Pri diagnostickej práci bakteriologických laboratórií je často potrebné uchýliť sa k infikovaniu takzvaných laboratórnych alebo experimentálnych zvierat. V každodennej praxi sa na tento účel najčastejšie používajú malé, najlacnejšie zvieratá: biele myši a potkany, morčatá, králiky a vtáky, holuby a kurčatá. Psy a mačky sa používajú menej často a ešte menej často - rôzne druhy zvieratá z farmy. Účelom biologických výskumných metód je stanovenie patogenity alebo stupňa virulencie študovaného materiálu, izolácia čistých kultúr mikróbov z materiálu, oddelenie patogénnych mikroorganizmov zo zmesi so saprofytickými druhmi a pod.. Široké využitie majú aj laboratórne zvieratá v sérologickej praxi: morčatá - na získanie komplementu, králiky (ovce, teľatá) - pri výrobe rôznych aglutinačných sér, hemolyzínu, erytrocytov atď. Na výrobu špeciálnych živných pôd, krvi, séra, rôznych orgánov, tkanív atď. Okrem toho sa laboratórne zvieratá široko používajú pri určovaní kvality biologických a chemoterapeutických liečiv, ako aj pri vedeckej a experimentálnej práci. Laboratórne zvieratá sa využívajú aj na diagnostiku niektorých infekčných ochorení, modelovanie experimentálnych akútnych a chronických infekčných procesov, stanovenie virulencie a toxikogenity študovaných mikrobiálnych kmeňov, stanovenie aktivity pripravených vakcín a štúdium ich bezpečnosti.

Bakteriologické laboratóriá pre rutinnú prácu zvyčajne chovajú laboratórne zvieratá v škôlkach špeciálne organizovaných na tento účel. To umožňuje vždy získať dostatočné množstvo testovaného a bezchybného kvalitného experimentálneho materiálu. Ak zvieratá nie sú chované, ale iba chované v laboratóriu, potom sa miestnosť pre ne nazýva vivárium. Nové šarže zvierat sa nakupujú zo škôlok. Podmienky ustajnenia a kŕmenia na týchto oddeleniach sú takmer rovnaké, preto v nižšie uvedenom materiáli nebudú žiadne rozdiely medzi uvedenými laboratórnymi štruktúrami.

Stručné informácie o údržbe, chove, kŕmení a chorobách laboratórnych zvierat

Chov zvierat v škôlkach by mal vždy, keď je to možné, zodpovedať podmienkam ich existencie v prírode. Toto ustanovenie sa vzťahuje najmä na voľne žijúce zvieratá a vtáky (divoké holuby, vrabce, domáce sivé myši a potkany). V nepriaznivých podmienkach bývania a kŕmenia pre nich tieto zvieratá v zajatí rýchlo hynú (najmä vrabce a myšie sivé). Predpokladom úspešného fungovania škôlky je prísne dodržiavanie všetkých veterinárnych, sanitárnych, zootechnických a zoohygienických pravidiel. Tie zabezpečujú chov zvierat v priestranných, ľahkých, suchých a čistých klietkach, v dobre vetraných miestnostiach s normálnou teplotou, racionálne a výživné kŕmenie a vykonávanie preventívnych opatrení na prevenciu rôznych chorôb. Pre škôlku má veľký význam dobrá skladba samcov a samíc.

Škôlka (vivárium) musí mať niekoľko oddelení na chov rôznych druhov zvierat (králiky, morčatá, myši atď.). Štruktúra vivária zahŕňa:

oddelenie pre karanténu a adaptáciu novoprijatých zvierat;

experimentálna biologická klinika na chov pokusných zvierat;

izolačné oddelenia pre zvieratá podozrivé z infekčných chorôb a známe ako choré, ktorých zničenie je podľa podmienok pokusu nežiaduce;

experimentálna miestnosť (alebo manipulačná miestnosť), v ktorej sa vykonáva váženie, termometria, infekcia, očkovanie zvierat, odber krvi a niektoré ďalšie procedúry.

Vybavenie experimentálnej miestnosti je určené v každom konkrétnom prípade úlohami a podmienkami experimentov. vedecký výskum.

Oddelenie karantény, oddelenie pre pokusné zvieratá a oddelenie pre infikované zvieratá sú umiestnené v miestnostiach prísne izolovaných od seba a od všetkých ostatných miestností vivária.

Okrem vyššie uvedených hlavných štruktúrnych jednotiek by vivárium malo obsahovať:

a) kŕmna kuchyňa pozostávajúca z dvoch susediacich miestností na spracovanie a výrobu krmiva so samostatnými východmi na chodbu z každej miestnosti, špajza so špeciálne vybavenými truhlicami (kovovými alebo plechovými) a chladničkami na skladovanie zásob krmiva,

b) oddelenie dezinfekcie a umývania pozostávajúce z 2 miestností spojených prechodovým autoklávom alebo komorou so suchým teplom.

Práca oddelenia dezinfekcie a umývania je daná stavom materiálu vstupujúceho na spracovanie. Infikovaný materiál, ako sú klietky, podstielka, kŕmidlá, sa najskôr dezinfikuje a následne mechanicky očistí a umyje. Materiál, ktorý nepredstavuje riziko infekcie, je potrebné najskôr mechanicky očistiť a potom (v prípade potreby) sterilizovať.

Umyváreň v správne zorganizovanom teráriu má žľab na odpadky na odvoz odpadu a vysokozdvižný vozík na dopravu materiálu a vybavenia do terária.

Vedľa oddelenia dezinfekcie a umývania sa nachádza sklad čistého (náhradného) vybavenia s klietkami, napájačkami, kŕmidlami a pod., priestory pre domácnosť a sanitárny blok (sprcha a WC) pre obsluhujúci personál.

V súlade s existujúcimi hygienickými predpismi je vivárium umiestnené v samostatnej budove alebo na najvyššom poschodí laboratórnej budovy. Pri umiestnení vivária v budove laboratória musí byť úplne izolované od všetkých ostatných miestností.

Miestnosť na chov laboratórnych zvierat by mala byť teplá, svetlá a suchá s ústredným kúrením, prirodzeným a umelým osvetlením, núteným prívodom a odsávaním, prívodom teplej a studenej vody.

Podlahy v teráriu sú vyrobené z vodeodolného materiálu, bez soklových líšt a majú sklon k otvorom alebo žľabom napojeným na kanalizáciu. Steny sú pokryté glazovanými dlaždicami, stropy a dvere sú natreté olejovou farbou.

Vzhľadom na to, že vírusy sa môžu rozmnožovať iba v živých bunkách, v najskorších štádiách vývoja virológie sa široko využívala kultivácia vírusov v tele laboratórnych zvierat, špeciálne chovaných na ich výskum.

Používa sa: 1) na detekciu vírusu v PM 2) primárna izolácia vírusu z PM 3) akumulácia vírusovej hmoty 4) udržiavanie vírusu v laboratóriu v aktívnom stave. 5) titrácia vírusu 6) ako testovaného objektu pri pH 6) získanie hyperimúnneho séra. Použité zvieratá: biele myši (besnota, slintačka a krívačka), biele potkany (prasacia chrípka, Aujeszkyho choroba), morčatá (besnota, slintačka a krívačka, psinka). Králiky (besnota, králičie myxómy).

Požiadavky na laboratórne zvieratá – zviera musí byť citlivé na tento vírus; jeho vek má veľký význam pre kultiváciu mnohých vírusov. Väčšina vírusov sa lepšie reprodukuje v tele mláďat a dokonca aj novonarodených zvierat; štandardná citlivosť sa dosiahne výberom zvierat určitého veku a rovnakej hmotnosti. Pokiaľ ide o citlivosť, takzvané lineárne zvieratá získané v dôsledku príbuzenská plemenitba počas niekoľkých generácií; laboratórne zvieratá musia byť zdravé. Zvieratá vstupujúce do vivária virologického laboratória musia byť privezené z trezoru infekčné choroby farmy. Sú držané v karanténe a podrobujú sa klinickému pozorovaniu. Ak existuje choroba, sú zničené.

Zvieratá sú umiestnené tak, aby bolo na jednej strane zabezpečené fungovanie všetkých telesných systémov v rámci fyziologických noriem a na druhej strane bola vylúčená vzájomná reinfekcia a šírenie infekcie mimo vivária. Pre zvieratá odlišné typy uplatniť rôzne cesty individuálny štítok. Pre veľké zvieratá a kurčatá sa používajú kovové štítky s vyrazeným číslom. Pri použití malej skupiny zvierat v experimente a na krátku dobu je možné srsť ostrihať so znakmi na chrbte a bokoch. Značenie bielych myší a bielych potkanov sa môže uskutočniť amputáciou jednotlivých prstov na predných alebo zadných končatinách. Často sa používa metóda nanášania farebných škvŕn na nepigmentovanú vlnu. Infekcia laboratórnych zvierat.

• 1. podkožný - chrbát.
• 2. Intradermálne - päta
• 3. Intramuskulárne – stehno
• 4. Intravenózne - do chvosta (po trení horúca voda a stlačené)
• 5. Intranazálne - kvapka do nosa (predbežne podať slabú éterová anestézia zabrániť kýchaniu)
• 6. Interocerebrálne - lebka je opatrne prevŕtaná ihlou, netlačiť, kvapka odíde sama.

Všetky povrchy sú vopred namazané jódovaným alkoholom.

Prípravné laboratórium. zvieratá (na príklade bielej myši)

• - Koža je premastená dezinfekčným prostriedkom.
• - Vedie sa rez pozdĺž linea alba.
• - Otvorenie hrudnej kosti - odoberú sa pľúca a vložia sa do skúmavky č.1
• - Pitva brušná dutina- odoberie sa pečeň, slezina, oblička a vloží sa do skúmavky č.2.
• - Lebka je otvorená. Zoberie sa mozog, urobia sa rezy zo 4 vrstiev, kúsky sa položia na filtračný papier a vytlačia sa na sklo.

LABORATÓRNE ZVIERATÁ- rôzne druhy zvierat špeciálne chované v laboratóriách alebo škôlkach na pokusnú alebo priemyselnú prax. L. zh. používa sa na účely diagnostiky chorôb, modelovania rôznych fyziol, a patol, stavov, štúdia medicínskych odborníkov, liečiv, chemických a fyzikálnych faktorov, výroby biologických produktov - diagnostických sér, vakcín, tkanivových kultúr a pod.

Laboratórne zvieratá zahŕňajú zvieratá rôznych systematických skupín: prvoky, červy, článkonožce, ostnokožce, obojživelníky, vtáky, cicavce. Najčastejšie však L. rozdelené na bezstavovce a stavovce.

Laboratórne zvieratá stavovcov

S využívaním stavovcov človekom na vzdelávacie účely sa zrejme začalo počas rozvoja chovu dobytka. Následne sa na zvieratách začala skúmať štruktúra a funkcie rôznych orgánov živých organizmov. Predovšetkým sú známe pozorovania starogréckeho prírodovedca Diogena (5. storočie pred n. l.), ktorý pitvou zvieracích tiel stanovil rôzne funkcie predsiení. Neskôr anatómiu a fyziológiu na zvieratách študovali Aristoteles, C. Galen, W. Harvey a i. Spočiatku sa experimentovalo na domácich zvieratách. V 15. storočí biele myši, potkany a morčatá sa stali známymi. Koncept „laboratórnych zvierat“ sa však vyvinul koncom 19. storočia.

Celkovo sa v medicínsko-biologickom výskume využíva až 250 druhov zvierat. Niektoré druhy sú neustále chované v laboratóriách a škôlkach na vedecký výskum (biele myši, biele potkany, morčatá, králiky, škrečky, mačky, psy, opice, miniprasiatka atď.). Iní sa pravidelne chytajú na pokusy (hraboše, pieskomily, šelmy, fretky, svište, pásavce, lemmy, obojživelníky, ryby atď.). Existuje skupina laboratórií. vtáky (kurčatá, holuby, kanáriky, prepelice atď.). Časť medu experimenty sa vykonávajú v poľnohospodárstve. zvieratá (ovce, ošípané, teľatá atď.). Od celkový počet L. zh. myši predstavujú cca. 70 %, potkany – 15 %, morčatá- 9%, vtáky - 3%, králiky - 2% a iné - 1%.

Záujem výskumníkov o hlodavce je spôsobený najmä tým, že mnohé z nich majú malé telesné rozmery, vysokú plodnosť a krátke obdobieživot; Len za pár mesiacov života hlodavca je možné vysledovať procesy v tele, ktoré u ľudí trvajú roky. Priemerná dĺžka života bielych myší je 1,5-2 roky, potkanov 2-2,5 roka, škrečkov 2-5 rokov, morčiat 6-8 rokov, králikov 4-9 rokov.

Pri chove L. vykonávať kontrolu na základe genetickej, environmentálnej, morfologické charakteristiky, ako aj zo zdravotných dôvodov.

Geneticky L. sa delia na nelineárne (heterozygotné) a lineárne (homozygotné). Nelineárne zvieratá sú chované na základe náhodného kríženia a vďaka tomu majú vysoký stupeň heterozygotnosť. Nárast príbuzenského kríženia (pozri) v tejto skupine L. nie je povolené viac ako 1 % za generáciu.

Vo vedeckých inštitúciách, kde sa vykonáva výskum v oblasti vied o živote, musia byť vedecké a pomocné jednotky: vivárium (pozri) a experimentálna biologická klinika. Sú chované a čiastočne chované vo viváriu. jednotlivé druhy zvierat s ich následným presunom na experimentálny výskum. Na experimentálnej biologickej klinike sa nachádzajú iba zvieratá, na ktorých sa vykonáva výskum. Vivária a experimentálne biologické ambulancie sa nachádzajú v samostatnej budove (komplex budov). Vhodné priestory sú vybavené pre obojživelníky a ryby používané pri pokusoch.

Aby sme uspokojili neustále sa zvyšujúci dopyt po L. rôznych druhov, línií a kategórií vzniklo samostatné odvetvie hospodárstva - laboratórny chov zvierat s príslušnými vedeckými a výrobnými základňami. Zorganizovalo sa vhodné školenie pracovníkov. == Laboratórne zvieratá bezstavovcov == Okrem stavovcov sa v laboratóriách používajú aj mnohé bezstavovce: prvoky, helminty, článkonožce (hmyz, roztoče) atď. Účely a spôsoby ich použitia ako laboratórnych zvierat. veľmi rôznorodé. Nepostrádateľné predmety pre rôzne laboratóriá. Protozoa (kmeň Protozoa) sa na výskum využívajú už dlho. Rýchlosť ich rozmnožovania, malá veľkosť, porovnateľná jednoduchosť a jednoduchosť chovu v laboratóriu robia z prvokov najlacnejšie experimentálne modely (pozri Protozoa).

Boli vyvinuté metódy na zmrazenie a dlhodobé skladovanie určitých druhov prvokov (trypanozómy, leishmánie, toxoplazmy atď.) v tekutom dusíku. Táto metóda vám umožňuje vytvárať kryobanky kmeňov prvokov, čo je výhodné, keď ich používate ako L.

Schopnosť mnohých prvokov nepohlavne sa rozmnožovať je predpokladom pre získanie čistých línií prvokov - klonov, ktoré slúžia ako nepostrádateľný objekt pre genetické, imunologické a iné štúdie.

Pri pokusoch s prvokmi treba brať do úvahy nielen ich druh, kmeň alebo izolát, ale často aj ich príslušnosť k určitej genetickej línii. Veľký význam v laboratóriu. obsah má vedomosti životný cyklus vývoj najjednoduchších a jednotlivých etáp tohto cyklu (pozri Životný cyklus).

Pri práci s prvokmi majú významný vplyv biotické a abiotické faktory životné prostredie.

Veľké améby (Amoeba proteus, Chaos, Pelomyxa atď.) sa využívajú v cytogenetických a iných štúdiách, najmä pri analýze dedičnej variability, výskytu a frekvencie mutácií. V mikrochirurgických experimentoch boli získané jadrovo-cytoplazmatické hybridy - heterokaryóny, na ktorých sa študujú javy transplantačnej inkompatibility, epigenetická variabilita a pod.. Na týchto objektoch sa vykonávajú rôzne pozorovania účinkov ionizujúceho a ultrafialového žiarenia, chemického. mutagenéza.

Ciliates sú tiež klasickými objektmi pre cytogenetický výskum, vrátane genetickej analýzy pri štúdiu určitých problémov variability a dedičnosti. Ciliates slúžia ako vhodné predmety pre toxikologické štúdie, ako aj pre štúdium biol, účinku ultrafialových lúčov, prenikavého žiarenia a ďalších faktorov. Toto zohľadňuje zmeny v rýchlosti a povahe pohybu, pulzácie kontraktilných vakuol, jadrový aparát, poruchy v rýchlosti delenia atď. posledné roky Niektoré druhy nálevníkov našli široké využitie pri pokusoch na molekulárna biológia, najmä v genetické inžinierstvo. Na udržiavanie riasiniek in vitro boli vyvinuté médiá rôzneho zloženia – od najjednoduchších vo forme nálevov z bylín a listov až po zložité syntetické s vopred určenými chemikáliami. zloženie.

Nevyhnutnou podmienkou pre použitie článkonožcov v experimente je kontrola pôvodnej prirodzenej populácie (predchodca laboratórnej kultúry) na čistotu línie - absenciu prirodzenej kontaminácie patogénmi, keďže článkonožce sajúce krv majú ako nositeľky rozhodujúci význam. a nositelia patogénov mnohých infekcie prenášané vektormi(rickettsióza, arbovírusové infekcie, leishmanióza, filarióza, malária atď.). Na určenie stupňa účasti akéhokoľvek druhu článkonožcov na prenose infekčných agens alebo jeho skutočnej úlohy v epidemiológii a epizootológii je potrebné vykonať experimentálne štúdie s článkonožcami a patogénmi sajúcimi krv.

Kliešte Argasidae a Ixodidae sa používajú na dlhodobú ochranu patogénov spirochetózy, rickettsiózy, arbovírusových infekcií atď.

Kliešte, komáre, komáre, muchy a iné článkonožce sa využívajú pri pokusoch na testovanie účinnosti insekticídov, akaricídov a repelentov, ako aj na vývoj biol, metód boja proti prenášačom ľudských a zvieracích patogénov a poľnohospodárskych škodcov.

Na experimentálne štúdium ako nosičov patogénov prirodzených fokálnych ochorení človeka (encefalitída, hemoragické horúčky, rickettsióza a pod.), ako aj pri testovaní účinnosti akaricídov a vyvíjaní špecifické metódy biol sa využíva boj proti kliešťom ixodid (rody Ixodes, Haemaphysalis, Hyalomma, Rhipicephalus, Dermacentor). Kliešte Ixodid sa ľahko kultivujú v laboratóriu. podmienky. Na vytvorenie laboratória. kultúry kliešťov ixodidov sa zbierajú z poľnohospodárstva. zvierat (už opitých krvou) alebo z vegetácie v prirodzených biotopoch (hladných). Dobre kŕmené kliešte sa umiestnia do špeciálne namontovaných navlhčených skúmaviek na kladenie vajíčok. Hladné kliešte sa kŕmia L. pod látkové čiapky, ktoré sú nalepené na zadnej strane hostiteľského zvieraťa (ošípané, králiky, myši, škrečky, ale aj ovce a veľké dobytka). O náležitá starostlivosť roztoče tej istej línie sa roky kultivujú v laboratóriu.

Pohodlné laboratórium. Predlohou sú roztoče argasid (rody Ornithodoros, Alveonasus, Argas). Používajú sa na experimentálne štúdium vzťahu medzi kliešťami a patogénmi (spirochéty, vírusy, rickettsie), ako aj na dlhodobé (mnohé roky) uchovanie patogénov v aktívnom stave. Pri kultivácii sa roztoče Argasid kŕmia buď živým tkanivom alebo zvieracou krvou cez membránu vyrobenú z kože myši alebo kurčiat. Bola vyvinutá metóda na kŕmenie argasidových roztočov na kuracom embryu ich zasadením do vzduchovej komory vajíčka. Kliešte Alveonasus lahorensis, Ornithodoros papillipes atď. sa v laboratóriách pestujú už mnoho desaťročí.

Ako L. Používajú sa aj roztoče Gamasoidea. Medzi nimi roztoče Ornithonyssus bacoti (roztoč potkaní), Dermanyssus gallinae (roztoč kurací), Allodermanyssus sanguineus (roztoč myši) sú obzvlášť vhodné na chov v laboratóriu. Roztoče Gamasid sa používajú na modelovanie inf. proces pri rickettsióze, kliešťová encefalitída, tularémia, hemoragické horúčky. V laboratóriu zariaďujú tzv. rastlina - umelé hniezdo, v ktorom sú umiestnené kliešte a L. (myši, kurčatá atď.) na ich kŕmenie. Podľa potreby sa kliešte odoberú z rastliny a počas experimentu a pozorovania sa držia v špeciálnych zvlhčených komorách.

Pre experimentálne práce sa v rôznych laboratóriách chovajú komáre cicajúce krv (Culicidae) rôznych rodov (Aedes, Anopheles, Culex). V niektorých prípadoch je vhodné použiť komáre rodu Culex pipiens molestus, ktoré sa dajú ľahko chovať v laboratóriu; Oplodnené samice za priaznivých podmienok nevstupujú do diapauzy a môžu klásť vajíčka bez predchádzajúceho kŕmenia krvou. Larvy, ktoré vychádzajú z vajíčok, sa vyvíjajú vo vode bohatej na organické látky.

Z komárov rodu Aedes sú najľahšie chovateľné komáre druhu Aedes aegypti, ktoré sú prenášačmi vírusov žltej zimnice a iných ľudských chorôb, ako aj vtáčích plazmódií atď. Môžu byť chované v relatívne malých klietkach; Samičky komárov sú kŕmené krvou králikov alebo iných zvierat. Vajcia znesené samicami Aedes môžu byť dlho skladujte v suchu; Na vyliahnutie lariev sa umiestnia do nádoby s vodou. Potravou pre larvy je ryžový prášok, prášok z dafnie, vaječný žĺtok atď. Voda v nádobe s larvami musí byť čistá a nesmie byť kontaminovaná potravou. Cievy, v ktorých sa vytvorili kukly, sú umiestnené v gázových klietkach na chov komárov.

Pre širokú škálu experimentálnych štúdií, najmä pre štúdium prenosu morových patogénov, ricketsióz a iných bakteriálne ochoreniaľudí a zvierat, študujúcich účinky rôznych insekticídov, repelentov a pod., využívajú kultúry bĺch (Aphaniptera) vyšľachtené v laboratóriu. Najvhodnejšie blchy na kultiváciu v laboratóriu sú blchy potkanie - Xenopsylla cheopis, Ceratophyllus fasciatus atď. V laboratóriu sa pestujú v špeciálnych rastlinách - sklenených nádobách, do ktorých sa umiestnia hostiteľské zvieratá; ako L. Vši sa tiež používajú ako nosiče patogénnych spirochét a rickettsie.

Za účelom rozvoja vedecké základyšľachtenie a informovaný výber pre špecifický výskum živočíšnych druhov v ZSSR, Anglicku, USA, Francúzsku, Nemecku, Japonsku a ďalších krajinách boli zorganizované vedecké centrá pre porovnávaciu biológiu života zvierat. V ZSSR je takýmto centrom Výskumné laboratórium experimentálnych biologických modelov Akadémie lekárskych vied ZSSR. Koordináciu práce v tejto oblasti vykonáva Medzinárodný výbor pre laboratórne zvieratá (IC LA), pričom s Krymom spolupracuje viac ako 40 krajín vrátane ZSSR. Vedecké konferencie sa konajú každoročne dňa rôzne problémy biológia L. a biol, modelovanie. O tejto problematike vychádza v zahraničí viac ako 30 periodík. Boli zorganizované medzinárodné a regionálne centrá: Medzinárodné referenčné centrum v zdravotníckej organizácii/M AIR pre poskytovanie zvierat so spontánnym vývojom nádorov (Holandsko, Amsterdam, Cancer Institute), Medzinárodné referenčné centrum FAO/WHO pre zvieracie mykoplazmy (Dánsko, Aarhus , lekársky f. t un-ta). Regionálne referenčné centrum pre opičie vírusy (USA, Texas, Oddelenie mikrobiológie a infekčných chorôb). Na ICLA sú dostupné referenčné centrá: pre histokompatibilitu myší (PNR), potkanov (Nemecko a USA), morčiat (USA), psov (Nemecko), vírusov hlodavcov (Československo, Anglicko, Nemecko, Japonsko), bezsrstých myší ( Dánsko), o patogénoch vtáčej malárie (Kanada) atď.

V publikáciách výsledkov výskumu získaných na L. sa podľa odporúčaní WHO vyžaduje uvádzať ich druh, líniu, vek, pohlavie, zdroj získania, podmienky chovu a kŕmenia.

Z doplnkových materiálov

pásavce(dodatok k rovnomennému článku publikovanému v 12. zväzku) - cicavce čeľade Dasypodidae Bonaparte, 1838 z radu Edentata.

V čeľade pásavcovitých je 9 rodov (21 druhov). Pásavce (syn. armadillos) sú najstaršie žijúce cicavce, bežné na juhu a Stredná Amerika, na juhu USA. Sú nočné a žijú v norách. Názov „pásovci“ sa spája s prítomnosťou ulity na chrbtovej ploche tela pozostávajúcej z jednotlivých kostených plátov pokrytých stratum corneum (takzvaná dermálna kostra, ktorá sa u iných cicavcov nenachádza). Dĺžka tela rôznych druhov pásavcov sa pohybuje od 12 do 100 cm, hmotnosť do 55 kg.

Pásavce sa využívajú v medicíne a biológii ako laboratórne zvieratá, najmä často pásavec deväťpásový - Dasypus novemcinctus Linnaeus, 1758 (obr. 1). Dĺžka tela dospelého pásavca deväťpásového je 40-55 cm, hmotnosť 3-7 kg; škrupina pozostáva z hrudného a panvového štítu, oddelených 9 pohyblivými pásmi. K biologickým znakom pásavcov deväťpásových patrí nízka teplota telo (32-35 °), dlhé trvanie oneskorenia v implantácii blastocysty - až 4,5 mesiaca. (celkové trvanie gravidity cca 9 mesiacov), rozmnožovanie štyroch monozygotných potomkov, schopnosť tolerovať dlhší nedostatok exogénneho kyslíka, znížené bunkové imunitné odpovede s výrazným humorálnym imunitné reakcie; predpokladaná dĺžka života je až 15 rokov.

U pásavcov rodu Dasypus sa z jedného oplodneného vajíčka (skutočná polyembryónia) vyvinie niekoľko embryí, čo z nich robí jedinečný prírodný model na štúdium mechanizmov tvorby dvojčiat, ako aj mnohých otázok dedičnosti a variability. Monozygotné dvojčatá pásavcov sú predmetom výskumu v oblasti transplantácií, ako aj imunologických, toxikolových a teratolových. výskumu. Farmakokinetika lieky v tele pásavcov je veľmi blízko tomu u ľudí. Napríklad sa zistilo, že talidomid spôsobuje fetálne deformity u pásavcov, čo nebolo pozorované v iných laboratóriách. zvierat.

Pásavce sa ľahko prispôsobia zajatiu. Najlepšie je chovať ich v malých (2-4 m2) ohradách s búdou na hniezdo a boxom na piesok. Ako podstielka sa zvyčajne používajú papierové zvyšky alebo mach. V prírode sa živia najmä hmyzom a červami, rastlinná potrava tvorí menej ako 10 % stravy. Vo viváriu ich strava obsahuje mleté ​​mäso, vajcia, mlieko, zeleninu a ovocie. Pásavce nie sú agresívne, takže starostlivosť a experimentálna práca s nimi nie je náročná. V zajatí sa pásavce deväťpásové nerozmnožujú (niektoré iné druhy, napr. pásavce štetinovité).

Bibliografia: Bashenina N.V. Návod na chov a chov nových druhov drobných hlodavcov v laboratórnej praxi, M., 1975, bibliogr.; 3 a-padnyuk I. P., Zapadnyuk V. I. a 3 a x a r a I E. A. Laboratórne zvieratá, Kyjev, 1974, bibliografia; Laboratórne metódyštúdie patogénnych prvokov, komp. D. N. Zasukhin a kol., M., 1957; Lane-Petter U. Poskytovanie vedeckého výskumu s laboratórnymi zvieratami, prekl. z angličtiny, M., 1964, bibliogr.; Medvedev N. N. Lineárne myši, L., 1964, bibliogr.: Sarkisov D. S. a P e m e z o in P. I. Reprodukcia ľudských chorôb v experimente, M., 1960, bibliogr.; Kokcídie, ed. od D. M. Hammond a. P. L. Long, s. 482, Baltimore - L., 1973; Flynn R. Parazity laboratórnych zvierat, Ames, 19 73; Príručka vedy o laboratórnych zvieratách, vyd. od E. S. Melby a. N. H. Altman, v. 1-3, Cleveland, 1974-1976; Kohler D., Madry M. u. Hein-e s k e H. Einfiihrung in die Ver such -stierkunde, Jena, 1978; Muller G.u. K i e s s i g R. Einfiihrung in die Versu-chstierkunde, Jena, 1977.; Sokolov V. E. Systematika cicavcov, s. 362, M., 1973; B e n i g s h k e K. Prečo pásavce? v knihe: Zvieracie modely pre biomedicínsky výskum, s. 45, Washington, 1968; Kirch-h e i m e r W. F. a. S t o r r s E. E. Pokusy ustanoviť pásavca (Dasypus novemcinctus Linn) ako model pre štúdium lepry, Int. J. Lepra, v. 39, s. 693, 1971; Merit t D. A. Edentate diets, I. Armadillos, Lab. Animal Sci., v. 23, str. 540, 1973; Peppier R. D. Reprodukčné parametre u pásavca deväťpásového, Anat. Rec., v. 193, s. 649, 1979; S t o r r s E. E. Pásavec deväťpásový, model pre biomedicínsky výskum, v knihe: Laboratórne zviera pri testovaní drog. vyd. autor: A. Spiegel, s. 31, Jena, 1973.

V. A. Dushkin; D. N. Zasukhin, L. M. Gordeeva; A. A. Juščenko.

LABORATÓRNE ZVIERATÁ

laboratórne zvieratá, zvieratá špeciálne chované pre lekárske, veterinárne a biologický výskum. K tradičným L. zh. zahŕňajú biele myši, biele potkany, rôzne druhy škrečkov, morčatá, králiky, mačky, psy; na netradičné bavlníkové potkany, hraboše, pieskomily, fretky, vačice, pásavce, opice, miniprasiatka, minisomáre, vačnatce, ryby, obojživelníky atď. Existuje skupina laboratórnych vtákov (kurčatá, holuby, prepelice atď.). .). Okrem L. zh., experimenty využívajú domáce zvieratá, najčastejšie ovce a ošípané. Výrobcovia imúnnych a diagnostických sér sú kone, somáre, barany a králiky. Pri pokusoch sa používajú aj mnohé bezstavovce (napríklad Drosophila), ale aj prvoky.

L. zh. sú riadené genetickými, environmentálnymi, morfologickými ukazovateľmi a zdravotným stavom. Sú chované v špeciálnych škôlkach alebo vo viváriach pri vedeckých inštitúciách. Tie nelineárne použité v experimente L. zh. musí mať vysoký stupeň heterozygotnosti. Čím menšia je uzavretá populácia chovaných nelineárnych zvierat, tým vyšší je stupeň nárastu príbuzenskej plemenitby medzi nimi. Na výskum sa čoraz častejšie využívajú homozygotné (inbredné, lineárne) zvieratá chované na báze blízkej príbuzenskej plemenitby (obr. 1). Známych je asi 670 kmeňov myší, 162 kmeňov potkanov, 16 kmeňov morčiat, 66 kmeňov škrečkov, 4 kmene pieskomilov a 7 kmeňov kurčiat. Každá línia má svoje vlastné charakteristiky v súbore génov, citlivosť na rôzne antigény a stresové faktory. Lineárne zvieratá sú systematicky monitorované na homozygotnosť. Pri chove L. zh. dostávajú 5 vrhov myší ročne, v priemere 7 myší v každom vrhu, respektíve u potkanov 5 a 7, u morčiat 3 a 5, u králikov 4 a 6. L. zh.(viváriá) musia byť vysoko hygienické, priestranné, s 10-násobnou výmenou vzduchu za hodinu a vlhkosťou vzduchu 5065 %. Na 1 m 2 plochy sa umiestni 65 dospelých alebo 240 mladých myší, 20 x 100 potkanov, 30 x 40 škrečkov, 15 x 18 morčiat, 3 x 4 králiky. V jednej klietke je dovolené obsahovať najviac 15 myší, 10 potkanov, 5 škrečkov a morčiat a 1 králika. Minimálne 50 % plochy vivária je vyčlenených pre technické miestnosti. Aby sa zabránilo výmene infekčných agens, nie je povolené chovať rôzne druhy. L. zh. v tej istej miestnosti alebo klietke. Myši, potkany, morčatá a škrečky sa chovajú predovšetkým v plastových kužeľovitých vaňach s vekom zo sieťoviny; králiky, psy, opice a vtáky v kovových klietkach. Tácky a klietky sú umiestnené na regáloch 1 x 6 poschodí (obr. 2), vybavené automatickými napájačkami a zásobníkovými napájačkami a pred použitím dôkladne umyté a dezinfikované fyzikálnymi alebo chemickými prostriedkami. Kúpele myší a potkanov sa týždenne nahrádzajú čistými. Odstránenie podstielky z nich a umývanie sa vykonáva v špeciálnej miestnosti vybavenej príslušnými prístrojmi resp práčky. Živia sa L. zh. prirodzené jedlo alebo briketované koncentráty podľa vyvinutých denných požiadaviek. Briketované krmivo sa umiestňuje do kŕmidiel na niekoľko dní. Slúži L. zh. vyškolený personál, ktorý sa podrobil lekárskej prehliadke.

L. zh. charakteristické pre mnohých infekčné choroby: salmonelóza, listerióza, stafylokokóza, kiahne, vírusová hnačka, lymfocytárna choriomeningitída, kokcidióza, helmintiáza, mykózy, infekcie prenášané kliešťami atď. Existujú latentné nosiče (najmä u potkanov) patogénnych baktérií a vírusov, latentné formy infekčných chorôb málo preštudovanej etiológie. Niektoré infekcie L. zh. sú zooantroponózy. Prevencia chorôb L. zh. je založená na dôslednom dodržiavaní sanitárnych a hygienických pravidiel, maximálnej dezinfekcii prostredia (miestností, vzduchu, zariadení, krmiva, podstielky a pod.). Výroba je organizovaná v niektorých krajinách L. zh. bez špecifických patogénnych faktorov, takzvané SPF zvieratá (pozri). Rastúca potreba L. zh. viedli k vzniku vedy o L. zh., ktorá zahŕňa genetiku, ekológiu, morfológiu, fyziológiu, patológiu a ďalšie sekcie, ako aj špeciálne laboratórne chovy zvierat. V mnohých krajinách (USA, UK, Nemecko, Francúzsko, ZSSR atď.) existujú zodpovedajúce vedecké centrá, ktorých prácu koordinuje Medzinárodný výbor pre vedu L. zh.(YCLAS).

Literatúra:
Bashenina N.V., Sprievodca chovom a chovom nových druhov malých hlodavcov v laboratórnej praxi. M., 1975;
Sanitárne pravidlá pre projektovanie, vybavenie a údržbu experimentálnych biologických kliník (vivárií), M., 1973.

Veterinárny encyklopedický slovník. - M.: "Sovietska encyklopédia". Šéfredaktor V.P. Šiškov. 1981 .

Pozrite sa, čo je "LABORATÓRNE ZVIERATÁ" v iných slovníkoch:

Laboratórne zvieratá- pozri Laboratórne zvieratá. (Zdroj: “Slovník pojmov mikrobiológie”) ... Mikrobiologický slovník

LABORATÓRNE ZVIERATÁ- LABORATÓRNE ZVIERATÁ, zvieratá slúžiace v laboratóriách rôzneho druhu na vedecké a praktické účely. L. zh. Mali by to byť tie, ktoré sa dajú ľahko získať, dobre udržiavať alebo chovať v laboratórnych podmienkach a navyše sú vhodné svojím vlastným spôsobom... ... Veľká lekárska encyklopédia

Laboratórne zvieratá- zvieratá používané vo vedeckom experimente alebo experimente, biologickom testovaní, vzdelávací proces, ako aj pri výrobe biologických prípravkov... Zdroj: VZOROVÝ ZÁKON O ZAOBCHÁDZANÍ SO ZVIERATMI (Spolu s POTENCIÁLNE NEBEZPEČNÝMI PLEMENAMI... ... Oficiálna terminológia

LABORATÓRNE ZVIERATÁ- vedecky používaný. účel v biológii, medicíne, veterinárnom lekárstve, s. x ve. V závislosti od úloh ved. Počas experimentu sa vyberú L., ktoré sú na tieto účely najvhodnejšie. Toto zohľadňuje nielen biol. vlastnosti formy, ktoré zaisťujú jednoduchosť a...

Laboratórne zvieratá- pokusné alebo pokusné zvieratá používané v laboratóriách na vedecké a praktické účely. L. zh. musí byť zdravý, mať nejaké špecifické vlastnosti (napríklad náchylnosť na skúmané infekcie,... ... Veľká sovietska encyklopédia

Modelové zvieratá- * madelny zver * zvieracie modelové laboratórne zvieratá, ktoré sa používajú na vedecký výskum, najmä lekársky výskum, za účelom štúdia dedičných ľudských chorôb. V n. vr. asi 250 sa používa v experimentálnej medicíne... genetika. encyklopedický slovník

ZVIERATÁ V EXPERIMENTOCH- využitie zvierat v biologickom, fyziologickom a lekárskom výskume, pri testoch toxicity rôznych produktov a liečiv, v rôznych vzdelávacie programy a tak ďalej. Zvieratá sú buď zabité a potom vyšetrené... ... Collierova encyklopédia

Laboratórne zvieratá- (experimentálne) rozmanité druhy zvierat používané v laboratóriách na vedecké a aplikované účely. V súčasnosti sa v experimentálnej medicíne používa asi 250 druhov stavovcov a bezstavovcov. Tradičné pre ...... Mikrobiologický slovník

ZVIERATÁ- (Animalia), kráľovstvo živých organizmov, jedna z najväčších divízií v organickej sústave. mier. Pravdepodobne vznikol cca. 1 Pred 1,5 miliardami rokov v mori vo forme buniek pripomínajúcich mikroskopické. achlorofylné améboidné bičíkovce. Pozemok F... Biologický encyklopedický slovník

Zvieratá vo vesmíre- Experimenty, ktoré mali určiť, či je možný let človeka do vesmíru, sa začali v ZSSR a USA v 40. a 50. rokoch 20. storočia. Prvou etapou biokozmického výskumu boli opakované lety psov, opíc a iných zvierat v raketách vo výške... Encyklopédia novinárov

knihy

• Laboratórne zvieratá. Učebnica, Stekolnikov Anatolij Aleksandrovič, Ščerbakov Grigorij Gavrilovič, Jašin Anatolij Viktorovič, Príručka obsahuje materiál o dôležitých odvetviach veterinárnej medicíny a vedy o zvieratách, ktoré sa týkajú údržby, kŕmenia a chorôb laboratórnych zvierat. Prezentované podľa všeobecne uznávaných metód, zodpovedajúcich… Kategória: Veterinárne Séria: Učebnice pre vysoké školy. Špeciálna literatúra Vydavateľ:

Publikácie k téme:

1. https://doi.org/10.30895/1991-2919-2018-8-4-207-217.

1. Makarova M.N., Rybakova A.V., Gushchin Ya.A., Shedko V.V., Muzhikyan A.A., Makarov V.G. Anatomické a fyziologické vlastnosti tráviaci trakt u ľudí a laboratórnych zvierat // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2016, č. 1. –S. 82-104.
2. Voronin S.E., Makarova M.N., Kryshen K.L., Alyakrinskaya A.A., Rybakova A.V. Fretky ako laboratórne zvieratá // Medzinárodný veterinárny bulletin. -2016, č. 2. –S. 103-116.
3. Rybakova A.V., Kovaleva M.A., Kalatanova A.V., Vanatiev G.V., Makarova M.N. Trpasličí ošípané ako objekt predklinického výskumu // International Veterinary Bulletin. -2016, č. 3. –S. 168-176.
4. Voronin S.E., Makarova M.N., Kryshen K.L., Alyakrinskaya A.A., Rybakova A.V. Fretky ako laboratórne zvieratá // Materiály IV medzinárodný kongres veterinárnych farmakológov a toxikológov „Účinné a bezpečné lieky vo veterinárnej medicíne“. Petrohrad, 2016. –S. 46-47.
5. Goryacheva M.A., Gushchin Ya.A., Kovaleva M.A., Makarova M.N. Možnosť použitia hydrochloridu lidokaínu a chloridu draselného na eutanáziu laboratórnych králikov // Materiály IV medzinárodného kongresu veterinárnych farmakológov a toxikológov „Účinné a bezpečné lieky vo veterinárnej medicíne“. Petrohrad, 2016. –S. 55-56.
6. Rybáková A.V., Makarová M.N. Správna údržba a starostlivosť o trpasličie ošípané na predklinický výskum // Materiály IV medzinárodného kongresu veterinárnych farmakológov a toxikológov „Účinné a bezpečné lieky vo veterinárnej medicíne“. Petrohrad, 2016. –S. 46-47.
7. Susoev A.I., Avdeeva O.I., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Skúsenosti s predklinickým štúdiom orálne dispergovateľných liečiv na škrečkoch // Abstrakty VII vedeckej a praktickej konferencie " Skutočné problémy posúdenie bezpečnosti lieku“. Elektronická príloha časopisu „Sechenovskiy Vestnik“. -2016, č. 2(24). -S. 34-35.
8. Kalatanova A.V., Avdeeva O.I., Makarova M.N., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Vanatiev G.V., Makarov V.G., Karlina M.V., Pozharitskaya O .N. Použitie lícnych vrecúšok škrečka počas predklinických štúdií liekov rozptýlených v ústnej dutine // Lekáreň. -2016, č. 7. -S. 50-55.
9. Rybakova A.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Využitie králikov v predklinickom výskume // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2016, č. 4. –S. 102-106.
10. Gaidai E.A., Makarova M.N. Použitie osmákov ako laboratórnych zvierat // Medzinárodný bulletin veterinárnej medicíny. -2017, č. 1. –S. 57-66.
11. Rybáková A.V., Makarová M.N. Zootechnické charakteristiky chovu trpasličích ošípaných v experimentálnych viváriach // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2017, č. 1. –S. 66-74.
12. Makarova M.N., Makarov V.G., Rybakova A.V., Zozulya O.K. Výživa laboratórnych zvierat. Základné diéty. Správa 1. // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2017, č. 2. –S. 91-105.
13. Makarova M.N., Makarov V.G., Shekunova E.V. Výber živočíšnych druhov na hodnotenie neurotoxicity farmakologických látok // International Veterinary Journal. -2017, č. 2. –S. 106-113.
14. Rybáková A.V., Makarová M.N. Využitie pieskomilov na biomedicínsky výskum // Medzinárodný veterinárny bulletin. -2017, č. 2. –S. 117-124.
15. Bondareva E.D., Rybakova A.V., Makarova M.N. Zootechnické charakteristiky chovu morčiat v experimentálnych viváriach // International Veterinary Bulletin. -2017, č. 3. –S. 108-115.
16. Gushchin Ya.A., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Porovnávacia anatómia horná časť gastrointestinálny trakt pokusných zvierat a ľudí // Medzinárodný bulletin veterinárnej medicíny. -2017, č. 3. –S. 116-129.
17. Makarova M.N., Makarov V.G. Výživa laboratórnych zvierat. Príznaky nedostatku a nadbytku bielkovín, tukov, sacharidov a vitamínov. Správa 2. // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2017, č. 3. –S. 129-138.
18. Makarova M.N., Rybakova A.V., Kildibekov K.Yu. Požiadavky na osvetlenie priestorov vivária a škôlky pre laboratórne zvieratá // Medzinárodný veterinárny bulletin. -2017, č. 3. –S. 138-147.
19. Rybáková A.V., Makarová M.N. Využitie škrečkov v biomedicínskom výskume // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2017, č. 3. –S. 148-157.
20. Makarova M.N., Makarov V.G., Rybakova A.V. Výživa laboratórnych zvierat. Príznaky nedostatku a prebytku minerálnych zlúčenín. Správa 3 // Medzinárodný bulletin veterinárnej medicíny. -2017, č. 4. –S. 110-116.
21. Muzhikyan A.A., Zaikin K.O., Gushchin Ya.A., Makarova M.N., Makarov V.G. Porovnávacia morfológia pečene a žlčníka ľudí a laboratórnych zvierat // International Veterinary Bulletin. -2017, č. 4. –S. 117-129.
22. Rybáková A.V., Makarová M.N. Využitie morčiat v biomedicínskom výskume // International Veterinary Journal. -2018, č. 1. –S. 132-137.
23. Gushchin Ya.A., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Porovnávacia morfológia dolnej časti gastrointestinálneho traktu pokusných zvierat a ľudí // Medzinárodný bulletin veterinárnej medicíny. -2018, č. 1. – S. 138-150.
24. Rudenko L., Kiseleva I., Krutikova E., Stepanova E., Rekstin A., Donina S., Pisareva M., Grigorieva E., Kryshen K., Muzhikyan A., Makarova M., Sparrow E.G., Marie-Paule G.T. Zdôvodnenie očkovania trivalentnými alebo štvorvalentnými živými atenuovanými vakcínami proti chrípke: Účinnosť ochrannej vakcíny na modeli fretky // PLOS ONE. – 2018. – S. 1-19.
25. Rybakova A.V., Makarova M.N., Kukharenko A.E., Vichare A.S., Rueffer F.-R. Existujúce požiadavky a prístupy k dávkovaniu liekov u laboratórnych zvierat // Bulletin Vedeckého centra pre expertízu na lieky lekárske využitie. – 2018, 8(4). – s. 207-217.