovej sprostredkované fosfolipázou A2 v kultivovaných črevných epitelových bunkách. / Gustafson C., Lindahl M., Tagesson C. // Scand J. Gastroenterol. 1991.- V. 26.- S. 237-247.

158. Guyton K.Z. Aktivácia mitogénom aktivovanej proteínkinázy pomocou H202. Úloha pri prežití buniek po oxidačnom poškodení. / Guyton K.Z., Liu Y., Gorospe M. a kol. // J.Biol. Chem. 1996.- V. 271.- S. 4138-4142.

159. Haddad J.J. Redoxná a oxidantom sprostredkovaná regulácia signálnych dráh apoptózy: imuno-farmako-redoxná koncepcia oxidačného obliehania verzus záväzok bunkovej smrti. / Haddad J.J. // Int. Immunopharmacol. 2004.-V.4.-P.475-493.

160. Hainaut P. Redoxná modulácia konformácie p53 a sekvenčne špecifická väzba DNA in vitro. / P. Hainaut, J. Milner // Cancer Res. 1993. - Vol. 53-P. 4469-4473.

161. Halliwell B. Voľné radikály, reaktívne formy kyslíka a ľudské choroby: kritické hodnotenie s osobitným zreteľom na aterosklerózu. / Halliwell B. // Br. J. Exp. Pathol. 1989. - Vol. 70, č. 6. - S.737-757.

162. Halliwell B. Biologicky relevantná tvorba hydroxylových radikálov závislá od kovových iónov. aktualizácie. / B. Halliwell, J.M. Gutteridge // FTBS Lett. -1992.-zv. 307.-P 108-112.

163. Han M. J. Bunková proliferácia indukovaná reaktívnymi formami kyslíka je sprostredkovaná mitogénom aktivovanou proteínkinázou v bunkách pľúcnych fibroblastov čínskeho škrečka (V79). / Han M. J., Kim B. Y., Yoon S. O. a kol. // Mol.Cells. -2003.- V. 15. S. 94-101.

164. Harris S.R. Oxidačný stres prispieva k antiproliferatívnym účinkom kyseliny flavónoctovej na endotelové bunky. // Harris S.R., Panaro N.J., Thorgeirsson U.P. // Anticancer Res.- 2000.- V.20.-N.4.-P.2249-54

165. Heffner J.E. Pľúcne stratégie antioxidačnej obrany / Heffner J.E., Repine. J E. // Am. Rev. Respir. Dis. 1989. - Vol. 140 - S. 531-554.

166. Hofseth L. Bunkový stres vyvolaný oxidom dusnatým a aktivácia p53 pri chronickom zápale. / Hofseth L., Saito S., Hussain S.P., a kol. //Proc. Natl. Akad. sci. USA. -2003, - V. 100. S. 143-148.

167 Howard S. Neuroprotektívne účinky nadmernej expresie bcl-2 v hipokampálnych kultúrach: interakcie s cestami oxidačného poškodenia. / Howard S., Bottino C., Brooke S. a kol. // J Neurochem. 2002. - V.83. -S.914-923.

168. Hu J. Redox-aktívny chalkogén obsahujúci mimetiká glutatiónperoxidázy a antioxidanty inhibujú promótorom nádoru indukovanú downreguláciu medzibunkovej komunikácie medzibunkovej komunikácie medzi

169. WB-F344 pečeňové epitelové bunky. / J. Hu, L. Engman, Cotgreave I. // Karcinogenéza. 1995.-V. 16. - č.8.-P. 1815-1824.

170 Hussain S.P. Interaktívny účinok oxidu dusnatého a nádorového supresorového génu p53 v karcinogénoch a progresii nádoru. / Hussain S.P., Harris C.C. // FASEB J. 1997.- V. 11. - S. 443-448.

171 Hussain S.P. Up-regulácia MnSOD a GPx indukovaná p53, ale nie kataláza, zvyšuje oxidačný stres a apoptózu. / Hussain S.P., Amstad P., He P., Robles A. a kol. // Cancer Res. 2004. - V.64. - S. 2350-2356.

172. Iizuka S. Enzyme-linked immuno-sorbent assay pre ľudskú mangán-obsahujúcu superoxiddismutázu a jej obsah pri rakovine pľúc. / Iizuka S., Taniguchi N. a Makita A. // J. Natl. Cancer Inst. 1984. - V. 72. - S. 1043-1099.

173. Ikebuchi Y. Superoxidový anión zvyšuje intracelulárne pH, intracelulárne uvoľňovanie voľného vápnika a arachidonátu v ľudských amniových bunkách. / Ikebuchi Y., Masumoto K., Tasaka K., Koike K. // Biol. Chem. 1991. - V. 266. -P. 13233-13237.

174. Ishii T. Mechanizmus na podporu rastu buniek myšacieho lymfómu LI210 in vitro pomocou výživných vrstiev alebo 2-merkaptoetanolu. / Ishii T., Hishinuma I., Bannai S. // Cell. fyziol. 1981. - V. 104. - S. 215-223.

175. Jain M.K. Kinetika väzby fosfolipázy A2 na rozhrania lipid/voda a jej vzťah k medzifázovej aktivácii. / Jain M.K., Rogers J., DeHaas G.H. // Biochim. Piophys. acta. -1988. V.940. - S. 51-62.

176. Jaiswal M. Oxid dusnatý v karcinogenéze gastrointestinálnych epiteliálnych buniek: prepojenie zápalu s onkogenézou. / Jaiswal M., LaRusso N. F., Gregory J. // Am. J Physiol. gastrotest. Pečeň. fyziol. -2001. V. 281.- S. G626-G634.

177. Jensen M.S. Rôzne donory oxidu dusnatého chránia embryonálne neuróny kurčiat pred apoptózou vyvolanou kyanidom. / Jensen M.S., Nyborg N., Thomsen F. // Toxicol. sci. 2000.- V. 58.- S. 127-134.

178. Jessup J.M. Reaktívne dusíkové a kyslíkové radikály vytvorené počas reperfúzie hepatickej isémie zabíjajú slabo metastatické bunky kolorektálneho karcinómu. / Jessup J.M., Battle P., Waller H. a kol. // Cancer Res. 1999.- V. 59.- S. 18251829.

179. Johnson M. L. Úlohy oxidu dusnatého pri chirurgickej infekcii a sepse. / Johnson M. L., Timothy R. Billiar, M. D. // Svet J. Surg. 1998.-V.22.-P. 187-196.

180. Johnson-Thompson M.C. Prebiehajúci výskum na identifikáciu environmentálnych rizikových faktorov pri karcinóme prsníka. / Johnson-Thompson M.C., Guthrie J. // Rakovina. 2000. - V. 88.- S. 1224-1229.

181. Juckett M.B. Donory oxidu dusnatého modulujú feritín a chránia endotel pred oxidačným poškodením. / Juckett MB, Weber M, Balla J a kol. // FreeRad. Biol. Med. 1996. - V. 20. - S.63-73.

182. Jung I.D. Doxorubicín inhibuje produkciu oxidu dusnatého bunkami kolorektálneho karcinómu. / Jung I.D., Lee J.S., Yun S.Y. // Arch. PharmRes. -2002.-V.25.-P. 691-696.

183. Jung K. Mitochondrie ako subcelulárne ciele pre klinicky užitočné antracyklíny. / Jung K., Reszka R. // Adv. dodávanie drog. Rev. 2001.-V.-49.-P. 87-105.

184. Jung O. Extracelulárna superoxiddismutáza je hlavným determinantom biologickej dostupnosti oxidu dusnatého: dôkazy in vivo a ex vivo od myší s deficitom ecSOD. / Jung O., Marklund S.L., Geiger H. a kol. // Circ. Res. - 2003.-V. 93.-s. 622-699.

185. Kaiser E. Fosfolipázy v biológii a medicíne. / Kaiser E., Chiba R., Zaku K. // Clin. Biochem. 1990.- V.23.- S. 349-370.

186. Khaletskiy A. Gény regulované v ľudských bunkách rakoviny prsníka nadmerne exprimujúcich superoxiddismutázu obsahujúcu mangán. / Khaletskiy A., Wang J., Wong J.Y., Oberley L.W., Li J.J., Li Z. // Voľné radikály. Biol. Med. 2001.-V. 30, č. 3. - S. 260-267.

187. Kanner J. Oxid dusnatý ako antioxidant. / Kanner J., Harel S., Granit R. // Archívy biochémie a byofyziky. 1991. - V. 289. - S. 130136.

188. Kanno T. Oxidačný stres je základom mechanizmu prechodu permeability mitochondrií vyvolaného Ca(2+). / Kanno T., Sato E.E., Muranaka S. a ďalší. // Free Radical Res. 2004. - V.l. - S.27-35.

189. Kass G. E. N. Aktivácia proteínkinázy C redox-cyklickými chinónmi / Kass G. E. N., Duddy S. K., Orrenius S. // Biochemical J. 1989. - V. 260. - S. 499-507.

190 Keen J.H. Mechanizmy niekoľkých aktivít glutatión-S-transferázy / Keen J.H., Habing W.H., Jakoby W.B. // J.Biol. Chem. - 1976.-V. 251.-s. 6183-6188.

191 Kehrer J.P. Voľné radikály ako mediátory poškodenia tkaniva a smrti. / Kehrer J.P. // Kritické. Rev. Toxicol. -1993.- V. 32.- S. 21-48.

192. Kerr J.F.R. Apoptóza: základný biologický jav so širokými dôsledkami v kinetike tkanív. / Kerr J.F.R., Wyllie A.H., Currie A.R. // Br. J. Cancer. -1972.- V. 26.- S.239-257.

193. Keshavarzian A. Vysoké hladiny reaktívnych metabolitov kyslíka v tkanive rakoviny hrubého čreva: Analýza pomocou chemiluminiscenčnej sondy. / Keshavarzian A., Zapeda D., List T., Mobarhan S. // Nutr. rakovina. 1992.- V. 17.- S. 243249.

194. Khurana G. Oxid dusnatý a kyselina arachidónová modulácia vápnikových prúdov v postgangliových neurónoch vtáčích kultivovaných ciliárnych ganglií. / Khurana G., Bennett M.R. // British J. Pharmacol. 1999.- V. 109.- S. 480485.

195. Kim Y.M. Inhibícia syntézy proteínov oxidom dusnatým koreluje s cytostatickou aktivitou: oxid dusnatý indukuje fosforiláciu iniciačného faktora eIF-2 alfa. / Kim Y.M., Son K., Hong S.J., et al. // Mol. Med. 1998.- V. 3.-P. 179-190.

196.Kráľ K.L. Bunkový cyklus a apoptóza: spoločné cesty k životu a smrti. / King K.L., Cidlowski J.A // J Cell Biol.-1995. -V.58.- S. 175-180.

197. Kluck R.M. Uvoľňovanie cytochrómu C z mitochondrií: primárne miesto pre bcl-2 reguláciu aboptózy. / Kluck R.M., Bossy-Wetzel E., Green D.R. // Veda.- 1997.- V. 275.- S. 1132-1136.

198. Kolb J.P. Mechanizmy zapojené do pro- a antiapoptickej úlohy NO pri ľudskej leukémii. / Kolb J.P. // Leukémia.-2000. V. 14. - S. 1685-94.

199. Koppenol W.H. Peroxydusitan, maskovaný oxidant tvorený oxidom dusnatým a superoxidom. / Koppenol W.H., Moreno J.J., Pryor W.A. // Chem. Res. Toxicol. 1992.- V.5. - S. 834-842.

200. Korystov Yu. N., Shaposhnikova V.V., Levitman M.Kh., Kudryavtsev A.A. Účinok inhibítorov metabolizmu kyseliny arachidónovej na proliferáciu a smrť nádorových buniek. // FEBS Lett. 1998.- V. 431.- S. 224-226.

201. Kristensen S.R. Význam úrovne bunkovej energie pre uvoľňovanie enzýmov vyvolané priamym poškodením membrány. / Christensen S.R. // enzým. 1990.-V. 43.-P. 33-46.

202. Kumar S. Motív RRC konzervovaný vo všetkých proteínoch Ret/kappaB je nevyhnutný pre aktivitu viazania DNA a redoxnú reguláciu onkoproteínu v-Rel / S. Kumar, A. B. Rabson, C. Gelinas // Mol. bunka. Biol. -1992.-č.12.-P. 3094-3106.

203. Kurose I. Oxid dusnatý sprostredkúva Kupfferovými bunkami indukovanú redukciu mitochondriálnej energizácie v bunkách hepatómu: porovnanie s oxidačným vzplanutím. / Kurose I., Miura S., Fukumura D. // Cancer Res. 1993. - V. 53.-P. 2676-2682.

204. Kuross S.A. Nehemové železo v jednotlivých membránach erytrocytov: Asociácia s fosfolipidmi a potenciálna úloha pri peroxidácii lipidov. / Kuross S.A., Hebbel R.P. //Krv. 1988. - V. 72. - S. 1278-1285.

205. Larsson R. Translokácia a zvýšenie fosfotransferázovej aktivity proteínkinázy C po vystavení myších epidermálnych buniek oxidantom. / R. Larsson, P. Cerutti // Cancer Res. 1989. - V. 49. - S. 56275632.

206. Lau A.T.Y. Protichodné signálne dráhy indukované arzenitom podporujú bunkovú proliferáciu alebo apoptózu v kultivovaných pľúcnych bunkách. / Lau A.T.Y., Li M., Xie. R. a kol. // Karcinogenéza. 2004. - V. 25. - S. 21-28.

207. Lee K.H. Indukcia apoptózy v p53-deficientnej bunkovej línii ľudského hepatómu transdukciou génu p53 divokého typu: inhibícia antioxidantom. / Lee K.H., Kim K.C., Yang Y.J. a kol.//Mol. Bunky.-2001.-V. 12.-P. 17-24.

208. Lee J. Y. Indukcia endoteliálnej apoptózy 4-hydroxyhexenalom. / Lee J. Y., Je J. H., Kim D. H. a kol. // EUR. J Biochem. 2004.-V.271. -S.1339-1347.

209. Lemaire G. Diferenciálne cytostatické účinky donorov NO a buniek produkujúcich NO. / Lemaire G., Alvarez-Pachon F.J., Beuneu C., a kol. // FreeRad. Biol. Med. 1999. - V. 26. - S. 1274-83.

210. Lepoivre M. Zmeny aktivity ribonukleotidreduktázy po indukcii dráhy tvorby dusitanov v bunkách adenokarcinómu. / Lepoivre M., Chenais B., Yapo A., a kol. // J. Biol. Chem. 1990.- V. 265.-P. 14143 - 14149.

211. Leung S. Y. Expresia fosfolipázy A2 skupiny IIA v adenokarcinóme žalúdka je spojená s predĺženým prežitím a menej častými metastázami. / Leung S. Y., Chen X, Chu K. M. // Proc Natl Acad Sci USA. 10. decembra 2002; 99 (25): 16203-16208.

212. Li D. Oxidačné poškodenie DNA a 8-hydroxy-2-deoxyguanozín DNA glykozyláza/apurínová lyáza pri ľudskej rakovine prsníka. / Li D., Zhang W., Zhu J., Chang P. // Mol. Karcinogén.- 2001.- V. 31.- S. 214-223.

213. Li J. Intracelulárny superoxid indukuje apoptózu vo VSMC: Pól mitochondriálneho membránového potenciálu, cytochróm C a kaspázy. / Li J., Li P.F., Dietz R., a kol. // Apoptóza. 2002.-V.7. - S. 511-517.

214. Li N. Inhibícia rastu buniek vo fibroblastoch NIH/3t3 nadmernou expresiou mangánovej superoxid mismutázy: mechaninstické štúdie / N. Li, T. D. Oberley, L. W. Oberley, W. Zhong. // J. Cell Physiol. 1998. - V. 175, č. 3, - S. 359-369.

215. Li S. Úloha redoxnej regulácie bunkovej glutatiónperoxidázy pri potláčaní rastu nádorových buniek mangánovou superoxiddismutázou / S.1., T. Yan, J.Q. Yang, T.D. Oberley, L.W. Oberley. // Cancer Res. 2000.-V. 60, č. 15.-P. 3927-39.

216. Li Z. Gény regulované v ľudských rakovinových bunkách prsníka nadmerne exprimujúcich superoxiddismutázu obsahujúcu mangán / Z. Li., A. Khaletsky, J. Wang, J. Y. Wong, L. W. Oberley, J. J. Li // Free Radic. Biol. Med. -2001. V. 33, - č. 3. -P. 260 - 267.

217. Lind D.S. Oxid dusnatý prispieva k protinádorovému účinku adriamycínu. /Lind D.S., Kontaridis M.I., Edwards P.D. a kol. // J. Surg. Res. 1997. -V.2.-P. 283-287.

218 Lissi E. Luminolová luminiscencia indukovaná termolýzou 2,2-azo-bis-(2-amidinopropánu). / Lissi E., Pascual C., Castillo M. // Free Rad. Res. Comras.- 1992. V. 17. - S. 299-311.

219. Littel C. An intracelulárna GSH-peroxidáza s lipidovým peroxidovým substrátom / C. Littel, P.J. O "Brien // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1968. - V. 31.-P. 145-150.

220. Liu R. Voľné kyslíkové radikály sprostredkovávajú indukciu expresie génu mangánovej superoxiddismutázy prostredníctvom TNF-alfa. / R. Liu, G.R. Buettner, L.W. Oberley // Free Radic Biol Med. 2000. - Zv. 28, č. 8. - S. 11971205.

221. Lo Y.Y. Zapojenie reaktívnych foriem kyslíka do indukcie cytokínov a rastových faktorov expresie c-fos v chondrocytoch. / LoY.Y., Cruz T.F. // J.Biol. Chem. 1995.- V. 270.- P. 11727-11730.

222. Lo Y.Y. Reaktívne formy kyslíka sprostredkovávajú cytokínovú aktiváciu c-Jun NH2-terminálnych kináz. / Lo Y.Y., Wong J.M.S., Cruz T.F.// J.Biol. Chem. -1996,-V. 271.-s. 15703-15707.

223. Loborek M. Účinky sprostredkované mastnými kyselinami na glutatiónový redoxný cyklus v kultivovaných endotelových bunkách. / M. Loborek, M. Toborek, B. Hennig // Amer. J.Clin. Nutr. 1994. -V.59, č.1. - P 60-65.

224. Lonardo F. Normálny produkt erbB-2 je tyrozínkináza podobná atipykálnemu receptoru s konštitutívnou aktivitou v neprítomnosti ligandu. / Lonardo

225. F., Di Marco E., King C. R. // New Biol. 1990.- V. 2.- S. 992-1003.

226. Longoni B. Regulácia expresie proteínu Bcl-2 počas oxidačného stresu v neurónových a endotelových bunkách. / Longoni B., Boschi E., Demontis

227.G.C. // Biochem. Biophys. Res. Komun.- 1999.- V.260.- S. 522-526.

228. Loughlin K.R. Použitie peroxidu vodíka na zvýšenie účinnosti hydrochloridu doxorubicínu v bunkovej línii nádoru močového mechúra u myší. / Loughlin K.R., Manson K., Cragnale D. a kol. // J. Urol.- 2001.- V. 165.- S. 1300-1308.

229 Lowry O.H. Meranie bielkovín s Folinovým fenolovým činidlom. / Lowry O. H., Rosenbrough N. J., Farr A. L., Randall R. J. // J. Biol. Chem. -1951.-V. 193.-s. 265-275.

230. Lundberg A.S. Kontrola bunkového cyklu a apoptózy. / Lundberg A.S. a Weinberg R.A. // European Journal of Cancer. 1999.-V. 35.- č.4.-P. 531-539.

231. Luo D. Inhibícia syntázy oxidu dusnatého antineoplastickými antracyklínmi. / Luo D., Vincent S.R. // Biochem. Pharmacol. 1994. V. 11.-P. 2111 -2112.

232. Maccarone M. Donorové zlúčeniny oxidu dusnatého inhibujú aktivitu lipoxygenázy. / Maccarone M., Corasanti M.T., Guerreri P. // Biochem Biophys Res Commun. 1996.- V.219.- S.128.-133.

233. Malins D.C. Progresia ľudskej rakoviny prsníka do metastatického stavu je spojená s DNA damade indukovanou hydroxylovými radikálmi. / Malins D.C., Polissar N.L., Guncelman S.J. //Proc.Nat.Acad.Sci. USA.- 1996.- V.93.- S. 25572563.

234. Mannervik B. Izoenzýmy glutatión transferázy. / B. Mannervik // Pokroky v enzymológii a príbuzných oblastiach molekulárnej biológie. 1985.-V. 57.-s. 357-417.

235. Mannick J. B. S-nitrozylácia mitochondriálnych kaspáz. / Mannick J. B., Schonhoff C., PapetaN., a kol. // J. Cell Biol.- 2001.-V. 154.- N.6.- S. 1111-1116.

236. Maragos C.M. Komplexy oxid dusnatý/nukleofyl inhibujú in vitro proliferáciu buniek melanómu A3 75 prostredníctvom uvoľňovania oxidu dusnatého. / Maragos C. M., Wang J. M., Hraibie J. A. a kol. // Zrušiť. Res. 1993.- V. 53.- S. 564568.

237. Marietta M.A. Štruktúra a mechanizmus syntázy oxidu dusnatého. / Marietta M.A. // J. Biol. Chem. -1993.- V. 268.- S. 12231-12234.

238Kamaráti J.M. Úloha reaktívneho typu kyslíka v apoptóze: hodnoty pre liečbu rakoviny. / Mates JM, Sanchez-Jimenez FM. // Cell Mol Biol. -2000.-V.46.-P. 199-214.

239. Matthews N.E. Regulácia chemosenzitivity v rakovinových bunkách sprostredkovaná oxidom dusnatým. / Matthews N.E., Adams M.A., Maxwell L.R. a kol. // J. Natl. Inst. rakoviny-2001.-V. 93.-s. 1879-1885.

240. McCord J.M. Superoxid a superoxidovaná dismutáza / J.M. McCord, J.A. Boyle, E.D. Day, L.J. Rizsolo // Ed. Michelson A.M. 1977. - S. 128-132.

241. McCormick M.L. Hladiny superoxiddismutázy a katalázy v obličkových nádoroch a ich autonómnych variantoch u škrečka sýrskeho / McCormick M.L. // Karcinogenéza. 1991.-V. 12. - S. 977-983.

242 Menconi M J. Donorom oxidu dusnatého indukovaná hyperpermeabilita kultivovaných intestinálnych epitelových monovrstiev: úloha superoxidového radikálu, hydroxylového radikálu a peroxynitritu. / Menconi M. J., Tsuji N., Unno M. a kol. // Šok. 1996. - V.6. - S. 19-24.

243. Meneghini R. Homeostáza železa, oxidačný stres a poškodenie DNA. / Meneghini R. // Voľná ​​Rad. Biol. Med. 1997.- V. 23.- S. 783-792.

244. Meyer M. H202 a antioxidanty majú opačné účinky na aktiváciu NF-kB a AP-1 v intaktných bunkách: AP-1 ako sekundárny faktor antioxidačnej odozvy. / Meyer M., Schereck R., Baeuerle P.A. // EMBO J.- 1993.- V. 12.-P. 2005-2015.

245 Mignotte B. Mitichondrie a apoptóza. / Mignotte B., Vayssiere J-L. // EUR. J Biochem. -1998.- V.252.- P.l-15.

246. Mills J.C. Apoptotické membránové pľuzgiere sú regulované fosforyláciou svetelného chanu myozínu. / Mills J.C., Stone N.I., Erhardt J., Pittman R.N. // J. Cell Biol.-1998.-V. 140.-P.627-636.

247. Min K. Transportér multidrug rezistencie ABCG2 (proteín rezistencie na rakovinu prsníka) vyteká Hoechst 33342 a je nadmerne exprimovaný v hematopoetických kmeňových bunkách. / Min K., Turnquist H., Jackson J. a kol. // Klinický výskum rakoviny.-2002.-V. 8. S.22-28.

248. Miura T. Adriamycínom-Fe-indukovaná inaktivácia enzýmov v membránach erytrocytov počas peroxidácie lipidov. / Miura T., Muraoka S., Ogiso T. // Res. komun. Molec. Pathol. Pharmacol. 1995. - V. 87. - S. 133-143.

249. Miura Y. In vivo štúdie elektrónovej paramagnetickej rezonancie na oxidačnom strese spôsobenom x-žiarením u celých myší. / Miura Y., Anzai K., Urano S., Ozawa T. // Free Radical Biology and Medicine.- 1997.- V.23. P. 533540.

250. Modolell M. Oxidácia N-hydroxyl-L-arginínu na oxid dusnatý sprostredkovaná respiračným nárazom: alternatívna cesta k syntéze NO. / Modolell M., Eichmann K., Soler G. //FRBS Let. 1997.- V. 401.- P. 123126.

251. Morcos E. Endogénne vytvorený oxid dusnatý moduluje rast buniek v bunkových líniách rakoviny močového mechúra. / Morcos E., Jansson D.T., Adolfson J., a kol. // Urológia. 1999.- V. 53.- S. 1252-1257.

252. Moriya M. Jednovláknový kyvadlový fagemid pre štúdie mutagenézy v cicavčích bunkách: 8-oxoguanín v DNA indusuje cielené GC TA transverzie v opičích obličkových bunkách. / Moriya M. // Proc. Natl. Akad. sci. USA.- 1993. V. 90. - S. 1122-1126.

253. Mozart M. Oxid dusnatý indukuje apoptózu v leukemickej bunkovej línii NALM-6 s nízkymi hladinami proteínu cyklínu E. / Mozart M., Scuderi R., Celsing F., Aguilar-Santelises M. // Cell Prolif. - 2001.- V. 34.- 369-78.

254. Mueller C. Identifikácia anovel redox-senzitívneho génu, Id3, ktorý sprostredkuje rast buniek indukovaný angiotenzínom II. / Mueller C., Baudler S., Welzel H., a kol. // Obeh. 2002.- V. 105.- S. 2423-2428.

255. Mufti S.I. Alkoholom stimulovaná podpora nádorov v gastrointestinálnom trakte. / Mufti S.I. // Detekcia rakoviny. Predch. -1998.- V.22.- S.195-203.

256. Murrell G. A. C. Modulácia proliferácie fibroblastov voľnými kyslíkovými radikálmi. / Murrell G. A. C., Francis M. J. O., Bromley L. // Biochem. J.-1990. V. 265.-P. 659-665.

257. Musarrat J. Prognostický a etiologický význam 8-hydroxyguanozínu pri karcinogenéze ľudského prsníka./ Musarrat J., Arezina-Wilson J., Wani A.A. //Eur. J. Cancer.- 1996.- V. 32A.- S. 1209-1214.

258Musch M.W. Antigénom stimulované uvoľňovanie kyseliny arachidónovej, aktivita lipoxygenázy a uvoľňovanie histamínu v klonovaných myších žírnych bunkách. / Musch M.W., Siegel M.I. // Biochem. Biophys. Res. komun. 1985.-V. 126.-s. 517-525.

259. Nakano T. Expresia mangánovej superoxiddismutázy koreluje so stavom p53 a lokálnou recidívou cervikálneho karcinómu liečeného rádioterapiou / T. Nakano, K. Oka a N. Taniguchi // Cancer Res. 1996. - V. 56.-P. 2771-2775.

260. Nakaya N. Špecifický vzor fosforylácie p53 počas zastavenia bunkového cyklu vyvolaného oxidom dusnatým. / Nakaya N., Lowe S.W., Taya Y., Chenchik A., Enikolopov G. // Oncogene.- 2000.- V. 19. 6369-6375.

261. Nalbone G. Fosfolipáza Aktivita kultivovaného potkanieho komorového myocytu je ovplyvnená povahou bunkových polynenasýtených mastných kyselín. / Nalbone G., Grynberg A., Chevalier A., ​​​​et al. // lipidy. 1990.- V. 25.- S. 301-306.

262. Neidle S. Interakcia daunomicínu a adriamicínu s nukleovými kyselinami. / Neidle S., Sanderson M.R. // Molekulárne aspekty účinku protirakovinových liekov. Eds. Neidle S., Warring M.J. - Londýn, - 1983.- S. 35-55.

263. Nindl G. Účinok peroxidu vodíka na proliferáciu, apoptózu a produkciu interleukínu-2 Jurkat T buniek. / Nindl G., Peterson N.R., Hughes E.F. // Biomed Sci Instrum. 2004. - V.40. - S. 123-128.

264 Nishiyama M. Môže cytotoxická aktivita antracyklínov súvisieť s poškodením DNA? / Nishiyama M., Horichi N., Mazouzi Z., et al. // Anticancer Drug Des. 1990.- V.5.- N 1.- S. 135-139.

265. Nojima H. ​​​​Kontrolné body bunkového cyklu, stabilita chromozómov a progresia rakoviny. / Nojima H. ​​​​// Hum cell.-1997.-V. 10.-S.221-230.

266. Nos K. Transkripčné aktivity génov včasnej odozvy v myšej osteoblastickej bunkovej línii. / Nos K., Shibanuma M., Kikuchi K.// Eur. J Biochem. 1991.-V. 201. - S. 99-106.

267. Nussler K. A. Zápal, imunoregulácia a indukovateľná syntáza oxidu dusnatého. / Nussler K., Billiar T. R. // J. Leukoc. Biol.-1993.~V.54.-P.171-178.

268. Oberley, L.W. Superoxiddismutáza. 1982- (Oberley, L.W. ed.) -V. 2, 127 s.

269. Oberley T.D. Immunohistcchemica lokalizácia antioxidačných enzýmov v tkanivách dospelých sýrskych škrečkov a počas vývoja obličiek / Oberley T.D., Oberley L.W., Slattery A.F., Lauchner L.J. a Elwell J.H. // Am. J. Pathol. 1990. - V. 56. - S. 137-199.

270. Oberley L.W. Úloha antioxidačného enzýmu pri imortalizácii a transformácii buniek / Oberley L.W a Oberley T.D. // Mol. bunka. Biocem. -1988.-V. 84.-P. 147-153.

271. Oberley T.D. In vitro modulácia hladín antioxidačných enzýmov v normálnych obličkách škrečka a estrogénom indukovanom nádore obličiek škrečka / Oberley T.D., Schultz J.L. a Oberley L.W. // Voľné radikály. Biol. Med. 1994. - V. 16, -P. 741-751.

272. Oberley T.D. Imunogold analýza antioxidačných enzýmov v ľudskom karcinóme obličkových buniek. / Oberley T.D., Sempf J.M., Oberley M.J., McCormick M.L., Muse K.E. a Oberley L.W. // Archív Vircows. -1994.-V. 424.-s. 155-164.

273. Oberley T. Hladiny antioxidačných enzýmov ako funkcia stavu rastu v bunkovej kultúre. / Oberley T., Schuetz J., Oberley L. // Biológia voľných radikálov a medicína. 1995.-V. 19, č. 1.-P. 53-65.

274. Oberley L.W. Protirakovinová terapia nadmernou expresiou superoxiddismutázy. / Oberley L.W. // Antioxidačný redoxný signál. 2001. - V. 3. - S. 461-72.

275. Okada S. Poškodenie tkaniva a rakovina vyvolaná železom: Úloha reaktívnych voľných radikálov kyslíka. / Okada S. // Patholgy Int. 1996.- V. 46.- S. 311-332.

276. Orlov S.N. Apoptóza v bunkách hladkého svalstva ciev: Úloha bunkového zmršťovania. / Orlov S.N., Dam T.V., Tremblay J.et al. // Biochem. Biophys. Res. komun. 1996. V. 221. S. 708-715.

277. Padmaja S. Reakcia oxidu dusnatého s organickými peroxylovými radikálmi. / Padmaja S, Huie RE. // Biochem. Biophys. Res.Commun. 1993. - V. 195. -P. 539-544.

278. Pagnini U. Modulácia antracyklínovej aktivity v psích prsných nádorových bunkách in vitro pomocou medroxyprogesterónacetátu. // Pagnini U, Florio S, Lombardi P a ďalší. // Res Vet Sci.- 2000.- V.69.- N.3. S. 255-62.

279. Pandey S. Oxidačný stres a aktivácia proteazómovej proteázy počas apoptózy indukovanej sérovou depriváciou v bunkách potkanieho hepatómu; inhibícia bunkovej smrti melatonínom. / Pandey S., Lopez C., Jammu A. // Apoptóza. -2003.-V.8.-P. 497-508.

280. Park K.G.M. Dôkaz pre stimuláciu rastu ľudského nádoru aminokyselinou L-arginínom. / Park K.G.M., Heyes P.H., Blessing K. a kol. // Soc. 1991.- V. 50.- S. 139A-145A.

281. Park K.G.M. L-arginín stimuluje prirodzenú cytotoxicitu ľudských lymfocytov. / Park K.G.M., Heyes P.H., Garlick P.J. a kol. //Proc. Nutr. soc. 1991.- V. 50.- S. 772A-776A.

282. Parkin D.M. Globálne štatistiky rakoviny v roku 2000. / Parkin D.M. // Onkológia Lancet. 2001. - V. 2.- S. 533-543.

283. Patel R. P. Redukcia Cu (II) lipidovými hydroperoxidmi: dôsledky pre oxidáciu lipoproteínu s nízkou hustotou závislú od medi. / Patel R. P., Svistunenko D., Wilson T., et al. // Biochem J. 1997.- V. 322.- P. 425433.

284. Pervin S. Cytáza indukovaná oxidom dusnatým a zastavenie bunkového cyklu u ľudských buniek rakoviny prsníka (MDA-MB-231): potenciálna úloha cyklínu Dl. / Pervin S., Singh R., Chaudhuri G. // Proc. Natl. Akad. sci. USA 2001.-V.98.-P. 3583-3588.

285. Pčivová J. Účinok liečiv blokujúcich beta-adrenoreceptory na uvoľňovanie kyseliny arachidónovej z fosfolipidov v stimulovaných žírnych bunkách potkanov. / Pčivová J., Drabiková K., Nosál R. // Agent a akcia. 1989. - V. 27. - S. 29-32.

286. Pietraforte D. Jednoelektrónová oxidačná dráha rozkladu peroxinitritu v ľudskej krvnej plazme: dôkaz tvorby proteínových radikálov sústredených na tryptofán. / Pietraforte D., Minetti M. // Biochem J.- 1997. V. 321.- S. 743-750.

287. Pignatti C. Oxid dusnatý sprostredkováva buď proliferáciu alebo bunkovú smrť v kardiomiocytoch. / Pignatti C., Tantini D., Stefanelli C. // Aminokyseliny. - 1999.-V. 16.-P. 181-190.

288. Plesniak L.A. Konformácia micelárneho fosfolipidu naviazaného na aktívne miesto fosfolipázy A2. / Plesniak L.A., Yu L., Dennis E.A. // Biochémia. 1995 - V. 34. - S. 4943-4951.

289. Polyak K. Model pre apoptózu indukovanú p53. / Polyak K., Xia Y., Zweier J.L., Kinzler K.W., Vogeldstein B. // Nature.- 1997.- V.389.- S. 237-238.

290. Hrnčiar A.J. Prietoková cytometrická analýza fázovej špecifickosti bunkového cyklu poškodenia DNA indukovaného žiarením, peroxidom vodíka a doxorubicínom. / Potter A.J., Gollahon K.A., Palanca B.J., et al. // Karcinogenéza.- 2002.-V.23.- S. 389-401.

291. Pryor W.A. Reakcie voľných radikálov v biológii: iniciácie autooxidácií lipidov ozónom a oxidom dusičitým.// Pryor W.A. // prostredie. Zdravotná perspektíva.- 1976.-V. 16,-P. 180-181.

292. Radi R. Peroxinitritová oxidácia sulfhydrilov. / Radi R., Beckman J.S., Bush K.M. a kol. // J. Biol. Chem. - 1991.- V. 226. - S. 4244-4250.

293. Radomski M. K. Bunky ľudského kolorektálneho adenokarcinómu: diferenciálna syntéza oxidu dusnatého určuje ich schopnosť agregovať doštičky. / Radomski M. K., Jenkins D. C., Holmes L. // Cancer Res. 1991.-V.51.-P. 6073-6078.

294. Rao D.N. Produkcia oxidu dusnatého a iných metabolitov obsahujúcich železo počas redukčného metabolizmu nitroprusidu mikrozómami a tiolmi. / Rao D.N., Cederbaum A.I. // Arch Biochem Biophys. 1995.- V. 321.- S. 363-371.

295. Ray L. E. Izolácia a niektoré charakteristiky glutatiónreduktázy z králičích erytrocytov. / Ray L.E., Prascott J.M. //Proc. soc. Exp. Biol. 1975.- V. 148.-P. 402-409.

296. Renooij W. Topologická asymetria metabolizmu fosfolipidov v membránach potkaních erytrocytov. / Renooij W., Van Golde L. M. G., Zwaal R. F. A. a kol. //Eur. J Biochem. 1976.- V. 61.- S. 53-58.

297. Rice-Evance C. Interakcie voľných radikálov a lipidov a ich patologické dôsledky. / Rice-Evance C., Burdon R. // Prog. Lipid Res. -1993. V. 32.- S. 71-110.

298. Riley P.A. Voľné radikály v biológii: Oxidačný stres a účinky ionizujúceho žiarenia. / Riley P.A. // Int. J. Radiat. Biol. 1994, V.65.- S. 2733.

299. Risom L. Oxidačné poškodenie DNA a expresia obranného génu v pľúcach myši po krátkodobom exrpssione časticiam výfukových plynov nafty inhaláciou. / Risom L., Dybdahl M., Bornholdt J. a kol. // Karcinogenéza. - 2003.-V. 24.-str. 1847-1852.

300. Rizzo M.T. Indukcia apoptózy kyselinou arashidónovou v bunkách chronickej myeloidnej leukémie. / Rizzo M.T., Regazzi E., Garau D., Acard L. a kol. // Cancer Res. 1999.- V. 59.- S. 5047-5053.

301. Robles S. J. Trvalé zastavenie bunkového cyklu v asynchrónne proliferujúcich normálnych ľudských fibroblastoch ošetrených doxorubicínom alebo etopozidom, ale nie kamptotecínom. / Robles S. J. // Biochem. Pharmacol. 1999.- V.58.- S. 675-685.

302. Romagnani P. Produkcia IP-10 a Mig glomerulárnymi bunkami pri ľudskej proliferatívnej glomerulonefritíde a regulácia oxidom dusnatým. // Romagnani P, Lazzeri E, Lasagni L, Mavilia C a ďalší. // J. Am. soc. Nephrol.- 2002.- V.13.- N.I.- S.53-64.

303. Rose D. Účinky mastných kyselín a inhibítorov syntézy eikosanoidov na rast ľudskej bunkovej línie rakoviny prsníka v kultúre. / Rose D., Connolly M. // Cancar Res. 1990.-V. 50.- S. 7139-7144.

304. Rossi M.A. Analýza aktivít enzýmu glutatión deprndet v dvoch rôznych hepatómoch potkanov a v normálnej pečeni vo vzťahu k ich úlohe v odolnosti voči oxidačnému stresu. / Rossi M.A., Dianzani M. // Nádory. -1988.-zv. 74.-s. 617-621.

305. Sacai T. Inhibícia indukcie NO syntázy protirakovinovým liekom 4"-epi-doxorubicín u potkanov. / Sacai T., Muramatsu I., Hayashi N. et al.// Gen. Pharmacol. 1996. - Vol.8 - S. 1367 - 1372.

306. Salvemini D. Oxid dusnatý aktivuje enzýmy cyklooxigenázy./ Salvemini D., Misko T. P., Masferer J. L. //Proc.Natl. Akad. Sei. USA. 1993.-V.90.- S. 7240-7244.

307 Salvemini D. regulácia tvorby prostaglandínov oxidom dusnatým; in vivo analýzu. / Salvemini D., Settle S.L., Masferer J.L. / British J. Pharmacol.- 1995.-Y. 114,- S. 1171-1178.

308. Sandler S. Nové experimentálne stratégie na prevenciu rozvoja diabetes mellitus 1. typu. / Sandler S, Andersson AK, Barbu A a ďalší. // Ups. J. Med. Sei.- 2000. V.105. - N.2.- S.17-34.

309. Sandstrom P.A. Autokrinná produkcia extracelulárnej katalázy bráni apoptóze ľudskej CEM T-bunkovej línie v médiu bez ceru. / Sandstrom P.A., Buttke T.M. //Proc.Natl. Akad. Sei. USA. 1993.-V.90.-P. 4708-4712.

310. Schenk H. Výrazný účinok tioredoxínu a antioxidantov na aktiváciu transkripčných faktorov NF-kB a AP-1. / Schenk H., Klein M., Erdbrugger W., et al. //Proc.Natl. Akad. Sei. USA. 1994.- V 91.- S. 1672-1676.

311. Schreck R. Reaktívne kyslíkové medziprodukty ako zjavne široko používané poslov pri aktivácii NF-kappa B transkripčného faktora a HIV-1. / Schreck R., Richer P., Baeuerle P. A. // EMBO Journal. 1991. - č.10.-P. 2247-2258.

312. Schuler M. Mechanisms of p53-dependent apoptosis.// Schuler M., Green D.R. // Biochem. soc. Trans.- 2001.- V.29.- S.684-688.

313 Scorrano L. Kyselina arachidónová spôsobuje bunkovú smrť prostredníctvom prechodu mitochondriálnej permeability. / Scorrano L., Penzo D., Petronilli V., Pagano F., Bernardi P. // J. Biol. Chem.- 2001.- V. 276.- S. 1203512040.

314. Scorza G. Úloha askorbátových a proteínových tiolov pri uvoľňovaní oxidu dusnatého z S-nitrózo-albumínu a S-nitrózo-glutatiónu v ľudskej plazme. / Scorza G., Pietraforte D., Minetti M. // Voľná ​​Rad. Biol. Med. 1997.-V.22.-P. 633-642.

315. Sedlis S.P. Účinky lyzofosfatidylcholínu na kultivované srdcové bunky: korelácia rýchlosti absorpcie a rozsahu akumulácie s poškodením buniek. / Sedlis S.P., Seqeira J.M., Ahumada G.G., et al. // J. Lab. Clin. Med. -1988.-V. 112.-s. 745-754.

316. Sen C.K. Antioxidanty a redoxná regulácia génovej transkripcie. / Sen C.K., Packer L. // FASEB J. 1996.- V. 10.- S. 709-720.

317 Seril D.N. Karcinogenéza spojená s oxidačným stresom a ulceróznou kolitídou: štúdie na ľuďoch a zvieracích modeloch. / Seril D.N., Liao J., Yang G-Y., Yang C.S. // Karcinogenéza.- 2003.- V.24. S.353-362.

318. Sevanian A., Muakkassah-Kelley S.F., Montestruque S. Vplyv fosfolipázy A2 a glutatiónperoxidázy na elimináciu peroxidov membránových lipidov // Arch. Biochem. Biophys. -1983. V. 223. - S. 441-452.

319. Shen J. Tumorogenita pečene trimetylarzínoxidu u samcov potkanov Fischer 344 - spojenie s oxidačným poškodením DNA a zvýšenou proliferáciou buniek. / Shen J., Wanibuchi H., Salim E.I. a kol. // Karcinogenéza. -2003.-V. 24.-str. 1827-1835.

320. Shi Q. Vplyv narušenia génu syntázy II oxidu dusnatého na rast nádoru a metastázy. // Shi Q, Xiong Q, Wang B a ďalší. // Cancer Res.-2000.- V. 60.-P. 2579-2583.

321. Shibanuma M. Indukcia replikácie DNA a expresia protoonkogénov c-myc a c-fos v kľudových bunkách Balb/3T3 xantín-xantínoxidázou. / M. Shibanuma, T. Kuroki, M. Nos // Onkogén. -1988.- V. 3.-P. 17-21.

322. Shibanuma M. Stimulácia génovej expresie a fosforylácie špecifického proteínu v kľudových bunkách Balb/3T3 rodiny génovej expresie a fosforylácie pomocou peroxidu vodíka. / M. Shibanuma, T. Kuroki, K. Nos // Onkogén. 1990. - V. 3. - S. 27-32.

323. ShinouraN. Úroveň expresie Bcl-2 určuje anti- alebo proapoptotickú funkciu. / Shinoura N., Yoshida Y., Nishimura M., Muramatsu Y., Asai A. // Cancer Res.- 1999.- V. 59.- S. 4119-4128.

324. Siegert A. Oxid dusnatý bunkových línií ľudského kolorektálneho adenokarcinómu podporuje inváziu nádorových buniek. / Siegert A., Rosenberg C., Schmitt W.D. a kol. //Br. J. Cancer.-2002.-V.86.-N.8. S. 1310-1315.

325. Sies H. // Oxidačný stres: oxidanty a antioxidanty. N.Y.: Academic Press. 1991.- 128 s.

326. Singh S. Niyric oxid, biologický mediátor desaťročia: skutočnosť alebo fikcia. / Singh S., Evans T.V. //Eur.Respir. J. -1997, - V. 10. - S. 699-707.

327. Smalowski W. E. Expozícia oxidu dusnatého inhibuje indukciu lymfokínom aktivovaných zabíjačských buniek indukciou prekurzorovej apoptózy. /

328. Smalowski W.E., Yim C.-Y., McGregor J.R. // Oxid dusnatý: biológia a chémia. 1998.- V. 2.- S. 45-56.

329. Smith T.R. Poškodenie DNA a riziko rakoviny prsníka. / Smith T.R., Miller M.S., Lohman K.K. // Karcinogenéza. 2003. - V. 24. - S. 883-889.

330. Snow E.T. Karcinogenéza kovov: mehanistické dôsledky. / Snow E.T. // Pharmacol Ther. 1992.- V.53.- S. 31-65.

331.Sv. Claire O.K. Komplementárna DNA kódujúca mangán superoxiddismutázu rakoviny hrubého čreva a expresia jej génu v ľudských bunkách. /Sv. Claire O.K. a Holland J.C. // Cancer Res. 1991. - V. 51. - S. 939-943.

332. Stein C. S. Zapojenie oxidu dusnatého do IFN-gama-sprostredkovanej redukcie proliferácie buniek hladkého svalstva mikrociev. / Stein C.S., Fabry Z., Murphy S., Hart M.N. // Mol. Immunol. 1995.- V. 32.- S. 96573.

333 Stirpe F. Stimulácia xantínoxidázou 3T3 švajčiarskych fibroblastov a ľudských lymfocytov. / Stirpe F., Higgins T., Tazzori P. L., Rosengurt E. // Exp. Cell Res. 1999.-V. 192.-s. 635-638.

334. Sun Y. Voľné radikály, antioxidačné enzýmy a karcinogenéza. / Y. Sun // Voľné radikály. Biol. Med. 1990. - V. 8, - S. 583-599.

335. Sun Y. Znížené antioxidačné enzýmy v spontánne transformovaných embryonálnych myších pečeňových bunkách v kultúre. / Sun Y., Oberley L.W., Elwell J.H. a Sierra-Rivera E. // Karcinogenéza. 1993. - V. 14. - S. 1457-1463.

336. Takei Y. Dôkazy zapojenia cyklooxygenázy-2 do proliferácie dvoch gastrointestinálnych rakovinových bunkových línií. / Takei Y., Kobayashi I., Nagano K., a kol. // Prostagland. Leukotriens a Essent. Mastné kyseliny. 1996.-V.55.-P. 179-183.

337. Terwel D. S-nitrózo-N-acetylpenicilamín a nitroprusid indukujú apoptózu v neurónovej bunkovej línii produkciou rôznych reaktívnych molekúl. / Terwel D, Nieland LJ, Schutte B a ďalší. // EUR. J. Pharmacol.-2000.-V. 14.-S.19-33.

338. Tham D.M. Zvýšená expresia extracelulárnej glutation peroxidázy u myší s experimentálnou kolitídou vyvolanou dextránom sodným. / Tham D.M., Whitin J.C., Cohen HJ. // Pediatr. Res. 2002. - V. 5. - S. 641-646.

339. Thannickal V.J. Ras-dependentná a nezávislá regulácia reaktívnych foriem kyslíka mitogénnymi rastovými faktormi a TGF-(31. / Thannickal V.J. // FASEB J.- 2000.- V.14.- S. 1741-1748.

340. Thomas W.J. Úloha voľných radikálov odvodených od kyslíka a oxidu dusnatého pri cytokínmi indukovanej antiproliferácii rakovinových buniek pankreasu. / Thomas W.J., Thomas D.L., Knezetic J.A. a ďalší. // Neurofarmakológia.-2002.- V.-42.-N.2.-P.262-269.

341. Tormos C. Úloha glutatiónu pri indukcii apoptózy a c-fos a c-jun mRNA oxidačným stresom v nádorových bunkách / Tormos C., Javier Chaves F., Garcia M.J., et all. // Cancer Lett. 2004. - V.208.- S.103-113.

342. Tsudji S. Dôkaz účasti cyklooxygenázy-2 na proliferácii dvoch gastrointestinálnych rakovinových bunkových línií. / Tsudji S., Kawano S., Sawaoka

343. H., Takei Y. I I Prostagland. Leukotriens a Essent. Mastné kyseliny. 1996.-V.55.-P. 179-183.

344. Hm H.D. Fas sprostredkováva apoptózu v ľudských monocytoch cestou závislou od reaktívneho kyslíka. / Um H.D., Orenstein J.M., Wahl S.M. // J. Immunol. 1996.- V.156.- S. 3469-34-77.

345. Umansky V. Aktivované endotelové bunky indukujú apoptózu v lymfómových bunkách: Úloha oxidu dusnatého. / Umansky V., Bucur M., Schirrmacher V., et al. /int. J. Oncol. 1997.- V. 10.- S. 465-471.

346. Van der Woude C.J. Chronický zápal, apoptóza a premalígne lézie v gastro-intestinálnom trakte. / Van der Woude C.J., Kleibeuker J.H., Jansen P.L., Moshage H. // Apoptóza.- 2004.- V.9.- S. 123-130.

347. Vaskovskij V.E. Univerzálne činidlo na analýzu fosfolipidov. / Vaskovsky V.E., Kostetsky E., Vasendin I.A. // J. Chromatografia/-1975. -V. 115.-S.129-142.

348. Vaskovský V.E. Modifikované Junguikkelovo činidlo na detekciu fosfolipidov a iných zlúčenín fosforu na tenkovrstvových chromatogramoch. /Vaskovsky V.E., Latyshev N. // J. Chromatography/-1975.-V. 115.-P. 246-249.

349. Vetrovsky P. Možný mechanizmus tvorby oxidu dusnatého z N-hydroxy-L-arginínu alebo hydroxylamínu superoxidovým iónom. / Vetrovsky P., Stoclet J., Entlicher G. // Int.J. Biochem. bunka. Biol. 1996.- V28.- S. 1311-1318.

350. Wang H. Kvantifikácia bunkového oxidačného stresu pomocou dichlórfluoresceínového testu s použitím čítačky mikrodoštičiek. / Wang H., Joseph J. A. // Voľná ​​Rad. Biol. Med.- 1999. V.27.- S. 612-616.

351. Wasylyk C. Onkogénna konverzia Ets ovplyvňuje redoxnú reguláciu in vivo a in vitro. / Wasylyk C., Wasylyk B. // Nucleic Acids Res. 1993. Vol. 21.-str. 523-529.

352. Weinberg R.A. Nádorové supresorové gény. / Weinberg R.A. // Veda.-1991.-V.254.-P. 1138-1146.

353. Weinstein D. M. Tvorba kadického peroxinitritu a dysfunkcia ľavej komory po liečbe doxorubicínom u myší. / Weinstein D.M., Mihm M.J., Bauer J.A. // J Pharmacol Exp. Ter. 2000.- V. 294.- S. 396401.

354. Whitin J.C. Extracelulárna glutation peroxidáza je secernovaná bazolaterálne bunkami proximálneho tubulu ľudských obličiek. / Whitin J.C., Bhamre S., Tham D.M., Cohen H. J. // Am. J. Renal. fyziol. 2002.- V. 283,- P. F20 - F28.

355. Willson R.L. Organické peroxy-voľné radikály ako hlavné činidlá pri toxicite kyslíka. / Willson R.L. // Oxidačný stres. L., akad. Stlačte tlačidlo. - 1985.- S. 41-72.

356. Zimná M.L. Voľnými radikálmi indukovaný karbonylový obsah v proteíne škrečkov liečených estrogénom testovaný redukciou boro(3H)hydridu sodného / Winter M.L. a Liehr J.G. // J. Biol. Chem. 1991. - V. 66, č. 2. - S. 14446-14450.

357. Xu Q. Bunková obrana proti apoptóze indukovanej H202 prostredníctvom dráhy MAP kinázy-MKP-1. / Xu Q., Konta T., Nakayama K. a kol. // Voľné radikály. Biol. Med. 2004. - V.36. - S. 985-993.

358. Xu W. Oxid dusnatý upreguluje expresiu DNA-PKcs na ochranu buniek pred protinádorovými látkami poškodzujúcimi DNA. / Xu W., Liu L., Smith G.C., Charles L.G. //Nat. bunka. Biol. 2000.- V.2.- N.6.- P.339-345.

359. Yamamoto S. Podpora nádoru a kaskáda kyseliny arachidónovej. / Yamamoto S. // Nippon Yakurigaku Zasshi.- 1993.-V. 101.-N.6.- S. 34961.

360. Yamamoto T. Donory oxidu dusnatého. / Yamamoto T., Bing R.J. //Proc. soc. Exp. Biol. Med. 2000.- V. 225.- S. 1-10.

361. Yang J.Q. mitogénna signalizácia v-Ha-ras prostredníctvom superoxidu a odvodených reaktívnych foriem kyslíka. / Yang JQ, Buettner GR, Domann FE, Li Q,

362. Engelhardt JF, Weydert CD, Oberley LW. 11 Anticancer Res.- 2001.- V. 21.-P. 3949-56.

363. Yang A.H. In vitro modulácia antioxidačných enzýmov v normálnom a malígnom renálnom epiteli. / A.H. Yang, T.D. Oberley, L.W. Oberley, S.M. Schmid, K.B. Cummings. // In Vitro Cell Dev. Biol. 1987 - V. 23, č. 8.-P. 546-558.

364. Yang F. Modulácia oxidu dusnatého vyvolala apoptózu prostredníctvom p53-downstream cieľa p21 (WAF1/CIP1). / Yang F., Knethen A., Brune B. // J. Leukoc. Biol. -2000. -V.69. - S.916-922.

365. Yu B. P. Bunková obrana proti poškodeniu reaktívnymi formami kyslíka. / B. P. Yu. // Physiol. preskúmanie. 1994. - V. 74, č. 1. - S. 139-162.

366 Zhang R. Thioredoxin-2 inhibuje apoptózu sprostredkovanú ASK 1 umiestnenú v mitochondriách spôsobom nezávislým od JNK. / Zhang R., Al-Lamki R., Bai L. a kol. // Circ Res. 2004. - V.94 - S. 1483 - 1491.

367. Zhang X.M. Metastatické bunky melanómu unikajú z imunitného dozoru prostredníctvom nového mechanizmu uvoľňovania oxidu dusnatého na vyvolanie dysfunkcie imunocytov. / X. M. Zhang, Q. Xu // Eur. J. Surg - 2001, - V.167. - N. 7, - S. 484-489.

Upozorňujeme, že vyššie uvedené vedecké texty sú zverejnené na posúdenie a získané prostredníctvom rozpoznávania textu pôvodnej dizertačnej práce (OCR). V tejto súvislosti môžu obsahovať chyby súvisiace s nedokonalosťou rozpoznávacích algoritmov. V súboroch PDF dizertačných prác a abstraktov, ktoré dodávame, sa takéto chyby nevyskytujú.


Endokrinná, parakrinná a autokrinná regulácia. Normálne sa bunky delia výlučne pod vplyvom rôznych faktorov vnútorného prostredia tela (a vonkajšieho - vo vzťahu k bunke). To je ich zásadný rozdiel od transformovaných buniek, ktoré sa delia pod vplyvom endogénnych stimulov. Existujú dva typy fyziologickej regulácie – endokrinná a parakrinná. Endokrinnú reguláciu vykonávajú špecializované orgány (žľazy s vnútornou sekréciou), vrátane hypofýzy, nadobličiek, štítnej žľazy, prištítnych teliesok, pankreasu a pohlavných žliaz. Vylučujú produkty svojej činnosti do krvi a majú všeobecný účinok na celé telo.
Parakrinná regulácia je charakteristická tým, že v tom istom tkanive na seba susedné bunky pôsobia prostredníctvom vylučovaných a difúznych účinných látok. Tieto mitogénne stimulanty (polypeptidové rastové faktory) zahŕňajú epidermálny rastový faktor, rastový faktor krvných doštičiek, interleukín-2 (rastový faktor T-buniek), nervový rastový faktor a mnohé ďalšie.
Autokrinná regulácia, charakteristická pre nádorové bunky, sa líši od parakrinnej regulácie tým, že tá istá bunka je zdrojom rastového faktora aj jeho cieľom. Výsledkom je pokračujúca, samoudržujúca sa mitogénna „excitácia“ bunky, čo vedie k neregulovanej reprodukcii. V tomto prípade bunka nepotrebuje vonkajšie mitogénne stimuly a stáva sa úplne autonómnou.
Prenos mitogénneho signálu je viacstupňový proces. V závislosti od typu bunky a špecifického mitogénneho stimulu sa realizuje jedna z mnohých signálnych dráh. Takzvaná MAP kinázová kaskáda je opísaná nižšie ako "prototyp".
Rastové faktory (regulátory proliferácie) sú vylučované niektorými bunkami a na iné pôsobia parakrinným spôsobom. Toto sú malé veveričky. Polypeptidový reťazec EGF (epidermálny rastový faktor) pozostáva napríklad z 53 aminokyselín. Existuje niekoľko rodín rastových faktorov, z ktorých každého zástupcu spájajú štrukturálne a funkčné podobnosti. Niektoré z nich stimulujú proliferáciu (napríklad EGF a PDGF, rastový faktor odvodený od krvných doštičiek, rastový faktor odvodený od krvných doštičiek), zatiaľ čo iné (TGF-p, TNF, interferóny) ju potláčajú.
Receptory sú umiestnené na povrchu bunky. Každá bunka má svoj vlastný repertoár receptorov, a teda svoj vlastný špeciálny súbor odpovedí. Funkčne veľmi dôležitú rodinu tvoria takzvané tyrozínkinázové receptory (TKR), ktoré majú enzymatickú (proteínkinázovú) aktivitu. Pozostávajú z niekoľkých domén (štrukturálnych a funkčných blokov): extracelulárnej (interagujúcej s ligandom – v tomto prípade s rastovým faktorom), transmembránovej a submembránovej, s aktivitou tyrozín proteínkinázy. V závislosti od štruktúry sú TCR rozdelené do niekoľkých podtried.
Po väzbe na rastové faktory (napríklad EGF) molekuly receptora dimerizujú, ich intracelulárne domény sa zbiehajú a indukujú intermolekulárnu autofosforyláciu tyrozínu. Tento transmembránový prenos signálu je začiatkom „excitačnej“ vlny, ktorá sa potom šíri vo forme kaskády fosforylačných reakcií do bunky a nakoniec dosiahne chromozómový aparát jadra. TCR majú tyrozínkinázovú aktivitu, ale ako sa signál presúva do bunky, typ fosforylácie sa mení na serín/treonín.
Ras proteíny. Jednou z najdôležitejších je signálna dráha zahŕňajúca Ras proteíny (ide o podrodinu tzv. G-proteínov, ktoré tvoria komplexy s guanylnukleotidmi; Ras-GTP je aktívna forma, Ras-GDP je neaktívna). Táto dráha, jedna z hlavných v regulácii bunkového delenia vo vyšších eukaryotoch, je tak zachovaná, že jej zložky môžu nahradiť zodpovedajúce homológy v bunkách Drosophila, kvasiniek a háďatiek. Sprostredkúva množstvo environmentálnych signálov a zdá sa, že funguje v každej bunke tela. Ras zohráva úlohu akéhosi turniketu, cez ktorý musí prejsť takmer každý zo signálov vstupujúcich do bunky. Kritická úloha tohto proteínu v regulácii bunkového delenia je známa už od polovice 80. rokov 20. storočia, kedy bola v mnohých ľudských nádoroch nájdená aktivovaná forma zodpovedajúceho génu (Ras onkogén). Aktivácia onkogénov (onkogény sú gény, ktoré spôsobujú neregulované delenie buniek) je jednou z hlavných udalostí karcinogenézy. Ide o také poškodenie normálneho génu, ktorý sa podieľa na regulácii bunkovej reprodukcie (protoonkogén – normálny bunkový gén schopný vyvolať rast nádoru, ak je narušená jeho štruktúra), vďaka čomu je trvalo funkčný (aktívny) a tým vyvoláva rovnako kontinuálne (neregulované) delenie buniek. Pretože mnohé bunkové gény (protoonkogény) sa podieľajú na regulácii bunkovej reprodukcie, ktorej poškodenie je potenciálne schopné spôsobiť rast nádoru, existuje teda veľa (niekoľko desiatok a možno aj stoviek) onkogénov.
V špecifickej situácii signálnej dráhy sprostredkovanej Ras (napríklad počas interakcie EGF s receptorom) vedie dimerizácia receptora k autofosforylácii jedného z tyrozínových zvyškov v jeho submembránovej doméne. Výsledkom je, že je možné samo-zostavenie („nábor“ do komplexu) množstva proteínov umiestnených v smere signálnej dráhy (adaptérový proteín Grb2, proteín Sos1). Tento multiproteínový komplex je lokalizovaný v plazmatickej membráne.
MAP kinázová kaskáda. MAP kinázy (mitogénom aktivované proteínkinázy) sú serín/treonín proteínkinázy aktivované ako výsledok mitogénnej bunkovej stimulácie. Kinázová kaskáda vzniká ako výsledok postupnej aktivácie jedného enzýmu druhým, stojacim „vyššie“ v signálnej dráhe. V dôsledku stimulácie proteínu Ras a tvorby submembránového komplexu sa zvyšuje aktivita dvoch cytoplazmatických serín/treonín MAP kináz (tiež známych ako ERK1 a ERK2, extracelulárnym signálom regulované proteínkinázy 1 a 2), ktoré sa pohybujú z cytoplazmy do bunkového jadra, kde fosforylujú kľúčové transkripčné faktory – proteíny, ktoré regulujú aktivitu rôznych génov.
aktivácia transkripcie. Skupina génov, ktoré určujú vstup bunky do S fázy, je aktivovaná transkripčným faktorom AP-1, komplexom proteínov Jun a Fos (gény, ktoré ich kódujú, c-Jun a c-Fos, sú protoonkogény c - z bunky, označuje ich bunkový pôvod na rozdiel od vírusových onkogénov v-Jun a v-Fos). Tieto transkripčné faktory môžu navzájom interagovať za vzniku mnohých homo- a heterodimérov, ktoré sa viažu na určité oblasti DNA a stimulujú syntézu RNA na génoch susediacich s týmito oblasťami. MAP kinázy zvyšujú aktivitu AP-1 dvoma spôsobmi:
sprostredkované, aktivácia génov kódujúcich tieto transkripčné faktory, a tým zvýšenie ich obsahu v bunke;
priama fosforylácia serínových a treonínových zvyškov zahrnutých v ich zložení.
V dôsledku aktivácie génu sa produkujú proteíny potrebné na syntézu DNA a následnú mitózu. Niektoré z novovytvorených proteínov (Fos, Jun, Myc), známe ako proteíny okamžitej včasnej odpovede (proteíny okamžitej odpovede), vykonávajú regulačné funkcie; viažu sa na špecifické oblasti DNA, aktivujú susedné gény. Ďalšiu skupinu tvoria enzýmy ako tymidínkináza, ribonukleotidreduktáza, dihydrofolátreduktáza, tymidylátsyntáza, ornitíndekarboxyláza, DNA polymerázy, topoizomerázy a enzýmy, ktoré priamo súvisia so syntézou DNA. Okrem toho sa zvyšuje celková syntéza proteínov, pretože všetky bunkové štruktúry sa reprodukujú s každým cyklom zdvojenia.
Implementácia mitogénneho signálu. Výsledkom prenosu mitogénneho signálu je realizácia komplexného programu bunkového delenia.
Bunkový cyklus. Bunky môžu byť v jednom z troch stavov – v deliacom cykle, v kľudovom štádiu s možnosťou návratu do cyklu a napokon v štádiu terminálnej diferenciácie, v ktorej sa schopnosť deliť sa úplne stráca. Nádory môžu vytvárať len tie bunky, ktoré si zachovali schopnosť deliť sa.
Cyklus zdvojenia rôznych ľudských buniek sa pohybuje od 18 hodín (bunky kostnej drene) do 450 hodín (bunky krýpt hrubého čreva), v priemere - 24 hodín Mitóza (M) a syntéza DNA (fáza S), medzi ktorými sú 2 medziprodukty (medzera) rozlišujú sa periódy - G1 a G2, najvýraznejšie; počas interfázy (obdobie medzi dvoma deleniami) bunka rastie a pripravuje sa na mitózu. V období fázy G1 nastáva moment (tzv. bod obmedzenia R), kedy sa volí medzi vstupom do ďalšieho deliaceho cyklu alebo prechodom do štádia odpočinku G0. Vstup bunky do deliaceho cyklu je pravdepodobnostný proces určený kombináciou množstva podmienok (vnútorných a vonkajších); avšak po vykonaní výberu sa ďalšie kroky vykonajú automaticky. Hoci sa bunka môže zablokovať v jednej alebo druhej fáze deliaceho cyklu, zvyčajne to môže byť výsledkom niektorých špeciálnych okolností.
V cykle sú obzvlášť dôležité momenty, keď bunka vstupuje do fázy syntézy DNA (hranica G/S fázy) a mitózy (hranica fázy G2/M), kde existujú akési „kontrolné body“ (kontrolné body), ktoré kontrolujú integritu DNA v prvý prípad ( jeho pripravenosť na replikáciu) a v druhom prípade úplnosť replikácie. Bunky s poškodenou alebo nedostatočne replikovanou DNA sú blokované na hranici zodpovedajúcich fáz, čo zabraňuje možnosti prenosu defektov v jej štruktúre na potomkov vo forme mutácií, delécií a iných porúch. Nejaký druh systému sledovania, ktorý zjavne existuje v bunke, indukuje systém opravy DNA, po ktorom môže bunka pokračovať v pohybe cyklom. Alternatívou opravy je apoptóza, ktorá radikálne eliminuje riziko, že sa v tele objaví klon defektných (potenciálne nádorových) buniek. Konkrétna voľba závisí od mnohých podmienok, vrátane individuálnych charakteristík bunky.
Proces replikácie DNA je zložitý a zdĺhavý (trvá niekoľko hodín), pretože všetok genetický materiál bunky sa musí presne reprodukovať. Ak sa v nej vyskytnú nejaké odchýlky, bunka je zablokovaná na ceste k mitóze (na hranici fázy G2/M) a môže podstúpiť aj apoptózu. Ochrannú hodnotu kontrolných bodov možno len ťažko preceňovať, pretože ich funkčné defekty majú v konečnom dôsledku za následok tak nádorovú transformáciu bunky, ako aj progresiu už vytvoreného nádoru.
cyklické reakcie. Existujú dve rodiny proteínov, ktoré „poháňajú“ bunkový cyklus – cyklín(susHp)-dependentné serín/treonín proteínkinázy (Cdk, cyklín-dependentné kinázy) a samotné cyklíny. Cyklíny regulujú aktivitu Cdk a tým ich schopnosť modifikovať cieľové štruktúry priamo zapojené do metamorfóz cyklu. S ich účasťou sa uskutočňujú také dôležité fázy cyklu, ako je rozpad jadrovej membrány, kondenzácia chromatínu, tvorba vretienka a mnoho ďalších. Cdk sú aktívne len v kombinácii s jedným z cyklínov. V tomto ohľade sú kľúčovými momentmi bunkového cyklu zostavenie a aktivácia mnohých Cdkcyklínových komplexov, ako aj ich disociácia.
Ako už názov napovedá, cyklíny sa syntetizujú a degradujú v presne definovaných bodoch cyklu, ktoré sa líšia pre rôzne cyklíny. Existujú tri hlavné triedy z nich: nylcyklíny, potrebné na prechod GyS, S-cyklíny - na prechod S-fázy a G2 (alebo mitotické) - cyklíny na vstup do mitózy. Cicavčie bunky majú tiež niekoľko rodín Cdk zapojených do rôznych regulačných vplyvov. Odstránenie jedného alebo druhého cyklínu z intracelulárneho prostredia striktne v určitom okamihu je rovnako dôležité ako jeho vzhľad (eliminácia cyklínov z intracelulárneho prostredia sa dosiahne ich degradáciou a blokovaním syntézy), napríklad pri mitóze (na hranici meta- a anafázy) v dôsledku proteolýzy jeden z cyklínov rýchlo degraduje; ak sa tak nestane, mitóza nemôže byť dokončená a delenie dcérskych buniek nenastane.
Progresia v S fáze vyžaduje aktiváciu Cdk2, Cdk4 a Cdk6 kináz, ktoré interagujú s vL-fázovými cyklínmi (najmä s cyklínom D). Komplex Cdc2 s prvým cyklínom vo fáze IL indukuje transkripciu génu ďalšieho cyklínu atď., čím sa bunky posúvajú ďalej v cykle. Cdc2-cyklín D je spočiatku nahradený Cdc2-cyklínom E, ktorý je zase nahradený Cdc2-cyklínom A, ktorý aktivuje aparát syntézy DNA. Keď bunka vstúpi do S fázy, μL cyklíny degradujú a znovu sa objavia až v G1 fáze nasledujúceho cyklu.
Checkpoints (kontrolné body - anglicky). Akýkoľvek stresor (napríklad nedostatok živín, hypoxia, najmä poškodenie DNA) blokuje cyklus pohybu v jednom z dvoch kontrolných bodov uvedených vyššie. Počas týchto odstávok sa aktivujú mechanizmy dohľadu, ktoré môžu:
odhaliť poškodenie DNA;
preniesť tiesňový signál, ktorý blokuje syntézu DNA resp
mitóza;
aktivovať mechanizmy opravy DNA.
To zaisťuje stabilitu genómu. Ako už bolo spomenuté vyššie, G/S kontrolný mechanizmus blokuje replikáciu DNA a aktivuje reparačné procesy (alebo indukuje apoptózu), kým G2/M kontrolný mechanizmus inhibuje mitózu až do ukončenia replikácie.Defekty týchto mechanizmov môžu viesť k dcérskym bunkám s poškodeným genómom .
Mechanizmus kontrolných bodov zahŕňa komplexy Cdk-cyklín a množstvo ďalších proteínov - Rb, p53 a ďalšie. Ich kombinácia tvorí systém „brzd“, ktoré nedovoľujú bunke deliť sa pri nedostatku adekvátnych podnetov. Gény kódujúce tieto proteíny sa nazývajú supresorové gény. Zvláštny význam tohto systému spočíva v tom, že rakovinová transformácia bunky je možná až po jej inaktivácii. V somatickej bunke existujú dve alely každého z génov, vrátane supresorových génov, a preto sú na ich inaktiváciu potrebné dve nezávislé udalosti (napríklad delécia jednej alely a mutácia inej). Z tohto dôvodu sa „sporadické“ nádory objavujú pomerne zriedka (pravdepodobnosť niekoľkých nezávislých mutácií vyskytujúcich sa v jednej bunke a postihujúcich rovnaký lokus oboch chromozómov je relatívne malá) a „rodinné“ nádory sú extrémne časté (v tzv. rodiny s rakovinou, jedna z dvoch zdedených alel jedného alebo druhého supresorového génu je spočiatku defektná). V druhom prípade je „brzdový“ systém vo všetkých bunkách daného organizmu zabezpečený iba jednou normálnou alelou, čo výrazne znižuje jej spoľahlivosť a zvyšuje riziko nádoru. To je presne to, čo sa deje pri dedičnom retinoblastóme (delécia jednej alely Rb) a iných dedičných syndrómoch (delécia alebo poškodenie jednej alely p53 alebo iných supresorových génov).
V bunkách s defektným alebo chýbajúcim supresorovým proteínom p53 je kontrolný bod GyS defektný. Prejavuje sa to v tom, že poškodenie DNA vyvolané ionizujúcim žiarením alebo akýmkoľvek iným spôsobom nevedie k retencii buniek na hranici G 1/S fázy, ani ku kapoptóze. V dôsledku toho sa v populácii hromadia bunky s viacnásobnými poruchami v štruktúre DNA; nestabilita genómu sa objavuje a časom sa zvyšuje, čo prispieva k vzniku nových bunkových klonov. Ich prirodzený výber je základom progresie nádoru – neustáleho „driftu“ nádoru do stále väčšej autonómie a malignity.
Apoptóza (alebo programovaná bunková smrť) je rozšírený biologický jav bunkovej „samovraždy“, ktorý je vyvolaný buď rôznymi vonkajšími podnetmi, alebo neriešiteľnými „vnútornými“ konfliktmi (napríklad neschopnosťou opraviť poškodenie DNA). Úloha apoptózy je veľká nielen pri formovacích procesoch počas embryogenézy (tvorba orgánov, nahradenie niektorých tkanív inými, resorpcia dočasných orgánov a pod.), ale aj pri udržiavaní homeostázy tkanív v dospelom organizme. .
Pri regulácii tkanivovej homeostázy vykonáva bunková smrť funkciu komplementárnu k mitóze. V nádorových bunkách je vo väčšine prípadov zablokovaný program bunkovej smrti, čo výrazne prispieva k nárastu nádorovej hmoty.
Mechanizmy apoptózy. Zásadný význam má fakt, že mechanizmy apoptózy sú extrémne konzervatívne a zachovávajú si svoje základné vzorce v organizmoch, ktoré sú evolučne veľmi vzdialené. Táto okolnosť umožnila identifikovať gény u cicavcov (najmä u ľudí), ktoré sú homológne s génmi apoptózy v háďatkách, organizme, v ktorom bol prvýkrát objavený a študovaný genetický systém riadiaci tento proces.
V dôsledku toho boli u cicavcov identifikované gény rodiny Bcl-2. Úloha samotného Bcl-2 a niektorých jeho homológov je antiapoptotická (zabraňujúca bunkovej smrti), zatiaľ čo ostatní členovia rodiny, ako napríklad Bax, sú proapoptotické. Proteíny Bax a Vs1-2 sú schopné vzájomnej tvorby komplexov. V závislosti od relatívneho intracelulárneho obsahu pro- a antiapoptotických proteínov sa rozhoduje o osude danej bunky. Mechanizmus účinku proteínov rodiny Bcl-2 nie je úplne jasný.
Veľký funkčný význam má mechanizmus apoptózy indukovaný prostredníctvom špecifických receptorov CD95 (45 kDa transmembránový receptorový proteín, ktorý po naviazaní na špecifický ligand alebo protilátky prenáša signál k apoptóze) a TNF-R (receptor tumor nekrotizujúceho faktora, tumor nekróza faktorový receptor). Tieto receptory, spojené podobnosťou extracelulárnych domén, sú súčasťou veľkej rodiny. Ligandy (molekuly špecificky interagujúce s receptormi TNF-R a CD95) sú TNF a CD95-L, čo sú transmembránové proteíny, ale môžu fungovať aj v rozpustnej, "voľnej" forme. Z onkologického hľadiska je obzvlášť zaujímavý TNF je cytokín produkovaný mnohými bunkami (makrofágy, monocyty, lymfoidné bunky, fibroblasty) v reakcii na zápal, infekciu a iné stresory. Vyvoláva širokú škálu niekedy opačných reakcií, vrátane horúčky, šoku, nekrózy nádoru, anorexie; ako aj imunoregulačné posuny, reprodukciu buniek, diferenciáciu a apoptózu. V tomto prípade sa apoptóza uskutočňuje za účasti špecifickej cysteínovej proteázy ICE, ktorá ničí mnoho intracelulárnych cieľových proteínov. Nadmerná expresia ICE v bunke indukuje apoptózu. size=5 face="Times New Roman">

W. Flemming sformuloval koncept mitózy ako cyklického procesu, ktorého vrcholom je rozdelenie každého chromozómu na dva dcérske chromozómy a ich distribúcia po dvoch novovzniknutých bunkách. V jednobunkových organizmoch sa životnosť bunky zhoduje so životnosťou organizmu. V organizme mnohobunkových živočíchov a rastlín sa rozlišujú dve skupiny buniek: neustále sa deliace (proliferujúce) a odpočívajúce (statické). Súbor proliferujúcich buniek tvorí proliferačný pool.

V skupinách proliferujúcich buniek sa interval medzi dokončením mitózy v rodičovskej bunke a dokončením mitózy v jej dcérskej bunke nazýva bunkový cyklus. Bunkový cyklus je riadený určitými génmi. Kompletný bunkový cyklus zahŕňa interfázu a vlastnú mitózu. Samotná mitóza zase zahŕňa karyokinézu (štiepenie jadra) a cytokinézu (delenie cytoplazmy).

Bunkový cyklus pozostáva z interfázy (obdobie mimo delenia) a samotného bunkového delenia.

Ak sa bunka bude niekedy deliť, potom bude medzifáza pozostávať z 3 periód. Ihneď po opustení mitózy bunka vstúpi do presyntetickej alebo G1 periódy, potom prechádza do syntetickej alebo S periódy a potom do postsyntetickej alebo G2 periódy. Obdobie G2 ukončuje interfázu a po nej bunka vstupuje do ďalšej mitózy.

Ak sa bunka neplánuje znova deliť, potom akosi opustí bunkový cyklus a vstúpi do spiaceho obdobia alebo periódy G0. Ak sa bunka v období G0 chce znova rozdeliť, potom opustí obdobie G0 a vstúpi do obdobia G1. Ak je teda bunka v G1-perióde, tak sa určite skôr či neskôr rozdelí, nehovoriac o S- a G2-periódach, kedy bunka v blízkej budúcnosti vstúpi do mitózy.

Obdobie G1 môže trvať 2–4 hodiny až niekoľko týždňov alebo dokonca mesiacov. Trvanie periódy S sa pohybuje od 6 do 8 hodín a obdobie G2 - od niekoľkých hodín do pol hodiny. Trvanie mitózy je od 40 do 90 minút. Navyše, najkratšia fáza mitózy sa môže považovať za anafázu. Trvá to len pár minút.

Obdobie G1 sa vyznačuje vysokou syntetickou aktivitou, počas ktorej musí bunka zväčšiť svoj objem na veľkosť materskej bunky, a tým aj počet organel a rôznych látok. Nie je jasné prečo, ale bunka pred vstupom do ďalšej mitózy musí mať veľkosť rovnajúcu sa materskej bunke. A kým sa tak nestane, bunka naďalej zostáva v období G1. Zjavne jedinou výnimkou je štiepenie, pri ktorom sa blastoméry delia bez toho, aby dosiahli veľkosť pôvodných buniek.

Na konci periódy G1 je zvykom rozlišovať špeciálny moment nazývaný R-bod (bod obmedzenia, R-bod), po ktorom bunka nevyhnutne vstupuje do periódy S na niekoľko hodín (zvyčajne 1–2). Časový úsek medzi R-bodom a začiatkom S-obdobia možno považovať za prípravné obdobie na prechod do S-obdobia.

Najdôležitejším procesom, ktorý prebieha v S-perióde, je zdvojnásobenie alebo zdvojenie DNA. Všetky ostatné reakcie prebiehajúce v tomto čase sú zamerané na zabezpečenie syntézy DNA – syntéza histónových proteínov, syntéza enzýmov, ktoré regulujú a zabezpečujú syntézu nukleotidov a tvorbu nových reťazcov DNA.

Podstata obdobia G2 nie je v súčasnosti celkom jasná, v tomto období však dochádza k tvorbe látok nevyhnutných pre samotný proces mitózy (proteíny mikrotubulov štiepneho vretienka, ATP).

Prechod bunky všetkými obdobiami bunkového cyklu je prísne kontrolovaný špeciálnymi regulačnými molekulami, ktoré poskytujú:

1) prechod bunky určitým obdobím bunkového cyklu
2) prechod z jedného obdobia do druhého.

Navyše prechod cez každé obdobie, ako aj prechod z jedného obdobia do druhého, je riadený rôznymi látkami. Jedným z účastníkov regulačného systému sú cyklín-dependentné proteínkinázy (cdc). Regulujú aktivitu génov zodpovedných za prechod bunky určitým obdobím bunkového cyklu. Existuje ich niekoľko druhov a všetky sú v bunke neustále prítomné, bez ohľadu na obdobie bunkového cyklu. Avšak cyklín-dependentné proteínkinázy vyžadujú špeciálne aktivátory, aby fungovali. Sú to cyklíny. Cyklíny nie sú vždy prítomné v bunkách, ale objavujú sa a miznú. Je to spôsobené ich syntézou a rýchlym zničením. Je známych veľa typov cyklínov. Syntéza každého cyklínu prebieha v presne definovanom období bunkového cyklu. V jednom období sa tvoria niektoré cyklíny a v inom zase iné. Systém „cyklíny – cyklín-dependentné proteínkinázy“ teda riadi pohyb bunky bunkovým cyklom.

Regulácia bunkového cyklu

Podľa ich proliferačného potenciálu sa rozlišujú tri skupiny buniek:

1. Statické alebo neproliferujúce bunky – za normálnych fyziologických podmienok sa nemnožia. Chromatín je kondenzovaný do takej miery, že je vylúčená transkripčná aktivita jadra (segmentované leukocyty, žírne bunky, erytrocyty). Medzi statické bunky patria aj myocyty a neuróny, v ktorých dochádza k dekondenzácii chromatínu, čo je spojené s vykonávaním ich špecifických funkcií v neprítomnosti proliferácie.

2. Rastúce alebo pomaly proliferujúce bunky s nízkou mitotickou aktivitou (lymfocyty, chondrocyty, hepatocyty).

3. Obnova bunkových populácií, v ktorých je vysoká úroveň proliferácie kompenzovaná bunkovou smrťou. V týchto populáciách väčšina buniek podlieha terminálnej (konečnej) diferenciácii a odumiera (hematopoetický systém). Kmeňové bunky si zachovávajú svoj proliferatívny potenciál počas celého života.

Osobitnou skupinou neustále sa množiacich buniek sú rakovinové bunky. Sú to večne mladé, zvečnené („nesmrteľné“) bunky.

Existuje endogénna (vnútorná) a exogénna (vonkajšia) regulácia proliferácie. Faktory, ktoré inhibujú proliferáciu, sa nazývajú inhibítory proliferácie. Faktory, ktoré zvyšujú pravdepodobnosť proliferácie, sa nazývajú proliferačné promótory alebo mitogény. Mitogény môžu byť určité peptidy.

Bunkový cyklus je obdobie života bunky od jedného delenia k druhému alebo od delenia po smrť. Bunkový cyklus pozostáva z interfázy (obdobie mimo delenia) a samotného bunkového delenia.

Na konci obdobia G1 je zvykom rozlišovať špeciálny moment nazývaný R-bod (bod obmedzenia, R-bod), po ktorom bunka nevyhnutne vstúpi do periódy S v priebehu niekoľkých hodín (zvyčajne 1–2). Obdobie medzi bodom R a začiatkom obdobia S možno považovať za prípravné na prechod na obdobie S.

Najdôležitejším procesom, ktorý prebieha v období S, je zdvojenie alebo zdvojenie DNA. Všetky ostatné reakcie prebiehajúce v tomto čase v bunke sú zamerané na zabezpečenie syntézy DNA. Takéto pomocné procesy zahŕňajú syntézu histónových proteínov, syntézu enzýmov, ktoré regulujú a zabezpečujú syntézu nukleotidov a tvorbu nových reťazcov DNA.

Prechod bunky cez všetky obdobia bunkového cyklu je prísne kontrolovaný. Pri pohybe buniek bunkovým cyklom sa v nich objavujú a zanikajú špeciálne regulačné molekuly, aktivujú sa a inhibujú, ktoré zabezpečujú: 1) prechod bunky určitým obdobím bunkového cyklu a 2 prechod z jedného obdobia do druhého. Navyše prechod cez každé obdobie, ako aj prechod z jedného obdobia do druhého, je riadený rôznymi látkami. Teraz sa pokúsime zistiť, čo tieto látky sú a čo robia.

Všeobecná situácia vyzerá takto. Bunka neustále obsahuje špeciálne enzýmové proteíny, ktoré fosforyláciou iných proteínov (serínovými, tyrozínovými alebo treonínovými zvyškami v polypeptidovom reťazci) regulujú aktivitu génov zodpovedných za prechod bunky určitým obdobím bunkového cyklu. Tieto enzýmové proteíny sa nazývajú cyklín-dependentné proteínkinázy (cdc). Existuje niekoľko druhov, ale všetky majú podobné vlastnosti. Hoci počet týchto cyklín-dependentných proteínkináz sa môže meniť v rôznych obdobiach bunkového cyklu, sú prítomné v bunke neustále, bez ohľadu na obdobie bunkového cyklu, to znamená, že sú prítomné v nadbytku. Inými slovami, ich syntéza alebo množstvo neobmedzuje ani nereguluje prechod buniek bunkovým cyklom. Ak je však v patológii narušená ich syntéza, znížený ich počet, prípadne existujú mutantné formy so zmenenými vlastnosťami, tak to, samozrejme, môže ovplyvniť priebeh bunkového cyklu.

Prečo takéto cyklín-dependentné proteínkinázy samotné nie sú schopné regulovať prechod buniek cez obdobia bunkového cyklu. Ukazuje sa, že sú v bunkách v neaktívnom stave a na to, aby sa aktivovali a začali pracovať, sú potrebné špeciálne aktivátory. Sú to cyklíny. Existuje tiež veľa rôznych typov, ale nie vždy sú prítomné v bunkách: objavujú sa a miznú. V rôznych fázach bunkového cyklu vznikajú rôzne cyklíny, ktoré väzbou na Cdk vytvárajú rôzne komplexy Cdk-cyklín. Tieto komplexy regulujú rôzne fázy bunkového cyklu, a preto sa nazývajú G1-, G1/S-, S- a M-Cdk (obrázok z mojich obrázkov cyklíny). Napríklad prechod bunky cez G1 periódu bunkového cyklu zabezpečuje komplex cyklín-dependentnej proteínkinázy-2 (cdk2) a cyklínu D1, cyklín-dependentnej proteínkinázy-5 (cdk5) a cyklínu D3. Prechod cez špeciálny reštrikčný bod (R-bod) periódy G1 riadi komplex cdc2 a cyklínu C. Prechod bunky z periódy G1 bunkového cyklu do periódy S riadi komplex cdk2 resp. cyklín E. Prechod bunky z obdobia S do obdobia G2 vyžaduje komplex cdk2 a cyklín A. Cyklín-dependentná proteínkináza-2 (cdc2) a cyklín B sa podieľajú na prechode bunky z obdobia G2 do mitóza (obdobie M). Cyklín H v spojení s cdk7 je potrebný na fosforyláciu a aktiváciu cdc2 v komplexe s cyklínom B.


Cyklíny sú novou triedou proteínov objavených Timom Huntom, ktoré hrajú kľúčovú úlohu pri riadení bunkového delenia. Názov "cyklíny" sa objavil v dôsledku skutočnosti, že koncentrácia proteínov tejto triedy sa pravidelne mení v súlade s fázami bunkového cyklu (napríklad spadá pred začiatkom bunkového delenia).

Prvý cyklín objavil Hunt začiatkom 80. rokov minulého storočia pri pokusoch s vajíčkami žaby a ježovky. Neskôr boli cyklíny nájdené aj u iných živých bytostí.

Ukázalo sa, že tieto proteíny sa v priebehu evolúcie len málo zmenili, rovnako ako mechanizmus riadenia bunkového cyklu, ktorý sa z jednoduchých kvasinkových buniek dostal k ľuďom v „konzervovanej“ forme.

Timothy Hunt (R. Timothy Hunt) spolu s anglickým kolegom Paulom M. Nursem a Američanom Lelandom H. Hartwellom dostali v roku 2001 Nobelovu cenu za fyziológiu a medicínu za objav genetických a molekulárnych mechanizmov regulácie bunkového cyklu – procesu ktorý je nevyhnutný pre rast, vývoj a samotnú existenciu živých organizmov

Kontrolné body bunkového cyklu

1. Bod výstupu z G1-fázy, nazývaný Štart - u cicavcov a reštrikčný bod u kvasiniek. Po prechode cez reštrikčný bod R na konci G1 sa nástup S stáva nevratným, t.j. spustia sa procesy vedúce k ďalšiemu deleniu buniek.
2. Bod S - kontrola presnosti replikácie.

3. Bod G2/M-prechod - overenie dokončenia replikácie.
4. Prechod z metafázy do anafázy mitózy.

Regulácia replikácie

Pred začiatkom replikácie Sc je komplex ORC (komplex rozpoznávania pôvodu) umiestnený na ori, počiatku replikácie. Cdc6 je prítomný počas celého bunkového cyklu, ale jeho koncentrácia sa zvyšuje na začiatku G1, kde sa viaže na komplex ORC, ktorý sa potom spája s proteínmi Mcm za vzniku pre-replikatívneho komplexu (pre-RC). Po zostavení pred RC je bunka pripravená na replikáciu.

Na spustenie replikácie sa S-Cdk viaže na proteínkinázu (a), ktorá fosforyluje pre-RC. Súčasne sa Cdc6 po začiatku replikácie disociuje z ORC a je fosforylovaný, potom je ubikvitinovaný pomocou SCF a degradovaný. Zmeny pred RC zabraňujú reštartovaniu replikácie. S-Cdk tiež fosforyluje niektoré proteínové komplexy Mcm, čo spúšťa ich export z jadra. Následná defosforylácia proteínov reštartuje proces tvorby pre-RC.

Cyklíny sú aktivátory Cdk. Cyklíny, ako aj Cdk, sa podieľajú na rôznych procesoch okrem riadenia bunkového cyklu. Cyklíny sú rozdelené do 4 tried v závislosti od času pôsobenia v bunkovom cykle: G1 / S, S, M a G1 cyklíny.
Cyklíny G1/S (Cln1 a Cln2 u S. cerevisiae, cyklín E u stavovcov) vrcholia v neskorej fáze G1 a spadajú do fázy S.

Komplex G1/S cyklín-Cdk spúšťa začiatok replikácie DNA vypnutím rôznych systémov, ktoré inhibujú Cdk fázy S vo fáze G1. Cyklíny G1/S tiež iniciujú duplikáciu centrozómov u stavovcov a tvorbu vretienkového tela u kvasiniek. Pokles hladín G1/S je sprevádzaný zvýšením koncentrácie S cyklínov (Clb5, Clb6 v Sc a cyklínu A u stavovcov), ktoré tvoria komplex S cyklín-Cdk, ktorý priamo stimuluje replikáciu DNA. Hladina S cyklínu zostáva vysoká počas fáz S, G2 a začiatku mitózy, kde pomáha pri iniciácii mitózy v niektorých bunkách.

M-cyklíny (Clb1,2,3 a 4 v Sc, cyklín B u stavovcov) sa objavujú ako posledné. Jeho koncentrácia sa zvyšuje, keď bunka prechádza do mitózy a dosahuje maximum v metafáze. Komplex M-cyklín-Cdk zahŕňa zostavu vretena a zarovnanie sesterských chromatidov. Jeho deštrukcia v anafáze vedie k výstupu z mitózy a cytokinézy. G1 cyklíny (Cln3 v Sc a cyklín D u stavovcov) pomáhajú koordinovať rast buniek so vstupom do nového bunkového cyklu. Sú neobvyklé, pretože ich koncentrácia sa nemení s fázou bunkového cyklu, ale mení sa v reakcii na externé signály regulácie rastu.

Programovaná bunková smrť

V roku 1972 Kerr a spol. publikoval článok, v ktorom autori prezentovali morfologické dôkazy o existencii nenekrot zvláštny druh bunková smrť, ktorú nazývali „apoptóza“. Informovali o tom autori štrukturálne zmeny bunky počas apoptózy prechádzajú dvoma štádiami:

1. - tvorba apoptotických teliesok,

2. - ich fagocytóza a deštrukcia inými bunkami.

Príčiny smrti, procesy morfologickej a biochemickej povahy vývoja bunkovej smrti môžu byť rôzne. Možno ich však jednoznačne rozdeliť do dvoch kategórií:

1. Nekróza (z gréckeho pekróza – nekróza) a

2. Apoptóza (z gréckych koreňov, čo znamená „odpadnutie“ alebo „rozpad“), ktorá sa často nazýva programovaná bunková smrť (PCD) alebo dokonca bunková samovražda (obr. 354).


Dve cesty bunkovej smrti

a – apoptóza (proliferovaná bunková smrť): / – špecifická kontrakcia bunky a kondenzácia chromatínu, 2 – fragmentácia jadra, 3 – fragmentácia bunkového tela na množstvo apoptotických teliesok; b - nekróza: / - opuch bunky, vakuolárne zložky, kondenzácia chromatínu (karyorexia), 2 - ďalšie zdurenie membránových organel, lýza jadrového chromatínu (karyolýza), 3 - prasknutie membránových zložiek bunky - lýza bunky

N. je najčastejšou nešpecifickou formou bunkovej smrti. Môže to byť spôsobené vážnym poškodením bunky v dôsledku priamej traumy, žiarenia, vystavenia toxickým látkam v dôsledku hypoxie, lýzy buniek sprostredkovanej komplementom atď.

Nekrotický proces prechádza niekoľkými fázami:

1) paranekróza - podobná nekrotickým, ale reverzibilným zmenám;

2) nekrobióza - ireverzibilné dystrofické zmeny, charakterizované prevahou katabolických reakcií nad anabolickými;

3) bunková smrť, ktorej čas nástupu je ťažké určiť;

4) autolýza - rozklad mŕtveho substrátu pôsobením hydrolytických enzýmov mŕtvych buniek a makrofágov. Z morfologického hľadiska je nekróza ekvivalentná autolýze.

Napriek obrovskému množstvu prác neexistuje dohodnutá a presná definícia pojmu „apoptóza“.

Aloptóza je zvyčajne charakterizovaná ako špeciálna forma bunkovej smrti, ktorá sa líši od nekrózy z hľadiska morfologických, biochemických, molekulárno-genetických a iných znakov.

A. je bunková smrť spôsobená vnútornými alebo vonkajšími signálmi, ktoré samy osebe nie sú toxické ani deštruktívne. A. je aktívny proces, ktorý vyžaduje energiu, génovú transkripciu a syntézu denovo proteínov.

Okrem žiarenia a glukokortikoidov sa zistilo značné množstvo činidiel, ktoré spôsobujú apoptózu týchto buniek:

Ca2+ ionofóry

adenozín

Cyklický AMP

tributylcín

Hypertermia

Štúdium kinetiky degradácie DNA v lymfoidných bunkách in vivo a in vitro ukázalo:

Prvé zreteľné známky rozkladu sa objavujú spravidla viac ako 1 hodinu po expozícii, častejšie do konca 2. hodiny.

Internukleozomálna fragmentácia pokračuje niekoľko hodín a končí hlavne 6, menej často 12 hodín po expozícii.

Ihneď po nástupe degradácie analýza odhalí veľké množstvo malých fragmentov DNA a pomer medzi veľkými a malými fragmentmi sa počas apoptózy významne nemení.

Použitie inhibítorov syntézy ATP, proteínovej a génovej transkripcie spomaľuje proces apoptózy. Takáto závislosť neexistuje v prípade N.

Ako je možné vidieť z porovnania definícií nekrózy a apoptózy, medzi týmito dvoma typmi bunkovej smrti sú podobnosti a významné rozdiely.

Charakteristický Nekróza

apoptóza

funkčne nezvratné ukončenie jej života;
morfologicky porušenie integrity membrán, zmeny v jadre (pyknóza, rhexis, lýza), cytoplazma (edém), deštrukcia buniek; strata mikroklkov a medzibunkových kontaktov, kondenzácia chromatínu a cytoplazmy, zmenšenie objemu buniek (zmršťovanie), tvorba vezikúl z plazmatickej membrány, fragmentácia buniek a tvorba apoptotických teliesok;
biochemicky porušenie výroby energie, koagulácia, hydrolytické štiepenie bielkovín, nukleových kyselín, lipidov; hydrolýza cytoplazmatických proteínov a rozpad internukleozomálnej DNA;
geneticky - strata genetickej informácie; a vyvrcholí jeho autolýzou alebo heterolýzou so zápalovou reakciou. štrukturálne a funkčné preskupenie genetického aparátu a vyvrcholenie jeho absorpciou makrofágmi a (alebo) inými bunkami bez zápalovej reakcie.

Bunková smrť je regulovaná medzibunkovými interakciami rôznymi spôsobmi. Mnohé bunky v mnohobunkovom organizme potrebujú signály, aby zostali nažive. V neprítomnosti takýchto signálov alebo trofických faktorov si bunky vyvinú program "samovraždy" alebo programovanej smrti. Napríklad bunky neurónovej kultúry odumierajú v neprítomnosti neuronálneho rastového faktora (NGF), bunky prostaty zomierajú v neprítomnosti testikulárnych androgénov, bunky prsníka odumierajú, keď hladina hormónu progesterónu klesá atď. Bunky môžu zároveň prijímať signály, ktoré spúšťajú procesy v cieľových bunkách, ktoré vedú k smrti apoptózou. Hydrokortizón teda spôsobuje smrť lymfocytov a glutamát spôsobuje smrť nervových buniek v tkanivovej kultúre, faktor nekrózy nádorov (TNF) spôsobuje smrť rôznych buniek. Tyroxín (hormón štítnej žľazy) spôsobuje apoptózu buniek chvosta pulca. Okrem toho existujú situácie, keď je apoptotická bunková smrť spôsobená vonkajšími faktormi, ako je žiarenie.

Pojem "apoptóza" bol zavedený pri štúdiu smrti niektorých pečeňových buniek s neúplnou ligáciou portálnej žily. V tomto prípade sa pozoruje zvláštny obraz bunkovej smrti, ktorý postihuje iba jednotlivé bunky v pečeňovom parenchýme.

Proces začína tým, že susedné bunky strácajú kontakty, zdá sa, že sa zmenšujú (pôvodný názov pre túto formu smrti je shrinkagenekróza – nekróza kompresiou buniek), v jadrách nastáva špecifická kondenzácia chromatínu pozdĺž ich periférie, potom jadro je fragmentovaný na samostatné časti, po ktorých sa samotná bunka fragmentuje na jednotlivé telieska, ohraničené plazmatickou membránou, - apoptotické telieska.

Apoptóza je proces, ktorý nevedie k lýze, nie k rozpusteniu bunky, ale k jej fragmentácii, rozpadu. Osud apoptotických teliesok je tiež nezvyčajný: sú fagocytované makrofágmi alebo dokonca normálnymi susednými bunkami. V tomto prípade sa zápalová reakcia nevyvinie.

Je dôležité poznamenať, že vo všetkých prípadoch apoptózy, či už počas embryonálneho vývoja, v dospelom organizme, v normálnom, resp. patologické procesy– morfológia procesu bunkovej smrti je veľmi podobná. To môže naznačovať zhodnosť procesov apoptózy v rôznych organizmoch a v rôznych orgánoch.

Štúdie na rôznych objektoch ukázali, že apoptóza je výsledkom implementácie geneticky naprogramovanej bunkovej smrti. Prvý dôkaz o prítomnosti genetického programu bunkovej smrti (PCD) bol získaný štúdiom vývoja háďatka Caenorhabditiselegans. Tento červ sa vyvíja len za tri dni a jeho malá veľkosť umožňuje sledovať osud všetkých jeho buniek, od raných štádií štiepenia až po sexuálne zrelý organizmus.

Ukázalo sa, že počas vývoja Caenorhabditiselegans vzniká len 1090 buniek, z toho časť nervových buniek v množstve 131 kusov spontánne odumiera apoptózou a 959 buniek zostáva v tele. Boli nájdené mutanty, u ktorých bol narušený proces eliminácie 131 buniek. Identifikovali sa dva gény ced-3 a ced-4, ktorých produkty spôsobujú apoptózu v 131 bunkách. Ak tieto gény chýbajú alebo sú zmenené v mutantných Caenorhabditiselegans, potom apoptóza nenastane a dospelý organizmus pozostáva z 1090 buniek. Našiel sa aj ďalší gén, ced-9, ktorý je supresorom apoptózy: keď je ced-9 zmutovaný, všetkých 1090 buniek zomrie. Analóg tohto génu bol nájdený u ľudí: gén bcl-2 je tiež supresorom apoptózy v rôznych bunkách. Ukázalo sa, že oba proteíny kódované týmito génmi, Ced-9 a Bc1-2, majú jednu transmembránovú doménu a sú lokalizované vo vonkajšej membráne mitochondrií, jadier a endoplazmatického retikula.

Ukázalo sa, že systém vývoja apoptózy je u háďatiek a stavovcov veľmi podobný, pozostáva z troch článkov: regulátora, adaptéra a efektora. V Caenorhabditiselegans je regulátorom Ced-9, ktorý blokuje adaptorový proteín Ced-4, ktorý zase neaktivuje efektorový proteín Ced-3, proteázu, ktorá pôsobí na cytoskeletálne a jadrové proteíny (tabuľka 16).


Tab. 16. Vývoj programovanej bunkovej smrti (apoptóza)

Znak ──┤ - inhibícia procesu, znak ─→ - stimulácia procesu

U stavovcov je systém PCD zložitejší. Tu je regulátorom proteín Bc1–2, ktorý inhibuje adaptorový proteín Apaf-1, ktorý stimuluje aktivačnú kaskádu špeciálnych proteináz, kaspáz.

Enzýmy - účastníci procesu apoptózy

teda

Po spustení v bunke takáto degradácia prebieha rýchlo "do konca";

Nie všetky bunky vstupujú do apoptózy naraz alebo v krátkom časovom období, ale postupne;

Zlomy DNA sa vyskytujú pozdĺž linkerovej (internukleozomálnej) DNA;

Degradácia sa uskutočňuje endo-, ale nie exonukleázami, a tieto endonukleázy sa aktivujú alebo získajú prístup k DNA nie ako výsledok priamej interakcie s činidlom indukujúcim apoptózu, ale nepriamo, pretože od okamihu, keď bunky ubehnú, uplynie pomerne dlhý čas. prísť do kontaktu s takýmto činidlom, aby došlo k degradácii, a preto fragmentácia DNA nie je prvou charakteristickou "apoptotickou" reakciou bunky na molekulárnej úrovni. Ak by totiž degradácia bola spustená priamou interakciou endonukleáz alebo chromatínu s činidlom, potom by napríklad v prípade pôsobenia ionizujúceho žiarenia nastala apoptóza rýchlo a súčasne takmer vo všetkých bunkách.

Na základe týchto záverov sa dešifrovanie molekulárneho mechanizmu vývoja apoptózy „zameralo“ na identifikáciu endonukleáz (endonukleáz), ktoré vykonávajú fragmentáciu DNA, a mechanizmov, ktoré aktivujú endonukleázy.

Endonukleázy

1. Degradácia sa uskutočňuje DNázou I. Proces je aktivovaný Ca2+ a Mg2+ a inhibovaný Zn2+.

Existujú však fakty, ktoré svedčia proti zapojeniu DNázy I do procesu fragmentácie DNA. Je teda známe, že tento enzým v jadre chýba, avšak tento argument nie je príliš závažný, pretože relatívne malá veľkosť jeho molekúl, 31 kDa, v prípade narušenia permeability jadrovej membrány spôsobuje účasť DNázy I na degradácii DNA je celkom reálna. Ďalšia vec je, že pri in vitro spracovaní chromatínu spôsobuje DNáza I zlomy nielen v spojovacej časti, ale aj v nukleozomálnej DNA.

2. Ďalšia endonukleáza považovaná za hlavný enzým degradujúci DNA je endonukleáza II [Barry 1993]. Táto nukleáza pri spracovaní jadier a chromatínu uskutočňuje internukleozomálnu fragmentáciu DNA. Napriek tomu, že jeho aktivita nezávisí od dvojmocných kovových iónov, otázka účasti endonukleázy II na degradácii DNA nie je doteraz vyriešená, keďže enzým sa nenachádza len v lyzozómoch, ale je uvoľňovaný aj z bunkových jadier.

3. endonukleáza s molekulovou hmotnosťou 18 kDa. Tento enzým bol izolovaný z jadier potkaních tymocytov umierajúcich apoptózou [Gaido, 1991]. V normálnych tymocytoch chýbal. Aktivita enzýmu sa prejavuje v neutrálnom prostredí a závisí od Ca2+ a Mg2+.

4. γ-nukleáza s molekulovou hmotnosťou 31 kDa, ktorá má „klasickú“ závislosť od iónov Ca, Mg a Zn. Aktivita tohto enzýmu bola zvýšená v jadrách tymocytov potkanov liečených glukokortikoidmi.

5. endonukleáza s molekulovou hmotnosťou 22,7 kDa enzým, ktorého aktivita sa prejavuje v jadrách potkaních tymocytov až po pôsobení glukokortikoidov a je potlačená rovnakými inhibítormi ako degradácia internukleozomálnej DNA.

Kaspázy sú cysteínové proteázy, ktoré štiepia proteíny na kyseline asparágovej. V bunke sa kaspázy syntetizujú vo forme latentných prekurzorov, prokaspáz. Existujú iniciačné a efektorové kaspázy. Iniciačné kaspázy aktivujú latentné formy efektorových kaspáz. Viac ako 60 rôznych proteínov slúži ako substráty pre pôsobenie aktivovaných kaspáz. Ide napríklad o kinázu fokálnych adhéznych štruktúr, ktorých inaktivácia vedie k oddeleniu apoptotických buniek od ich susedov; ide o lamely, ktoré sa rozkladajú pôsobením kaspáz; ide o cytoskeletálne proteíny (intermediárne filamenty, aktín, gelsolin), ktorých inaktivácia vedie k zmene tvaru bunky a objaveniu sa bublín na jej povrchu, z ktorých vznikajú apoptotické telieska; je to aktivovaná CAD proteáza, ktorá štiepi DNA na oligonukleotidové nukleozomálne fragmenty; ide o DNA reparačné enzýmy, ktorých potlačenie zabraňuje obnove štruktúry DNA a mnohé ďalšie.

Jedným príkladom rozvinutia apoptotickej reakcie by bola reakcia bunky na neprítomnosť signálu z požadovaného trofického faktora, ako je nervový rastový faktor (NGF) alebo androgén.

V cytoplazme buniek v prítomnosti trofických faktorov je ďalší účastník reakcie, fosforylovaný Bad proteín, v neaktívnej forme. V neprítomnosti trofického faktora je tento proteín defosforylovaný a viaže sa na proteín Bc1–2 na vonkajšej mitochondriálnej membráne, čím inhibuje jeho antiapoptotické vlastnosti. Potom sa aktivuje membránový proapoptotický proteín Bax, čím sa otvorí cesta pre ióny vstupujúce do mitochondrií. Súčasne sa cytochróm c uvoľňuje z mitochondrií cez póry vytvorené v membráne do cytoplazmy, ktorá sa viaže na adaptorový proteín Apaf-1, ktorý následne aktivuje pro-kaspázu 9. Aktivovaná kaspáza 9 spúšťa kaskádu ďalších pro-kaspázy, vrátane kaspázy 3, ktoré ako proteinázy začínajú tráviť zmiešané proteíny (lamíny, cytoskeletálne proteíny atď.), čo spôsobuje apoptotickú bunkovú smrť, jej rozpad na časti, na apoptotické telieska.

Apoptotické telieska, obklopené plazmatickou membránou zničenej bunky, priťahujú jednotlivé makrofágy, ktoré ich pohltia a natrávia svojimi lyzozómami. Makrofágy nereagujú na susedné normálne bunky, ale rozpoznávajú apoptotické. Je to spôsobené tým, že pri apoptóze je narušená asymetria plazmatickej membrány a na jej povrchu sa objavuje fosfatidylserín, negatívne nabitý fosfolipid, ktorý sa bežne nachádza v cytosolickej časti bilipidovej plazmatickej membrány. Selektívnou fagocytózou sa teda tkanivá akoby očistili od mŕtvych apoptotických buniek.

Ako už bolo spomenuté vyššie, apoptózu môže spôsobiť množstvo vonkajších faktorov, ako je žiarenie, pôsobenie určitých toxínov a inhibítory bunkového metabolizmu. Nevratné poškodenie DNA spôsobuje apoptózu. Je to spôsobené tým, že akumulujúci transkripčný faktor, proteín p53, nielenže aktivuje proteín p21, ktorý inhibuje cyklín-dependentnú kinázu a zastavuje bunkový cyklus v G1 alebo G2 fáze, ale aktivuje aj expresiu gén bax, ktorého produkt spúšťa apoptózu.

Dostupnosť kontrolné body v bunkovom cykle je potrebné určiť ukončenie každej jeho fázy. K zastaveniu bunkového cyklu dochádza pri poškodení DNA v období G1, pri neúplnej replikácii DNA v S fáze, pri poškodení DNA v období G2 a pri porušení spojenia deliaceho vretienka s chromozómami.

Jedným z kontrolných bodov v bunkovom cykle je samotná mitóza, ktorá neprejde do anafázy, ak vreteno nie je správne zostavené a chýba úplné spojenie medzi mikrotubulmi a kinetochórmi. V tomto prípade nedochádza k aktivácii komplexu APC, k degradácii kohezínov spájajúcich sesterské chromatidy a k degradácii mitotických cyklínov, ktoré sú nevyhnutné pre prechod do anafázy.

Poškodenie DNA zabraňuje bunkám vstúpiť do S-periódy alebo mitózy. Ak tieto poškodenia nie sú katastrofické a dajú sa obnoviť reparatívnou syntézou DNA, potom sa blok bunkového cyklu odstráni a cyklus sa skončí. Ak je poškodenie DNA významné, potom nejakým spôsobom dôjde k stabilizácii a akumulácii proteínu p53, ktorého koncentrácia je zvyčajne veľmi nízka kvôli jeho nestabilite. Proteín p53 je jedným z transkripčných faktorov, ktoré stimulujú syntézu proteínu p21, ktorý je inhibítorom komplexu CDK-cyklín. To spôsobí zastavenie bunkového cyklu v štádiu G1 alebo G2. Pri blokovaní v období G1 sa bunka s poškodenou DNA nedostane do S-fázy, pretože by to mohlo viesť k objaveniu sa mutantných buniek, medzi ktorými môžu byť nádorové bunky. Blokáda v období G2 tiež zabraňuje procesu mitózy buniek s poškodením DNA. Takéto bunky s blokovaným bunkovým cyklom následne umierajú apoptózou, programovanou bunkovou smrťou (obr. 353).

Pri mutáciách, ktoré vedú k strate génov proteínu p53, alebo pri ich zmenách nedochádza k blokáde bunkového cyklu, bunky vstupujú do mitózy, čo vedie k objaveniu sa mutantných buniek, z ktorých väčšina nie je životaschopná, zatiaľ čo iné spôsobujú vznik malígnych buniek. bunky.

Častou príčinou apoptózy je aj selektívne poškodenie mitochondrií, pri ktorom sa cytochróm c uvoľňuje do cytoplazmy. Mitochondrie a ďalšie bunkové zložky sú obzvlášť ovplyvnené tvorbou toxických reaktívnych foriem kyslíka (ATC), pôsobením ktorých sa vo vnútornej mitochondriálnej membráne vytvárajú nešpecifické kanály s vysokou iónovou permeabilitou, v dôsledku čoho mitochondriálna matrica napučí a praskne vonkajšia membrána. Zároveň sa do cytoplazmy dostávajú proteíny rozpustené v medzimembránovom priestore spolu s cytochrómom c. Medzi uvoľnenými proteínmi sú faktory aktivujúce apoptózu a pro-kaspáza 9.

Mnohé toxíny (ricín, difterický toxín atď.), ako aj antimetabolity, môžu spôsobiť bunkovú smrť apoptózou. Keď je syntéza proteínov narušená v endoplazmatickom retikule, pro-kaspáza 12, ktorá je tam lokalizovaná, sa podieľa na rozvoji apoptózy, ktorá aktivuje množstvo ďalších kaspáz, vrátane kaspázy 3.

Eliminácia – odstránenie jednotlivých buniek apoptózou, sa pozoruje aj u rastlín. Tu apoptóza zahŕňa, ako v živočíšnych bunkách, indukčnú fázu, efektorovú fázu a degradačnú fázu. Morfológia odumierania rastlinných buniek je podobná zmenám v živočíšnych bunkách: kondenzácia chromatínu a fragmentácia jadra, degradácia oligonukleotidov DNA, kontrakcia protoplastov, jeho fragmentácia do vezikúl, prasknutie plazmodesmat atď. Avšak protoplastové vezikuly sú zničené hydrolázami samotných vezikúl, pretože rastliny nemajú bunky analogické fagocytom. PCD sa teda vyskytuje počas rastu buniek koreňového uzáveru, počas tvorby perforácií v listoch a počas tvorby xylému a floému. Pád listov je spojený so selektívnou smrťou buniek v určitej oblasti rezu.

Biologická úloha apoptózy, čiže programovanej bunkovej smrti, je veľmi veľká: ide o odstraňovanie buniek, ktoré sa osvedčili alebo sú v danom štádiu vývoja nepotrebné, ako aj o odstraňovanie zmenených alebo patologických buniek, najmä mutantných resp. infikovaných vírusmi.

Takže na to, aby bunky v mnohobunkovom organizme existovali, sú potrebné signály na ich prežitie – trofické faktory, signálne molekuly. Tieto signály môžu byť prenášané na diaľku a zachytené príslušnými receptorovými molekulami na cieľových bunkách (hormonálna, endokrinná signalizácia), môže ísť o parakrinné spojenie pri prenose signálu do susednej bunky (napríklad prenos neurotransmiteru). Pri absencii takýchto trofických faktorov sa implementuje program apoptózy. Súčasne môže byť apoptóza indukovaná signálnymi molekulami, napríklad počas resorpcie chvosta pulcov pôsobením tyroxínu. Okrem toho pôsobenie množstva toxínov, ktoré ovplyvňujú jednotlivé články bunkového metabolizmu, môže spôsobiť aj bunkovú smrť prostredníctvom apoptózy.

Apoptóza v patogenéze chorôb

1. V imunitnom systéme

2. ONKOLOGICKÉ OCHORENIA

3. VÍRUSOVÁ INFEKCIA (vyvolávajúca apoptózu: c. ľudská imunodeficiencia, c. anémia kurčiat; inhibícia apoptózy: cytomegalovírus, c. Epstein-Barr, c. herpes)

4. A. a NEURÓNY MOZKOVEJ KÔRY

PRINCÍPY KOREKCIE APOPTÓZY BUNIEK

Objav regulovaného procesu bunkovej smrti – apoptózy – umožnil určitým spôsobom ovplyvňovať jej jednotlivé štádiá za účelom regulácie alebo nápravy.

Biochemické procesy vývoja apoptózy možno hypoteticky rozdeliť do niekoľkých etáp:

Pôsobenie faktora, ktorý spôsobuje apoptózu;

Prenos signálu z molekuly receptora do bunkového jadra;

Aktivácia génov špecifických pre apoptózu;

Syntéza proteínov špecifických pre apoptózu

Aktivácia endonukleáz

fragmentácia DNA (obr. 2.4).

V súčasnosti sa verí, že ak bunka odumrie apoptózou, potom sa predpokladá možnosť terapeutického zásahu, ak v dôsledku nekrózy, potom je takýto zásah nemožný. Na základe poznatkov o regulácii programovanej bunkovej smrti sa používa široká škála liekov na ovplyvnenie tohto procesu v rôznych typoch buniek.

Pri liečbe hormonálne závislých nádorov sa teda berie do úvahy informácia o receptorom sprostredkovanej regulácii bunkovej apoptózy.

Pri rakovine prostaty je predpísaná androgénna blokujúca terapia.

Rakovina prsníka často ustúpi pri použití antagonistov estrogénových receptorov.

Informácie o biochemických dráhach prenosu signálu regulácie apoptózy umožňujú efektívne využívať antioxidačnú terapiu, lieky regulujúce koncentráciu vápnika, aktivátory či inhibítory rôznych proteínkináz a pod. na korekciu apoptózy v rôznych typoch buniek.

Uvedomenie si úlohy apoptózy v bunkovej smrti zintenzívnilo hľadanie farmakologických účinkov, ktoré chránia bunky pred apoptózou.

Inhibítory špecifických proteáz sa aktívne študujú ako farmakologické činidlá. Ide spravidla o tri- alebo tetrapeptidy obsahujúce kyselinu asparágovú (Asp). Použitie takýchto proteáz na terapeutické účely je obmedzené ich nízkou schopnosťou prenikať do bunky. Avšak napriek tomu sa Z-VAD-FMK, širokospektrálny inhibítor proteáz podobných ICE, úspešne použil v experimentoch in vivo na zmenšenie oblasti infarktu v modeli mŕtvice.

V najbližších rokoch možno očakávať vznik nových liekov na liečbu a prevenciu rôznych ochorení, ktorých základom bude princíp regulácie procesov apoptózy.

Najúčinnejšie prístupy na korekciu apoptózy sú tie, ktoré sú spojené s reguláciou génov špecifických pre apoptózu. Tieto prístupy tvoria základ génovej terapie, jednej z perspektívnych oblastí liečby pacientov s chorobami spôsobenými poruchou funkcie jednotlivých génov.

Princípy génovej terapie zahŕňajú nasledujúce kroky:

Identifikácia sekvencie DNA, ktorá sa má liečiť;

Určenie typu buniek, v ktorých sa bude ošetrenie vykonávať;

Ochrana DNA pred hydrolýzou endonukleázami;

Transport DNA do bunky (jadra).

Prístupy génovej terapie umožňujú

Posilniť prácu jednotlivých génov (transformácia génov, ktoré inhibujú apoptózu, ako je gén bcl-2),

Oslabiť ich výraz. Na selektívnu inhibíciu génovej expresie sa v súčasnosti používa antisense oligonukleotidová (antisense) technika. Použitie antisense znižuje syntézu určitých proteínov, čo ovplyvňuje reguláciu procesu apoptózy.

Mechanizmus účinku antisense sa aktívne študuje. V niektorých prípadoch krátke (13–17 báz) antisense oligonukleotidy, ktoré majú sekvencie komplementárne k nukleotidovým sekvenciám mediátorovej RNA (mRNA) jednotlivých proteínov, môžu účinne blokovať genetickú informáciu v štádiu pred transkripciou (obr. 2.5). Tieto oligonukleotidy, ktoré sa viažu na DNA, tvoria tripletovú špirálovitú štruktúru. Takáto väzba môže byť ireverzibilná alebo spôsobiť selektívne štiepenie tripletového komplexu, čo v konečnom dôsledku vedie k inhibícii génovej expresie a bunkovej smrti. V iných prípadoch dochádza ku komplementárnej väzbe antisense na mRNA, čo spôsobuje narušenie translácie a zníženie koncentrácie zodpovedajúceho proteínu.


tripletový komplex

Ryža. Regulácia génovej expresie antisense oligonukleotidmi.

Teraz sa presvedčivo ukázalo, že antisense technológia má veľký význam pre reguláciu jednotlivých génov v bunkovej kultúre. Úspešné potlačenie génu bcl-2 v experimentoch na bunkových kultúrach vzbudzuje nádej na budúce využitie antisense na liečbu pacientov s rakovinou. Mnohé in vitro experimenty ukázali, že antisense spôsobujú inhibíciu bunkovej proliferácie a diferenciácie. Tento výsledok potvrdzuje vyhliadky na terapeutické využitie tejto technológie.