Bakteriologisten laboratorioiden diagnostisessa työssä joutuu usein turvautumaan ns. laboratorio- tai koe-eläinten infektoimiseen. Useimmiten jokapäiväisessä käytännössä tähän tarkoitukseen käytetään pieniä, halvimpia eläimiä: valkoisia hiiriä ja rottia, marsuja, kaneja sekä kyyhkysiä ja kanoja. Harvemmin käytetyt koirat ja kissat, vielä harvemmin - erilaisia tuotantoeläimiä. Biologisten tutkimusmenetelmien tarkoituksena on määrittää koemateriaalin patogeenisyys tai virulenssiaste, eristää materiaalista puhtaita mikrobiviljelmiä, erottaa patogeeniset mikro-organismit seoksesta saprofyyttisten lajien kanssa jne. Laboratorioeläimiä käytetään laajalti myös serologisessa käytännössä. : marsut - komplementin saamiseksi , kanit (lampaat, vasikat) - erilaisten agglutinoivien seerumien, hemolysiinin, punasolujen jne. valmistuksessa. Erityisten ravintoalustojen valmistukseen saadaan verta, seerumia, erilaisia ​​elimiä, kudoksia jne. Lisäksi koe-eläimiä käytetään laajasti biologisten ja kemoterapeuttisten lääkkeiden ominaisuuksien määrittämisessä sekä tieteellisessä ja kokeellisessa työssä. Laboratorio-eläimillä diagnosoidaan myös tiettyjä tartuntatauteja, simuloidaan kokeellisia akuutteja ja kroonisia infektioprosesseja, selvitetään tutkittavien mikrobikantojen virulenssia ja toksisuus, määritetään valmistettujen rokotteiden aktiivisuus ja tutkitaan niiden vaarattomuutta.

Bakteriologiset laboratoriot päivittäiseen työhön kasvattavat yleensä koe-eläimiä tätä tarkoitusta varten perustetuissa taimitarhoissa. Tämä mahdollistaa aina riittävän määrän todistettua ja moitteetonta laatua olevaa koemateriaalia. Jos eläimiä ei kasvateta, vaan niitä pidetään vain laboratoriossa, niiden tilaa kutsutaan vivaariumiksi. Uusia eläimiä ostetaan taimitarhoilta. Säilytys- ja ruokintaolosuhteet näissä yksiköissä ovat lähes samat, joten alla olevassa materiaalissa laboratorion osoitettujen rakenteiden välillä ei ole eroa.

Lyhyt tietoa koe-eläinten hoidosta, kasvatuksesta, ruokinnasta ja sairauksista

Taimitarhojen eläinten sisällön tulee mahdollisuuksien mukaan vastata niiden luonnossa esiintymisen olosuhteita. Tämä säännös koskee erityisesti luonnonvaraisia, luonnossa syntyneitä eläimiä ja lintuja (villikyyhkysiä, varpusia, kotieläiminä pidettyjä harmaita hiiriä ja rottia). Epäsuotuisissa pito- ja ruokintaolosuhteissa nämä eläimet kuolevat nopeasti vankeudessa (erityisesti varpuset ja harmaat hiiret). Taimitarhan onnistuneen toiminnan edellytys on kaikkien eläinlääkintä-, terveys-, kotieläinjalostus- ja eläinhygieniasääntöjen tiukka noudattaminen. Jälkimmäiset mahdollistavat eläinten pitämisen tilavissa, valoisissa, kuivissa ja puhtaissa häkeissä, hyvin ilmastoiduissa tiloissa, joissa on normaali lämpötila, järkevää ja täydellistä ruokintaa sekä ennaltaehkäiseviä toimenpiteitä eri sairauksien ehkäisemiseksi. Taimitarhan kannalta erittäin tärkeää on hyvä tuottajien kokoonpano (urokset ja naaraat).

Taimitarhassa (vivariumissa) tulee olla useita osastoja erityyppisten eläinten (kanit, marsut, hiiret jne.) pitämiseen. Vivaariumin rakenne sisältää:

äskettäin saapuneiden eläinten karanteeni- ja sopeutumisosasto;

kokeellinen biologinen klinikka eläinten pitämiseksi kokeessa;

tartuntataudeista epäiltyjen eläinten ja ilmeisen sairaiden eläinten, joiden tuhoaminen ei ole toivottavaa koeolosuhteissa, eristimet;

koehuone (tai käsittelyhuone), jossa suoritetaan punnitus, lämpömittaus, infektio, eläinten rokottaminen, verinäytteet ja joitain muita toimenpiteitä.

Koehuoneen varustelu määräytyy kussakin tapauksessa tehtävien ja olosuhteiden mukaan tieteellinen tutkimus.

Karanteeniosasto, koeosasto ja eristyshuone tartunnan saaneille eläimille sijaitsevat tiukasti eristettyissä tiloissa toisistaan ​​ja kaikista muista vivaariumin huoneista.

Yllä lueteltujen päärakenneyksiköiden lisäksi vivaariumin tulee sisältää:

a) rehukeittiö, joka koostuu kahdesta vierekkäisestä huoneesta rehun käsittelyä ja valmistusta varten ja joista jokaisesta huoneesta on erillinen pääsy käytävälle, ruokakomero, jossa on erityisesti varustetut arkut (metalliset tai verhoiltu sisältä tinalla) ja jääkaapit rehujen varastointia varten,

b) 2 huoneen desinfiointi- ja pesuosasto, joita yhdistää siirtymäautoklaavi tai kuivalämpökammio.

Desinfiointi- ja pesuosaston työ määräytyy käsittelyyn tulevan materiaalin tilan mukaan. Tartunnan saaneet materiaalit, kuten häkit, vuodevaatteet, syöttölaitteet, desinfioidaan ensin ja sen jälkeen puhdistetaan ja pestään mekaanisesti. Materiaali, joka ei aiheuta tartuntariskiä, ​​puhdistetaan ensin mekaanisesti ja sitten (tarvittaessa) steriloidaan.

Asianmukaisesti järjestetyn vivaariumin pesuhuoneessa on roskakouru jäteveden poistoon ja trukki materiaalin ja laitteiden toimittamiseen vivaariumiin.

Desinfiointi- ja pesuosaston vieressä on puhtaan (vara)varaston varasto, jossa häkit, juomat, syöttölaitteet jne., kodinhoitotilat ja saniteettitila (suihkuhuone ja wc) henkilökunnalle.

Voimassa olevien saniteettisääntöjen mukaisesti vivaario sijaitsee erillisessä rakennuksessa tai laboratoriorakennuksen ylimmässä kerroksessa. Kun vivarium sijoitetaan laboratoriorakennukseen, se on eristettävä täysin kaikista muista huoneista.

Laboratorioeläinten pitotilan tulee olla lämmin, valoisa ja kuiva, ja siinä on keskuslämmitys, luonnon- ja keinovalaistus, pakotettu tulo- ja poistoilmanvaihto, kuuma ja kylmä vesi.

Vivaariumin lattiat on valmistettu vedenpitävästä materiaalista, ilman jalkalistaa, kalteva viemäriin liitettyjen aukkojen tai kourujen suuntaan. Seinät on päällystetty lasitetuilla laatoilla, katot ja ovet on maalattu öljymaalilla.

Koska virukset voivat lisääntyä vain elävissä soluissa, virologian varhaisemmissa kehitysvaiheissa virusten viljelyä erityisesti tutkimusta varten kasvatettujen koe-eläinten kehossa käytettiin laajalti.

Käyttö: 1) viruksen havaitsemiseen hiukkasista 2) viruksen primaarinen eristäminen PM:stä 3) virusmassan kerääntyminen 4) viruksen pitäminen laboratoriossa aktiivisessa tilassa. 5) virustitraus 6) testikohteena pH:ssa 6) hyperimmuuniseerumien saaminen. Käytetyt eläimet: valkoiset hiiret (raivotauti, suu- ja sorkkatauti), valkoiset rotat (sikainfluenssa, s. Aujeszky), marsut (raivotauti, suu- ja sorkkatauti, koiran penikkatauti). Kanit (raivotauti, kanin myksoomit).

Laboratorioeläimiä koskevat vaatimukset - eläimen on oltava altis tälle virukselle; sen iällä on suuri merkitys monien virusten viljelylle. Useimmat virukset lisääntyvät paremmin nuorten ja jopa vastasyntyneiden eläinten kehossa; Normaali herkkyys saavutetaan valitsemalla tietyn ikäiset ja samanpainoiset eläimet. Mitä herkkyyteen, niin sanotut lineaariset eläimet, jotka saatiin tuloksena sukusiitos useiden sukupolvien aikana; koe-eläinten on oltava terveitä. Virologisen laboratorion vivaariumiin tulevat eläimet on tuotava kassakaapista tarttuvat taudit taloutta. Heitä pidetään karanteenissa ja he ovat kliinisessä seurannassa. Sairauden läsnä ollessa ne tuhoutuvat.

Eläimet sijoitetaan niin, että toisaalta varmistetaan kaikkien elimistön järjestelmien toiminta fysiologisen normin puitteissa, toisaalta suljetaan pois vastavuoroinen uudelleentartunta ja tartunnan leviäminen vivaariumin ulkopuolelle. Eläimille erilaisia ​​tyyppejä Käytä eri tavoilla yksittäinen etiketti. Suurille eläimille ja kanoille käytetään metallilappuja, joissa on leimattu numero. Käytettäessä pientä eläinryhmää kokeessa ja lyhyen aikaa, voit leikata hiukset merkkejä selässä, lantiossa. Valkoisten hiirten, valkoisten rottien leima voidaan suorittaa amputoimalla yksittäiset sormet etu- tai takaraajoissa. Käytä usein menetelmää värillisten pisteiden levittämiseksi pigmentoimattomalle villalle. Koe-eläinten infektio.

• 1. ihonalainen - takaisin.
• 2. Intradermaalinen - kantapää
• 3. Lihaksensisäinen - reisi
• 4. Laskimonsisäisesti - hännässä (hankauksen jälkeen kuuma vesi ja selvisi hengissä)
• 5. Intranosaalisesti - tippa nenään (anna aiemmin heikko eetterianestesia aivastelun estämiseksi)
• 6. Interocerebraalinen - kallo porataan varovasti neulalla, älä paina, pisara poistuu itsestään.

Kaikki pinnat on esivoideltu joditulla alkoholilla.

Laboratoriovalmistelut. eläimet (esimerkiksi valkoinen hiiri)

• - Iho voidellaan desinfiointiaineella.
• - Viilto tehdään linea albaa pitkin.
• - Rintalastan avaaminen - keuhkot otetaan ja laitetaan koeputkeen nro 1
• - Ruumiinavaus vatsaontelo- maksa, perna, munuaiset otetaan ja asetetaan koeputkeen nro 2.
• - Kallo on auki. Aivot otetaan, tehdään 4 kerroksen leikkeet, palat asetetaan suodatinpaperille ja tulosteet tehdään lasille.

KOEELÄimet- erityyppiset eläimet, jotka on erityisesti kasvatettu laboratorioissa tai taimitarhoissa kokeellista tai teollista käyttöä varten. L. käyttö sairauksien diagnosointiin, erilaisten fysiolien ja patolien mallintamiseen, tilojen mallintamiseen, laskennan opiskeluun - ammattikäyttöön, lääkkeet, kemialliset ja fysikaaliset tekijät, biologisten valmisteiden valmistus - diagnostiset seerumit, rokotteet, kudosviljelmät jne.

Laboratorioeläimiin kuuluvat eri systemaattisiin ryhmiin kuuluvat eläimet: alkueläimet, madot, niveljalkaiset, piikkinahkaiset, sammakkoeläimet, linnut ja nisäkkäät. Kuitenkin useimmiten L. Zh. jaettu selkärangattomiin ja selkärankaisiin.

Selkärankaiset laboratorioeläimet

Selkärankaisten eläinten käyttö kognitiivisiin tarkoituksiin alkoi ilmeisesti karjankasvatuksen kehittymisen aikana. Myöhemmin eläimet alkoivat tutkia elävien organismien eri elinten rakennetta ja toimintoja. Erityisesti tunnetaan antiikin kreikkalaisen luonnontieteilijän Diogeneksen (5. vuosisata eKr.) havainnot, joka avaamalla eläinten ruumiita perusti eteisten erilaisia ​​toimintoja. Myöhemmin anatomiaa ja fysiologiaa tutkivat eläimillä Aristoteles, K. Galen, W. Garvey ym. Aluksi kokeita tehtiin kotieläimillä. 1400-luvulla valkoiset hiiret, rotat ja marsut tulivat tunnetuksi. Käsite "laboratorio-eläimistä" kehitettiin kuitenkin 1800-luvun loppuun mennessä.

Lääketieteessä - biolissa - tutkimuksissa käytetään yhteensä jopa 250 eläinlajia. Joitakin lajeja kasvatetaan jatkuvasti laboratorioissa ja taimitarhoissa tieteellistä tutkimusta varten (valkoiset hiiret, valkoiset rotat, marsut, kanit, hamsterit, kissat, koirat, apinat, minisiat jne.). Muut - pyydetään ajoittain koetta varten (myyrät, gerbiilit, maa-oravat, fretit, murmelit, armadillot, lemmingit, sammakkoeläimet, kalat jne.). Siellä on ryhmälaboratorio. linnut (kanat, kyyhkyset, kanarialaiset, viiriäiset jne.). Osa hunajaa. kokeet suoritetaan sivulla - x. eläimet (lampaat, siat, vasikat jne.). From kokonaismäärä L. hiiret muodostavat n. 70%, rotat - 15%, marsut- 9%, linnut - 3%, kanit - 2% ja muut - 1%.

Tutkijoiden kiinnostus jyrsijöitä kohtaan johtuu pääasiassa siitä, että monilla heistä on pieni ruumiinkoko, korkea hedelmällisyys ja lyhyt aika elämä; jyrsijöiden muutamassa elinkuukaudessa on mahdollista jäljittää elimistössä ihmisessä vuosia jatkuneet prosessit. Valkoisten hiirten keskimääräinen elinajanodote on 1,5-2 vuotta, rottien 2-2,5 vuotta, hamstereiden 2-5 vuotta, marsujen 6-8 vuotta, kanien 4-9 vuotta.

Kasvattaessa L.. valvoa geneettisiä, ekologisia, morfologiset ominaisuudet sekä terveydellisistä syistä.

Geneettisesti L. jaettu epälineaariseen (heterotsygoottiseen) ja lineaariseen (homotsygoottiseen). Epälineaarisia eläimiä kasvatetaan satunnaisten risteytysten perusteella, ja tästä syystä ne ovat korkea tutkinto heterotsygoottisuus. Lisääntyvä sukusiitos (katso) tässä ryhmässä L. Zh. enintään 1 % sukupolvea kohden.

Tieteellisissä laitoksissa, joissa L.-tutkimusta tehdään, tulisi olla tieteellisiä ja apujakoja: vivarium (katso) ja kokeellinen ja biologinen klinikka. Vivaariumissa pidetään ja osittain kasvatetaan tietyntyyppiset eläimiä ja ne siirretään myöhemmin kokeelliseen tutkimukseen. Kokeellisella biologisella klinikalla on vain eläimiä, joita tutkitaan. Vivariumit ja kokeelliset biologiset klinikat sijaitsevat erillisessä rakennuksessa (rakennuskompleksi). Kokeissa käytettäville sammakkoeläimille ja kaloille on varattu asianmukaiset huoneet.

Vastatakseen jatkuvasti kasvavaan kysyntään L. Eri tyypit, linjat ja kategoriat, syntyi itsenäinen talouden haara - laboratorioeläintalous, jolla oli asianmukaiset tieteelliset ja teolliset perustat. Asianmukainen työntekijöiden koulutus on järjestetty. == Selkärangattomat laboratorioeläimet == Laboratorioissa käytetään selkärankaisten lisäksi monia selkärangattomia: alkueläimiä, helminttejä, niveljalkaisia ​​(hyönteisiä, punkkeja) jne. Niiden käyttötarkoitukset ja menetelmät L. g. hyvin vaihteleva. Välttämättömiä esineitä erilaisiin laboratorioihin. tutkimus on pitkään ollut alkueläimet (tyyppi Alkueläimet). Niiden lisääntymisnopeus, pieni koko, suhteellinen yksinkertaisuus ja helppohoitoisuus laboratoriossa tekevät yksinkertaisimmista kokeellisista malleista (katso Alkueläimet).

On kehitetty menetelmiä joidenkin alkueläintyyppien (trypanosomit, leishmania, toksoplasma jne.) jäädyttämiseen ja pitkäaikaiseen varastointiin nestetypessä. Tämän menetelmän avulla voit luoda kryopankkeja alkueläinkannoista, mikä on kätevää käytettäessä niitä L..

Monien alkueläinten kyky lisääntyä aseksuaalisesti on edellytys puhtaiden alkueläinlinjojen saamiseksi - klooneiksi, jotka toimivat välttämättömänä kohteena geneettisissä, immunologisissa ja muissa tutkimuksissa.

Alkueläinkokeita tehtäessä tulee ottaa huomioon paitsi niiden laji, kanta tai isolaatti, myös usein myös tiettyyn geneettiseen linjaan kuuluminen. Hyvin tärkeä laboratoriossa. sisällöllä on tietoa elinkaari tämän syklin yksinkertaisimpien ja yksittäisten vaiheiden kehittäminen (katso Elinkaari).

Alkueläinten kanssa työskennellessä bioottisilla ja abioottisilla tekijöillä on merkittävä vaikutus ympäristöön.

Suuria amebeja (Amoeba proteus, Chaos, Pelomyxa jne.) käytetään sytogeneettisissä ja muissa tutkimuksissa, erityisesti perinnöllisen vaihtelun, mutaatioiden esiintymisen ja esiintymistiheyden analysoinnissa. Vuonna mikrurgicheskie kokeet sai ydin-sytoplasma hybridit - heterokaryons, jotka tutkivat ilmiö transplantaatio yhteensopimattomuus, epigeneettinen vaihtelu, jne. Näillä esineillä suorittaa erilaisia ​​havaintoja vaikutuksista ionisoivan ja ultraviolettisäteilyn, chem. mutageneesi.

Siliaatit ovat myös klassisia sytogeneettisten tutkimusten kohteita, mukaan lukien geneettinen analyysi joidenkin vaihtelu- ja perinnöllisyysongelmien tutkimuksessa. Siliaatit toimivat kätevinä esineinä toksikologisissa tutkimuksissa, samoin kuin biolin, ultraviolettisäteilyn vaikutuksen, läpäisevän säteilyn ja muiden tekijöiden tutkimuksessa. Tämä ottaa huomioon muutokset liikkeen nopeudessa ja luonteessa, supistumisvakuolien pulsaatiot, ydinlaitteisto, häiriöt jakautumisnopeudessa jne. viime vuodet tietyntyyppisiä ripsiä käytetään laajalti kokeissa molekyylibiologia, erityisesti vuonna geenitekniikka. Siliaattien ylläpitoon in vitro on kehitetty koostumuksen suhteen erilaisia ​​väliaineita - yksinkertaisimmista yrttien ja lehtien infuusioiden muodossa monimutkaisiin synteettisiin aineisiin, joilla on ennalta määrätty kemiallinen koostumus. sävellys.

Välttämätön edellytys niveljalkaisten käytölle kokeessa on tarkistaa alkuperäisen luonnollisen populaation (laboratorioviljelmän esi-isä) linjan puhtaus - taudinaiheuttajien luonnollisen tartunnan puuttuminen, koska verta imevät niveljalkaiset ovat ratkaisevan tärkeitä monien patogeenien kantajina ja säilyttäjinä vektorivälitteiset infektiot(rikettsioosi, arbovirusinfektiot, leishmaniaasi, filariaasi, malaria jne.). Jotta voidaan määrittää minkä tahansa niveljalkaisten lajien osallistuminen tartuntatautien leviämiseen tai sen todellinen rooli epidemiologiassa ja epitsootologiassa, on tarpeen suorittaa kokeellisia tutkimuksia verta imevien niveljalkaisten ja patogeenien kanssa.

Argas- (Argasidae) ja Ixodidae (Ixodidae) -punkkeja käytetään spiroketoosin, riketsioosin, arbovirusinfektioiden jne. patogeenien pitkäaikaiseen säilyttämiseen.

Punkkeja, hyttysiä, hyttysiä, kärpäsiä ja muita niveljalkaisia ​​käytetään kokeissa hyönteismyrkkyjen, punkkimyrkkyjen ja karkotteiden tehokkuuden testaamiseen sekä biol-menetelmien kehittämiseen ihmisten ja eläinten patogeenien ja maatalouden tuholaisten torjuntaan.

Kokeelliseen tutkimukseen ihmisen luonnollisten fokusaalisten sairauksien (enkefaliitti, verenvuotokuume, riketsioosi jne.) patogeenien kantajina sekä punkkimyrkkyjen tehokkuuden testaamiseen ja kehittämiseen. erityisiä menetelmiä biol, taistele ixodid-punkkien kanssa (suku Ixodes, Haemaphysalis, Hyalomma, Rhipicephalus, Dermacentor). Ixodid-punkkeja on helppo viljellä laboratoriossa. ehdot. Laboratorion luominen. ixodid-punkkien viljelmät kerätään S.-x. eläimet (jo verestä humalassa) tai luonnollisten elinympäristöjen kasvillisuudesta (nälkäinen). Kyllästyneet punkit asetetaan erityisesti asennettuihin kostutettuihin koeputkiin munanpoistoa varten. Nälkäisiä punkkeja ruokitaan L. kangashattujen alle, jotka liimataan isäntäeläimen (siat, kanit, hiiret, hamsterit, sekä lampaat ja suuret) selkään karjaa). klo asianmukainen hoito saman linjan punkkeja viljellään laboratoriossa vuosia.

Kätevä laboratorio. malli on argas-punkit (suku Ornithodoros, Alveonasus, Argas). Niitä käytetään kokeelliseen tutkimukseen punkkien ja taudinaiheuttajien (spirokeetit, virukset, rickettsia) välisestä suhteesta sekä patogeenien pitkäaikaiseen (pitkäaikaiseen) säilyttämiseen aktiivisessa tilassa. Viljelyn aikana argas-punkkeja ruokitaan joko L.:iin tai eläinten verellä hiiren tai kanan nahasta valmistetun kalvon läpi. Argasid-punkkien ruokkimiseen kanan alkiolla on kehitetty menetelmä istuttamalla ne uudelleen munan ilmakammioon. Punkkeja Alveonasus lahorensis, Ornithodoros papillipes ja muita on viljelty laboratorioissa vuosikymmeniä.

Kuten L. gamasid-punkkeja (Gamasoidea) käytetään myös. Niistä punkit Ornithonyssus bacoti (rottapunkki), Dermanyssus gallinae (kanapuutilainen), Allodermanyssus sanguineus (hiiripunkki) ovat erityisen käteviä laboratoriossa säilytykseen. Gamasovy-punkkien käyttö mallinnukseen inf. prosessi riketsioosissa, puutiaisaivotulehdus, tularemia, verenvuotokuumeet. Laboratoriossa järjestetään ns. kasvi on keinotekoinen pesä, johon sijoitetaan punkit ja L.. (hiiret, kanat jne.) ruokintaan. Tarvittaessa punkkeja otetaan kasvista ja pidetään erityisissä kostutetuissa kammioissa kokeen ja havainnoinnin aikana.

Kokeellista työtä varten eri laboratorioissa kasvatetaan eri sukujen (Aedes, Anopheles, Culex) verta imeviä hyttysiä (Culicidae). Joissakin tapauksissa on kätevää käyttää Culex pipiens molestus -suvun hyttysiä, joita on helppo kasvattaa laboratoriossa; Hedelmöityneet naaraat eivät pääse diapausiin suotuisissa olosuhteissa ja voivat munia ilman aiempaa verenruokintaa. Munista nousevat toukat kehittyvät vedessä, jossa on runsaasti orgaanista ainesta.

Aedes-suvun hyttysistä on helpointa kasvattaa Aedes aegypti -lajin hyttysiä, jotka kantavat keltakuumeviruksia ja muita ihmissairauksia sekä lintujen Plasmodiumia jne. Niitä voidaan pitää suhteellisen pienissä häkeissä; naarashyttyset syövät kanien tai muiden eläinten verta. Aedes-naaraat munivat munat voivat pitkä aika varastoida kuivana; toukkien poistamiseksi ne asetetaan astiaan, jossa on vettä. Toukkien ravinto on riisijauhetta, vesikirppujauhetta, munankeltuaista jne. Toukkien sisältävässä astiassa olevan veden tulee olla puhdasta eikä se saa olla ruoan saastuttamaa. Suonet, joihin puput ovat muodostuneet, sijoitetaan sideharsohäkkeihin hyttysten lisääntymistä varten.

Moniin erilaisiin kokeellisiin tutkimuksiin, erityisesti ruton, riketsioosin ja muiden patogeenien leviämisen tutkimiseen bakteerisairaudet ihmiset ja eläimet, tutkiessaan erilaisten hyönteismyrkkyjen, karkotteiden jne. vaikutuksia, käyttävät laboratoriossa kasvatettuja kirppuviljelmiä (Aphaniptera). Laboratoriossa viljelyyn sopivimpia ovat rotan kirput - Xenopsylla cheopis, Ceratophyllus fasciatus jne. Laboratoriossa niitä viljellään erityisissä kasveissa - lasipurkkeissa, joihin istutetaan isäntäeläimet; kuten L. täitä käytetään myös - patogeenisten spirokeettien ja riketsioiden kantajia.

Kehittyäkseen tieteellisiä perusteita jalostus ja järkevä valinta eläinlajien erityistutkimukseen Neuvostoliitossa, Englannissa, USA:ssa, Ranskassa, Saksassa, Japanissa ja muissa maissa järjestetään L.:n vertailevan biologian tieteellisiä keskuksia. Neuvostoliitossa tällainen keskus on Neuvostoliiton lääketieteen akatemian kokeellisten biologisten mallien tutkimuslaboratorio. Tämän alan työn koordinoinnista vastaa Kansainvälinen laboratorioeläinkomitea (PC LA), yli 40 maata, mukaan lukien Neuvostoliitto, tekee yhteistyötä Krimin kanssa. Tieteellisiä konferensseja järjestetään vuosittain erilaisia ​​asioita biologia L. ja biol, mallinnus. Näistä aiheista julkaistaan ​​yli 30 aikakauslehteä ulkomailla. Kansainvälisiä ja alueellisia keskuksia on järjestetty: International Reference Center for Animals with Spontaneous Development of Tumors (Alankomaat, Amsterdam, Cancer Institute), FAO/WHO International Reference Center for Animal Mycoplasmas (Tanska, Aarhus, Medical f- t un-ta) . Regional Reference Center for Monkey Viruses (USA, Texas, Department of Microbiology and Inf. Diseases). ICLA:lle on saatavilla vertailukeskuksia: histoyhteensopivuus hiirillä (PNR), rotilla (Saksa ja USA), marsuilla (USA), koirilla (Saksa), jyrsijäviruksilla (Tsekkoslovakia, Englanti, Saksa, Japani), karvattomilla hiirillä (Tanska) , lintujen malarian taudinaiheuttajista (Kanada) jne.

L.:stä saatujen tutkimusten tulosten julkaisuissa WHO:n suosituksesta on ilmoitettava niiden tyyppi, linja, ikä, sukupuoli, hankintalähde, pidätys- ja ruokintaolosuhteet.

Lisämateriaaleista

armadillos(Täydennys samannimiseen artikkeliin, julkaistu 12. osassa) - Dasypodidae Bonaparte -heimon nisäkkäät, 1838 hampattomien lahkosta - Edentata.

Armadillo-perheessä on 9 sukua (21 lajia). Armadillos (syn. armadillos) ovat vanhimpia eläviä nisäkkäitä, yleisiä etelässä ja Keski-Amerikka, Etelä-Yhdysvalloissa. Ne ovat yöelämää ja elävät koloissa. Nimi "armadillos" liittyy kuoren esiintymiseen kehon selkäpinnalla, joka koostuu yksittäisistä luulevyistä, jotka on peitetty sarveiskerroksella (ns. ihon luuranko, jota ei löydy muilta nisäkkäiltä). Eri lajien armadillojen rungon pituus vaihtelee 12 - 100 cm, paino jopa 55 kg.

Armadilloja käytetään lääketieteessä ja biologiassa koe-eläiminä, erityisesti yhdeksänraitaista armadilloa Dasypus novemcinctus Linnaeus, 1758 (kuva 1). Aikuisen yhdeksännauhaisen armadillon vartalon pituus on 40-55 cm, paino 3-7 kg; kuori koostuu rintakehästä ja lantion suojista, jotka on erotettu toisistaan ​​9 liikkuvalla vyöllä. Yhdeksännauhaisten armadillojen biologian piirteitä ovat mm matala lämpötila kehon (32-35°), pitkä viive blastokystin implantaatiossa - jopa 4,5 kuukautta. (raskauden kokonaiskesto noin 9 kuukautta), neljän monotsygoottisen pennun lisääntyminen, kyky sietää pitkää eksogeenisen hapen poissaoloa, vähentynyt soluimmuniteetin reaktio vakavaan humoraaliseen immuunireaktiot; elinajanodote - jopa 15 vuotta.

Dasypus-suvun armadilloissa yhdestä hedelmöittyneestä munasta (todellinen polyembryonia) kehittyy useita alkioita, mikä tekee niistä ainutlaatuisen luonnollisen mallin kaksosten ilmestymismekanismien sekä monien perinnöllisyys- ja vaihtelukysymysten tutkimiseen. Armadillo-monosygoottiset kaksoset ovat elinsiirtotutkimuksen sekä immunologisten, toksikoli- ja teratolitutkimusten kohteena. tutkimusta. Farmakokinetiikka lääkkeet Armadillojen kehossa on hyvin lähellä ihmisten määrää. Esimerkiksi talidomidin on havaittu aiheuttavan sikiön epämuodostumia armadilloissa, joita ei ole havaittu muissa laboratorioissa. eläimet.

Armadillos sopeutuu helposti vankeuteen. Niitä on parasta säilyttää pienissä (2-4 m2) aitauksissa, joissa on pesäkennel ja hiekkalaatikko. Kuivikemateriaalina käytetään yleensä paperiromun tai sammalta. Luonnossa ne syövät pääasiassa hyönteisiä, matoja, kasviperäiset ruoat muodostavat alle 10% ruokavaliosta. Vivariumissa heidän ruokavalionsa sisältää jauhelihaa, munia, maitoa, vihanneksia ja hedelmiä. Armadillot eivät ole aggressiivisia, joten hoito ja kokeellinen työ niiden kanssa eivät ole vaikeaa. Vankeudessa yhdeksännauhaiset armadillot eivät pesi (jotkin muut lajit, kuten harjasvyöhyke, lisääntyvät).

Bibliografia: Bashenina N. V. Ohjeet uusien pienjyrsijälajien pitämiseen ja kasvattamiseen laboratoriokäytännössä, M., 1975, bibliogr.; 3 a-padnyuk I. P., Zapadnyuk V. I. ja 3 a x a r and I E. A. Laboratory eläimet, Kiova, 1974, bibliogr.; Laboratoriomenetelmät patogeenisten alkueläinten tutkimukset, komp. D. N. Zasukhin et ai., M., 1957; Lane-Petter U. Tieteellisen tutkimuksen tarjoaminen koe-eläimillä, käänn. englannista, M., 1964, bibliografia; Medvedev H. N. Lineaariset hiiret, L., 1964, bibliografia: Sarkisov D. S. ja P e m e z o julkaisussa P. I. Reproduction of human betegségek in experiment, M., 1960, bibliogr.; Coccidia, toim. kirjoittanut D. M. Hammond a. P. L. Long, s. 482, Baltimore-L., 1973; Flynn R. Laboratorioeläinten parasites, Ames, 19 73; Laboratorioeläintieteen käsikirja, toim. kirjoittanut E. C. Melby a. N. H. Altman, v. 1-3, Cleveland, 1974-1976; Kohler D., Madry M. u. Hein-e with k e H. Einfiihrung in die Ver such -stierkunde, Jena, 1978; Muller G. u. K i e s s i g R. Einfiihrung in die Versu-chstierkunde, Jena, 1977.; Sokolov V. E. Nisäkkäiden taksonomia, s. 362, M., 1973; In e n i g s with h k e K. Miksi armadillos? julkaisussa: Eläinmallit biolääketieteen tutkimukseen, s. 45, Washington, 1968; Kirch-h e i m e r W. F. a. S t o r r s E. E. Yritykset vahvistaa armadillo (Dasypus novemcinctus Linn) malliksi spitaalin tutkimukselle, Int. J. Leprosy, v. 39, s. 693, 1971; Merit D. A. Edentate diets, I. Armadillos, Lab. Animal Sci., v. 23, s. 540, 1973; Peppier R. D. Lisääntymisparametrit yhdeksännauhaisessa armadillossa, Anat. Rec., v. 193, s. 649, 1979; S t o r r s E. E. Yhdeksännauhainen armadillo, malli biolääketieteelliseen tutkimukseen, julkaisussa: Laboratorioeläin huumetestauksessa. toim. kirjoittanut A. Spiegel, s. 31, Jena, 1973.

V. A. Dushkin; D. H. Zasukhin, L. M. Gordeeva; A. A. Juštšenko.

KOEELÄimet

koeeläimet, eläimet, jotka on erityisesti kasvatettu lääketieteellisiin, eläinlääkintä- ja biologista tutkimusta. perinteiseen L. sisältävät valkoiset hiiret, valkoiset rotat, erityyppiset hamsterit, marsut, kanit, kissat, koirat; puuvillarotat, myyrät, gerbiilit, fretit, opossumit, armadillot, apinat, minisiat, miniaasit, pussieläimet, kalat, sammakkoeläimet ja muut. On joukko laboratoriolintuja (kanat, kyyhkyset, viiriäiset jne.). Paitsi L., kokeissa käytetään kotieläimiä, useammin lampaita ja sikoja. Immuuni- ja diagnostisten seerumien tuottajat ovat hevoset, aasit, lampaat ja kanit. Kokeessa käytetään myös monia selkärangattomia (esimerkiksi Drosophila) sekä alkueläimiä.

L. geneettisten, ekologisten, morfologisten indikaattoreiden ja terveydellisistä syistä hallinnassa. Niitä kasvatetaan erityisissä taimitarhoissa tai tieteellisten laitosten vivaariumeissa. Epälineaarinen L. on oltava korkea heterotsygoottisuus. Mitä pienempi on kasvatettujen epälineaaristen eläinten suljettu populaatio, sitä korkeampi on sukusiitos niiden keskuudessa. Homotsygoottisia (sisäsiitos, lineaarisia) eläimiä, jotka on kasvatettu lähisiitosten perusteella, käytetään yhä enemmän tutkimuksessa (kuva 1). Tunnetaan noin 670 linjaa hiiriä, 162 linjaa rottia, 16 linjaa marsuja, 66 linjaa hamstereita, 4 linjaa gerbiilejä ja 7 linjaa kanoja. Jokaisella linjalla on omat ominaisuutensa geenisarjassa, herkkyys erilaisille antigeeneille ja stressitekijöille. Lineaarisia eläimiä seurataan systemaattisesti homotsygoottisuuden varalta. Kasvatessaan L. saada 5 pentuetta vuodessa hiiriltä, ​​keskimäärin 7 hiirtä jokaisessa pentueessa, vastaavasti, rotat 5 ja 7, marsut 3 ja 5, kanit 4 ja 6. L.(vivaariumien) tulee olla erittäin hygieenisiä, tilavia, 10 ilmanvaihtoa tunnissa ja ilmankosteuden 5065 %. 65 aikuista tai 240 nuorta hiirtä, 20 100 rottaa, 3 040 hamsteria, 1 518 marsua, 34 kania sijoitetaan 1 m 2:lle. Yhdessä häkissä saa pitää enintään 15 hiirtä, 10 rottaa, 5 hamsteria ja marsua, 1 kani. Vivaariumin pinta-alasta vähintään 50 % on varattu kodinhoitohuoneisiin. Tarttuvien aiheuttajien vaihdon välttämiseksi eri lajien sisältö ei ole sallittua. L. samassa huoneessa tai häkissä. Hiiriä, rottia, marsuja ja hamstereita pidetään pääasiassa muovisissa kartiomaisissa tarjottimissa, joissa on verkkokannet; kanit, koirat, apinat ja linnut metallihäkeissä. Tarjottimet ja häkit asetetaan hyllyille 16 tasoon (kuva 2), jotka on varustettu automaattisilla juoma- ja syöttösuppiloilla, pestään ja desinfioidaan perusteellisesti fysikaalisilla tai kemiallisilla keinoilla ennen käyttöä. Hiirten ja rottien kylpyt vaihdetaan viikoittain puhtaisiin. Kuivikkeiden poisto niistä ja pesu suoritetaan erityisessä huoneessa, joka on varustettu asianmukaisilla laitteilla tai pesukoneet. ruokittu L. luonnollinen rehu tai briketoituja tiivisteitä kehitettyjen päivittäisen tarpeen mukaan. Brikettirehu asetetaan syöttölaitteisiin useiksi päiviksi. Palvelee L. koulutettu henkilökunta, joka on käynyt lääkärintarkastuksen.

L. monet tarttuvat taudit: salmonelloosi, listerioosi, stafylokokkoosi, isorokko, virusripuli, lymfosyyttinen koriomeningiitti, kokkidioosi, helmintiaasi, sieni-infektiot, punkkien levittämät leesiot jne. Patogeenisten bakteerien ja virusten piileviä kantajia (etenkin rotilla) on piileviä tartuntatautien muotoja, joiden etiologia on vähän tutkittu. Jotkut infektiot L. ovat zooantroponooseja. Sairauksien ehkäisy L. perustuu saniteetti- ja hygieniasääntöjen tiukkaan noudattamiseen, ympäristön maksimaaliseen desinfiointiin (tilat, ilma, laitteet, rehu, vuodevaatteet jne.). Tuotanto on järjestetty joissakin maissa L. ilman spesifisiä patogeenisiä tekijöitä, niin kutsutut SPF-eläimet (katso). Kasvava tarve L. synnytti tieteen L., joka sisältää genetiikan, ekologian, morfologian, fysiologian, patologian ja muut osat sekä erikoislaboratorioeläintalouden. Monissa maissa (USA, Iso-Britannia, Saksa, Ranska, Neuvostoliitto jne.) on vastaavia tieteellisiä keskuksia, joiden koordinoinnista vastaa Kansainvälinen tiedekomitea. L.(YCLAS).

Kirjallisuus:
Bashenina N.V., Ohjeita uusien pienjyrsijälajien pitämiseksi ja kasvattamiseksi laboratoriokäytännössä. M., 1975;
Terveyssäännöt kokeellisten biologisten klinikoiden (vivaariumien) järjestelyyn, varusteluun ja ylläpitoon, M., 1973.

Eläinlääketieteellinen tietosanakirja. - M.: "Neuvostoliiton tietosanakirja". Päätoimittaja V.P. Shishkov. 1981 .

Katso, mitä "LABORATORY ANIMALS" on muissa sanakirjoissa:

koeeläimet- katso Laboratorioeläimet. (Lähde: Glossary of Microbiology Terms) ... Mikrobiologian sanakirja

KOEELÄimet- KOEELÄimet, erityyppisissä laboratorioissa tieteellisiin ja käytännön tarkoituksiin palvelevat eläimet. L. ne voivat olla helposti hankittavia, hyvin pidettyjä tai laboratorioympäristössä kasvatettuja ja lisäksi sopivia sellaisenaan ... ... Suuri lääketieteellinen tietosanakirja

koeeläimet- tieteellisissä kokeissa tai kokeissa, biologisissa testeissä käytetyt eläimet, koulutusprosessi, sekä biologisten aineiden tuotannossa ... Lähde: MALLILAIKI ELÄINTEN HOITOSTA (Yhdessä MAHDOLLISTEN VAARALLISTEN ROTUVIEN kanssa ... ... Virallinen terminologia

KOEELÄimet- käytetään tieteellisten kanssa. tarkoitus biologiassa, lääketieteessä, eläinlääketieteessä, s. x ve. Riippuen tieteen tehtävistä kokeile valitse L., naib, joka sopii annettuihin tarkoituksiin. Tämä ei ota huomioon vain biol. näkymän ominaisuuksia, jotka tarjoavat yksinkertaisuuden ja ... ...

koeeläimet- koe- tai koeeläimet, joita käytetään laboratorioissa tieteellisiin ja käytännön tarkoituksiin. L. tulee olla terve, omata tiettyjä erityispiirteitä (esim. herkkyys tutkituille infektioille, ... ... Suuri Neuvostoliiton tietosanakirja

Eläinten malli- * Madeleine live * Eläinmallilaboratorioeläimet, joita käytetään tieteelliseen tutkimukseen, erityisesti lääketieteelliseen, ihmisen perinnöllisten sairauksien tutkimiseen. Majatalo. temp. kokeellisessa lääketieteessä käytetään noin 250 ... ... Genetiikka. tietosanakirja

Eläimet KOKEESSA- eläinten käyttö biologisessa, fysiologisessa ja lääketieteellisessä tutkimuksessa, erilaisten tuotteiden ja valmisteiden myrkyllisyystesteissä, erilaisissa koulutusohjelmia ja niin edelleen. Eläimet joko teurastetaan ja sitten tutkitaan ... ... Collier Encyclopedia

Eläinten laboratorio- (kokeelliset) heterogeeniset eläinlajit, joita käytetään laboratorioissa tieteellisiin ja soveltaviin tarkoituksiin. Tällä hetkellä kokeellisessa lääketieteessä käytetään noin 250 selkärankaisten ja selkärangattomien lajia. Perinteinen... Mikrobiologian sanakirja

ELÄIMET- (Animalia), elävien organismien valtakunta, yksi orgaanisen järjestelmän suurimmista alueista. rauhaa. Luultavasti syntyi n. 1 1,5 miljardia vuotta sitten meressä mikroskooppisia muistuttavien solujen muodossa. aklorofylliset ameboidiset siimalaatit. Maa F… Biologinen tietosanakirja

Eläimiä avaruudessa– Neuvostoliitossa ja USA:ssa 1940- ja 1950-luvuilla aloitettiin kokeet, joiden tarkoituksena oli selvittää, onko ihmisen lento avaruuteen mahdollista. Biokosmisen tutkimuksen ensimmäinen vaihe oli koirien, apinoiden ja muiden eläinten toistuvat lennot raketteissa ... Uutisentekijöiden tietosanakirja

Kirjat

• laboratorioeläimiä. Oppikirja , Stekolnikov Anatoli Aleksandrovich , Shcherbakov Grigory Gavrilovich , Yashin Anatoly Viktorovich , Käsikirja sisältää materiaalia tärkeistä eläinlääketieteen ja kotieläinjalostuksen aloista, jotka koskevat koe-eläinten hoitoa, ruokintaa ja sairauksia. Se esitetään yleisesti hyväksytyn menetelmän mukaisesti, joka vastaa ... Luokka: Eläinlääkintä Sarja: Oppikirjoja yliopistoille. Erikoiskirjallisuutta Kustantaja:

Aiheeseen liittyviä julkaisuja:

1. https://doi.org/10.30895/1991-2919-2018-8-4-207-217.

1. Makarova M.N., Rybakova A.V., Gushchin Ya.A., Shedko V.V., Muzhikyan A.A., Makarov V.G. Anatomiset ja fysiologiset ominaisuudet Ruoansulatuskanava ihmisillä ja koe-eläimillä // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2016, nro 1. -S. 82-104.
2. Voronin S.E., Makarova M.N., Kryshen K.L., Alyakrinskaya A.A., Rybakova A.V. Fretit laboratorioeläiminä // International Veterinary Bulletin. -2016, nro 2. -S. 103-116.
3. Rybakova A.V., Kovaleva M.A., Kalatanova A.V., Vanatiev G.V., Makarova M.N. Kääpiöporsaat prekliinisten tutkimusten kohteena // Kansainvälinen eläinlääketieteen tiedote. -2016, nro 3. -S. 168-176.
4. Voronin S.E., Makarova M.N., Kryshen K.L., Alyakrinskaya A.A., Rybakova A.V. Fretit laboratorioeläiminä // Materiaalit 4 Kansainvälinen kongressi eläinfarmakologit ja toksikologit "Tehokkaat ja turvalliset lääkkeet eläinlääketieteessä". Pietari, 2016. -S. 46-47.
5. Gorjatšova M.A., Gushchin Ya.A., Kovaleva M.A., Makarova M.N. Mahdollisuus käyttää lidokaiinihydrokloridia ja kaliumkloridia laboratoriokaniinien eutanasiaan // IV:n kansainvälisen eläinlääkintäfarmakologien ja toksikologien kongressin julkaisu "Tehokkaat ja turvalliset lääkkeet eläinlääketieteessä". Pietari, 2016. -S. 55-56.
6. Rybakova A.V., Makarova M.N. Pygmy-sikojen asianmukainen hoito ja hoito prekliinisissä tutkimuksissa // IV. kansainvälisen eläinlääketieteen farmakologien ja toksikologien kongressin julkaisu "Tehokkaat ja turvalliset lääkkeet eläinlääketieteessä". Pietari, 2016. -S. 46-47.
7. Susoev A.I., Avdeeva O.I., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Kokemus hamstereiden suun kautta hajoavien lääkkeiden prekliinisestä tutkimuksesta // Tiivistelmät VII:n tieteellis-käytännön konferenssista " Todellisia ongelmia lääketurvallisuusarviointi”. Sechenovsky Bulletin -lehden sähköinen liite. -2016, nro 2(24). -KANSSA. 34-35.
8. Kalatanova A.V., Avdeeva O.I., Makarova M.N., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Vanatiev G.V., Makarov V.G., Karlina M.V., Pozharitskaya O.N. Hamsterin poskipussien käyttö suuonteloon levinneiden lääkkeiden prekliinisissä tutkimuksissa // Apteekki. -2016, nro 7. -KANSSA. 50-55.
9. Rybakova A.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Kanien käyttö prekliinisissä tutkimuksissa // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2016, nro 4. -S. 102-106.
10. Gaidai E.A., Makarova M.N. Degusin käyttö laboratorioeläiminä // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2017, nro 1. -S. 57-66.
11. Rybakova A.V., Makarova M.N. Pygmy-sikojen ylläpidon kotieläinjalostus kokeellisissa vivaariumeissa // International Veterinary Bulletin. -2017, nro 1. -S. 66-74.
12. Makarova M.N., Makarov V.G., Rybakova A.V., Zozulya O.K. Laboratorioeläinten ravinto. Perusruokavaliot. Viesti 1. // International Veterinary Bulletin. -2017, nro 2. -S. 91-105.
13. Makarova M.N., Makarov V.G., Shekunova E.V. Eläinlajin valinta farmakologisten aineiden neurotoksisuuden arvioimiseksi // International Veterinary Bulletin. -2017, nro 2. -S. 106-113.
14. Rybakova A.V., Makarova M.N. Gerbiilien käyttö biolääketieteellisessä tutkimuksessa // International Veterinary Bulletin. -2017, nro 2. -S. 117-124.
15. Bondareva E.D., Rybakova A.V., Makarova M.N. Marsujen pitämisen kokeellisissa vivaariumeissa jalostustekniset ominaisuudet // International Veterinary Bulletin. -2017, nro 3. -S. 108-115.
16. Gushchin Ya.A., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Vertaileva anatomia ylempi divisioona koe-eläinten ja ihmisten maha-suolikanava // International Veterinary Bulletin. -2017, nro 3. -S. 116-129.
17. Makarova M.N., Makarov V.G. Laboratorioeläinten ravinto. Merkkejä proteiinin, rasvan, hiilihydraattien ja vitamiinien puutteesta ja ylimäärästä. Viesti 2. // International Veterinary Bulletin. -2017, nro 3. -S. 129-138.
18. Makarova M.N., Rybakova A.V., Kildibekov K.Yu. Vaatimukset valaistukseen vivaariumin ja koe-eläinhuoneen tiloissa // Kansainvälinen eläinlääketieteen tiedote. -2017, nro 3. -S. 138-147.
19. Rybakova A.V., Makarova M.N. Hamsterien käyttö biolääketieteellisessä tutkimuksessa // International Veterinary Bulletin. -2017, nro 3. -S. 148-157.
20. Makarova M.N., Makarov V.G., Rybakova A.V. Laboratorioeläinten ravinto. Merkkejä mineraaliyhdisteiden puutteesta ja ylimäärästä. Viesti 3 // International Veterinary Bulletin. -2017, nro 4. -S. 110-116.
21. Muzhikyan A.A., Zaikin K.O., Gushchin Ya.A., Makarova M.N., Makarov V.G. Ihmisten ja koe-eläinten maksan ja sappirakon vertaileva morfologia // International Veterinary Bulletin. -2017, nro 4. -S. 117-129.
22. Rybakova A.V., Makarova M.N. Marsujen käyttö biolääketieteellisessä tutkimuksessa // International Veterinary Bulletin. -2018, nro 1. -S. 132-137.
23. Gushchin Ya.A., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Koe-eläinten ja ihmisten alemman maha-suolikanavan vertaileva morfologia // International Veterinary Bulletin. -2018, nro 1. - S. 138-150.
24. Rudenko L., Kiseleva I., Krutikova E., Stepanova E., Rekstin A., Donina S., Pisareva M., Grigorieva E., Kryshen K., Muzhikyan A., Makarova M., Sparrow E.G., Marie-Paule G.T. Kolme- tai neliarvoisilla elävillä, heikennetyillä influenssarokotteilla rokottamisen perusteet: Rokotteen suojaava teho frettimallissa // PLOS ONE. - 2018. - s. 1-19.
25. Rybakova A.V., Makarova M.N., Kukharenko A.E., Vichare A.S., Rüffer F.-R. Nykyiset vaatimukset ja lähestymistavat lääkkeiden annosteluun koe-eläimissä // Vedomosti of Scientific Centre for Expertise of Means lääketieteelliseen käyttöön. – 2018, 8(4). - S. 207-217.