I terapijski medicinski postupak koji uključuje uvođenje neutralne otopine u bronhije i pluća, njegovo naknadno uklanjanje, proučavanje stanja dišni put te sastav ekstrahirane podloge.

U najjednostavnijim slučajevima, koristi se za uklanjanje viška sluzi u dišnim putovima i zatim proučavanje njihovog stanja. Predmet studije također može biti tekućina uklonjena iz pacijentovih pluća.

Tehnika

BAL se izvodi u lokalnoj anesteziji uvođenjem endoskopa i posebnih otopina kroz nosne dišne ​​putove (a rjeđe kroz usta). Bolesnikovo spontano disanje nije poremećeno. Istraživač postupno proučava stanje bronha i pluća, a zatim ispiranja: kod mikrobioloških, uzročnika tuberkuloze, može se otkriti pneumocistoza; u biokemijskim - promjene u sadržaju proteina, lipida, disproporcije u omjeru njihovih frakcija, kršenja aktivnosti enzima i njihovih inhibitora.

Ispiranje se uzima na prazan želudac, najmanje 21 sat nakon posljednjeg obroka.

Povezani Videi

Dijagnostička vrijednost

Od najveće važnosti za dijagnozu sarkoidoze (medijastinalni oblik bez radioloških promjena); diseminirana tuberkuloza; metastatski tumorski procesi; azbestoza; pneumocistoza, egzogeni alergijski i idiopatski fibrozni alveolitis; red rijetke bolesti. Može se uspješno koristiti za razjašnjenje dijagnoze i s ograničenim patoloških procesa u plućima (na primjer, maligni tumori, tuberkuloza), kao i u

Metoda istraživanja koja osigurava primanje staničnih elemenata, proteina i drugih tvari s površine najmanjih bronha i alveola punjenjem subsegmenta pluća izotoničnom otopinom, nakon čega slijedi njegova aspiracija. Dijagnostička subsegmentalna bronhoalveolarna lavaža obično se izvodi tijekom bronhofibroskopije u lokalnoj anesteziji nakon što se bronhofibroskop dovede do ušća subsegmentarnog bronha. Kroz kanal bronhofibroskopa u subsegmentalni bronh ukapa se 50-60 ml izotonične otopine. Tekućina koja dolazi iz lumena bronha, a to je bronhoalveolarni lavaž, aspirira se kroz kanal bronhofibroskopa u plastičnu čašicu. Instilacija i aspiracija se ponavljaju 2-3 puta. U aspiriranoj tekućini, očišćenoj od sluzi filtriranjem kroz gazu, ispituje se stanični i proteinski sastav, funkcionalna aktivnost alveolarnih makrofaga. Za proučavanje staničnog sastava bronhoalveolarni ispirak se centrifugira. Od sedimenta se rade razmazi koji se boje hematoksilin-eozinom ili po Romanovskom. Dijagnostička bronhoalveolarna lavaža češće se koristi za određivanje aktivnosti diseminiranih procesa u plućima. znak visoka aktivnost idiopatski fibrozirajući alveolitis je značajno povećanje broja neutrofila u bronhoalveolarnom lavažu, a kod sarkoidoze i egzogenog alergijskog alveolitisa - povećanje broja limfocita.

LAVAŽA BRONHOALVEOLARNI TERAP

Metoda liječenja plućnih bolesti koja se temelji na endobronhijalnoj primjeni velike količine izotonične otopine i ispiranju ugrušaka sluzi, proteina i drugih sadržaja. male bronhije i alveole. Terapeutska bronhoalveolarna lavaža može se izvesti kroz bronhoskop ili endotrahealni tubus s dva lumena. Zahvat se obično izvodi pod anestezijom. Umjetna ventilacija pluća u ovom slučaju provodi se metodom ubrizgavanja. Izotonična otopina se sekvencijalno ukapa u svaki lobarni ili segmentalni bronh kroz vođeni kateter i odmah aspirira zajedno s ispranim viskoznim sekretom i ugrušcima sluzi. Bronhoskopska tehnika se češće koristi kod bolesnika s bronhalnom astmom u statusu asthmaticus. Za ispiranje bronha koristi se 500-1500 ml izotonične otopine. Obično je moguće aspirirati oko 1/3 - 1/2 ubrizganog volumena tekućine. Indikacije za terapijsku bronhoalveolarnu lavažu u bolesnika s bronhijalnom astmom su rijetke, budući da kompleks drugih terapijskih mjera obično omogućuje zaustavljanje astmatičnog statusa.

Terapijska bronhoalveolarna lavaža kroz endotrahealni tubus s dva lumena izvodi se uz jednoplućnu umjetnu ventilaciju. U lumen endotrahealnog tubusa glavnog bronha uvodi se kateter kroz koji se ukapava i aspirira izotonična otopina. Istodobno se 1000-1500 ml otopine ubrizgava u pluća, 90-95% volumena ubrizgane tekućine se aspirira natrag. Postupak se ponavlja nekoliko puta. Ukupni volumen ubrizgane tekućine varira od 3-5 do 40 litara. Totalna bronhoalveolarna lavaža kroz endotrahealni tubus s dva lumena je najviše učinkovit način liječenje idiopatske alveolarne proteinoze.

Imeniku pulmologiji / Ed. N. V. Putova, G. B. Fedoseeva, A. G. Khomenko.- L .: Medicina

ozljeda pluća

Autori): S.K. Sobakina, P.V. Belokopytov, A.N. Lapshin, S.G. Atanasova, A.A. Ivanova
Organizacija(e): Inovativni veterinarski centar Moskovske veterinarske akademije
Časopis: №5 - 2018

UDK 619:616.24

Ključne riječi: bronhoalveolarna lavaža, bronhoalveole, bronhoskopija. Ključne riječi: bronhoalveolarna lavaža, bronhoalveole, bronhoskopija/

Kratice: BAL, bronhoalveolarna lavaža, surfaktant, surfaktant

Svrha rada: opisati postojeće tehnike izvođenja bronhoalveolarne lavaže

sažetak

bronhoalveolarni ispiranje(BAL) je minimalno invazivna tehnika koja se koristi u humanoj i veterinarskoj medicini za prikupljanje uzoraka iz donjih bronha i alveolarnih prostora.

Uzorkovanje BAL-a koristi se za proučavanje urođenog, staničnog i humoralnog staničnog odgovora zbog prisutnosti populacije stanica koje mogu olakšati dijagnozu različitih difuzne bolesti pluća.

Bronhoalveolarna lavaža (BAL) je minimalno invazivna tehnika koja se koristi u humanoj i veterinarskoj medicini za uzorkovanje bronha niže generacije i alveolarnog prostora.

Uzorkovanje BAL-a koristi se za proučavanje kongenitalnog, staničnog i humoralnog staničnog odgovora zbog prisutnosti stanične populacije uzrokovane prisutnošću populacije stanica koje mogu olakšati dijagnozu različitih difuznih plućnih bolesti.

Bronhoskopija i BAL mogu pružiti konačnu dijagnozu u slučajevima upalne bolesti dišnih putova, bronhiektazija, eozinofilne pneumonije, plućnih parazita, bakterijske pneumonije, gljivične pneumonije i neoplazije.

Indikacije za BAL su kašalj, nejasne ili nikakve promjene na rendgenogramu pluća, unatoč manifestaciji kliničkih znakova koji odgovaraju bolestima respiratornog trakta, neoplazme pluća, pneumonija, stridor, uklanjanje bronhijalne mukusne opstrukcije.

Kontraindikacije za BAL su dispneja (relativna kontraindikacija) i koagulopatija.

Postoji nekoliko kriterija koji jamče da otopina ulazi u donji respiratorni trakt (bronhoalveole): postotak ekstrahirane tekućine i prisutnost sloja surfaktanta.

Veći postotak obnovljene otopine (oko 50%) ukazuje na uzimanje uzorka iz donjeg dišnog trakta. Medijan dobivene otopine u pasa 42-48%, u mačaka 50-75%. Zauzvrat, ne veliki broj ekstrahirana tekućina (< 40%) говорит о том, что проба взята из крупных дыхательных путей .

Surfaktanti su fosfolipidi, proteini i ionska smjesa koju izlučuju pneumociti tipa II u epitelnu alveolarnu površinu kako bi se smanjila alveolarna površinska napetost. Budući da je plućni surfaktant u dišnim putevima prisutan samo u ovojnici alveolarnog epitela, prisutnost surfaktanta u BAL-u potvrđuje da je uzorak uzet iz alveola. U uzorcima BAL-a, surfaktant se pojavljuje kao pjena (slika 1).

Riža. 1. Prisutnost surfaktanata u uzorku BAL tekućine

Citološka analiza ostaje temelj procjene BAL-a. Normalno, kod zdrave životinje, BAL sadrži makrofage, limfocite, neutrofile, eozinofile i mastocite.

Uzorci BAL tekućine smatraju se neprihvatljivim ako su kontaminirani iz drugih područja dišnog trakta ili ne predstavljaju bronhoalveolarnu okolinu.

BAL tehnika

Osnovna BAL tehnika uključuje infuziju sterilne izotonične otopine u donje dišne ​​putove i aspiraciju te otopine. BAL se može izvesti naslijepo, uvođenjem katetera u pluća kroz endotrahealni tubus, uz pomoć bronhoskopa ili pod nadzorom fluoroskopije. BAL potpomognut bronhoskopijom omogućuje vizualizaciju donjih dišnih putova i usmjeravanje BAL-a na najzahvaćenije režnjeve pluća.

Provođenje BAL u pasa

Bolest donjeg dišnog sustava u pasa rezultira strukturnim promjenama u bronhima (npr. zadebljanje sluznice, povećana eksudacija) i promjenama u normalnoj staničnoj populaciji epitelne ovojnice.

BAL kod pasa izvodi se pod opća anestezija. Pacijentima koji se podvrgavaju BAL postupku preporučuje se potpora kisikom tijekom i neko vrijeme nakon postupka dok se saturacija ne vrati na normalu.

Tijekom "slijepog" BAL-a, sterilni uretralni kateter umetne se oralno u dušnik kroz sterilnu endotrahealnu cijev dok se nježno ne uglavi u distalni bronh, osjećajući otpor. Mora se paziti da se kateter ne gurne predaleko u dišni put i ne izazove jatrogeni pneumotoraks transbronhalnim oštećenjem plućnog tkiva. Nakon uvođenja od tri do pet puta, odmah se ubrizgava 25 ml ili 5 ml/kg (prema različitim izvorima) tople (37 C) sterilne izotonične otopine, provodi se aspiracija (transtrahealna lavaža) i zatim 2-3 ručna udisaja. izvedena s Ambu torbom. Nakon toga se gravitacijski ili uz pomoć aspiratora usisava ostatak tekućine. Podizanje stražnjih četvrtina životinje ponekad može povećati količinu izvučene tekućine (slika 2).

Riža. 2. Podizanje leđa životinje kako bi se povećala količina izvučene tekućine

Ova BAL metoda često omogućuje ispiranje kaudalnih režnjeva pluća (slika 3).

Riža. 3. Skup alata za provođenje BAL-a

Tijekom bronhoskopskog BAL-a, bronhoskop se umeće oralno u dušnik. Prije izvođenja BAL-a radi se kompletan bronhoskopski pregled. Nakon što se identificira mjesto ispiranja, bronhoskop se pažljivo uglavi u subsegmentalni bronh. Čvrsto prianjanje bronhoskopa na istraženi bronh osigurava maksimalnu ekstrakciju ubrizgane otopine. Kada se postigne čvrsto prianjanje uz bronh, topla (37 °C) izotonična otopina ubrizgava se kroz biopsijski kanal bronhoskopa. Preporuča se uvođenje tople izotonične tekućine. slana otopina kako bi se smanjio rizik od bronhospazma. Od 1 do 4 puta ubrizgava se ukupno 5 do 50 ml otopine (1-2 ml/kg). Studije su otkrile da korištenje volumena u smislu ml/kg težine rezultira većim volumenom obnovljene tekućine. Unošenje male količine otopine možda neće biti dovoljno da dopre do alveola. Nakon što je fiziološka otopina ubrizgana u respiratorni trakt, dolazi do trenutne aspiracije štrcaljkom ili aspiratorom spojenim u seriju s aspiracijskim ventilom bronhoskopa ili uretralnim kateterom kroz sterilnu cijev za prikupljanje. Nedostatak otopine pri aspiraciji može biti posljedica kolapsa dišnih putova i potrebno je djelovati manje sile na štrcaljku za aspiraciju. Ako negativni tlak još uvijek prisutan, bronhoskop se može uvući nekoliko milimetara, ali u tom slučaju volumen dobivene tekućine može biti manji. Preporuča se prikupljanje BAL uzoraka iz nekoliko režnjeva pluća, čak i ako difuzna lezija pluća. Bolesnici s žarišnim plućnim lezijama (aspiracijska pneumonija) trebaju izvoditi BAL samo iz zahvaćenog režnja pluća. Ako se dobije nedovoljan volumen otopine ili ako nema pjene, postupak treba ponoviti.

Istraživanje humane medicine pokazalo je da bronhoskopski potpomognuti BAL daje uzorke veće dijagnostičke kvalitete i pouzdanosti od nevođene tehnike. Ali značajka i posebna pažnja Po našem mišljenju, poteškoća u pripremi instrumentalnog kanala za pregled kako bi se isključila kontaminacija instrumentalnog kanala uzoraka BAL-a florom instrumentalnog kanala bronhoskopa u veterinarskoj medicini predstavlja, po našem mišljenju, izazov.

Provođenje BAL-a u mačaka

Riža. 4. Provođenje BAL-a za mačku

Manja veličina respiratornog trakta kod mačaka otežava bronhoskopiju. To je povezano s većim brojem komplikacija u usporedbi s drugim vrstama životinja. Na primjer, u retrospektivnom pregledu fleksibilne bronhoskopije i BAL-a kod mačaka u veterinarskom centru, pronađeno je 38% komplikacija u usporedbi s 5% kod ljudi. Većina (24%) komplikacija u ovom pregledu smatra se umjerenom (npr. desaturacija hemoglobina). Preporučuje se prethodna primjena inhalacijskih bronhodilatatora (salbutamol, ipratropijev bromid) prije BAL-a u mačaka. BAL kod mačaka izvodi se slično kao BAL kod pasa. Volumen ubrizgane otopine varira do 20 ml ili 3-5 ml / kg, najčešće su dovoljne 2-3 injekcije (slika 4).

Provedene studije uspoređujući 2 metode aspiracije: ručnu i sukcionu, pokazale su da aspiracija sukcijom daje više aspirirane tekućine i bolje uzorke, ali to ne utječe na konačne rezultate BAL analize.

BAL uz pomoć fluoroskopije

U retrospektivnoj studiji, BAL uz pomoć fluoroskopije proveden je na mačkama. Intubiranom pacijentu uvedena je hidrofilna žica vodilica od 0,035" kroz koju je umetnut kateter od crvene gume 8Fr. BAL je proveden dvostrukom injekcijom 5 ml sterilne fiziološke otopine, koja je aspirirana štrcaljkom od 20 ml. Kao rezultat BAL-a uz pomoć fluoroskopije, neuspješno je završila samo kateterizacija kranijalnog desnog režnja pluća, kateterizacija preostalih režnja pluća uspješno je provedena, rezultati citološke analize zadovoljavaju sve potrebne zahtjeve. Stoga BAL uz pomoć fluoroskopije može biti praktična, pouzdana i sigurna tehnika za uzimanje uzoraka iz svih režnjeva pluća osim iz desnog režnja lubanje (Slike 5, 6).

Riža. 5. Izvođenje BAL-a uz pomoć X-zraka na psu

Riža. 6. Fluoroskopsko snimanje tijekom BAL-a

Nuspojave i komplikacije nakon BAL-a

Manje komplikacije mogu uključivati ​​krvarenje, dugotrajnu hipoksemiju, bronhospazam i vazovagalnu sinkopu. Glavne komplikacije uključuju upalu pluća, aritmije, pneumotoraks, pneumomedijastinum, zatajenje disanja i srčani zastoj.

Svim je pacijentima potrebna dodatna oksigenacija nakon BAL-a. Ako se primijeti cijanoza ili smanjenje saturacije, potrebna je dodatna oksigenacija. Ako pacijentu nije dovoljan dodatni kisik, treba razmotriti druge uzroke poput bronhospazma ili pneumotoraksa. Također, nakon bilo kojeg postupka ispiranja može doći do privremenog pogoršanja respiratorne funkcije ili kašlja.

Prijavljeni slučajevi spontani pneumotoraks. Rijetke, ali komplikacije nakon BAL-a mogu biti fatalne, takvi su pacijenti ili imali sindrom respiratornog distresa prije BAL-a ili je bilo nemoguće uspostaviti odgovarajuću oksigenaciju i ventilaciju nakon postupka.

Zabilježena je stopa smrtnosti/eutanazije od 2% (2/101). U ovoj studiji smrtnost je bila povezana sa sindromom respiratornog distresa prije BAL-a. Ovi nalazi dovode do zaključka da je prethodna dispneja relativna kontraindikacija za BAL. Također je prijavljen značajan bronhospazam nakon BAL-a u pasa s eozinofilnom bolešću dišnih putova, koji su liječeni bronhodilatatorima i oksigenacijom. Retrospektivni pregled fleksibilne BAL bronhoskopije u mačaka objavio je da je 6% mačaka zahtijevalo noćnu hospitalizaciju i terapiju kisikom, 3% razvilo pneumotoraks, a 6% je umrlo ili eutanazirano zbog neuspjeha ponovnog uspostavljanja ventilacije nakon postupka. Značajno manje komplikacija zabilježeno je kod mačaka koje su prethodno primale terbutalin 0,01 mg/kg s.c. 12-24 sata. prije bronhoskopije i BAL-a (8%) u usporedbi s mačkama koje nisu primile ništa prije (40%). Predtretman inhalacijskim bronhodilatatorima (salbutamol, ipratropijev bromid) prije BAL-a sprječava bronhokonstrikciju u mačaka osjetljivih na alergene. Stoga se trenutno preporučuje predliječenje bronhodilatatorima prije bronhoskopije u mačaka.

BAL analiza tekućine

Za najbolje rezultate, BAL uzorke treba obraditi unutar jednog sata od uzimanja. Pri procjeni citologije, uzorke lavage iz svakog režnja treba procijeniti zasebno. U jednoj studiji, 37% pasa imalo je mješovite rezultate kada su procijenjeni uzorci iz različitih plućnih režnjeva.

U svakom uzorku mora se izbrojati najmanje 200 stanica. Najčešći tip stanica izoliran u BAL-u je alveolarni makrofag. BAL tekućina kod mačaka obično sadrži više eozinofila nego kod drugih vrsta.

Većina pasa sa bakterijske infekcije imaju neutrofilnu upalu. Kod pasa sa kronični bronhitis najčešće postoji mješovita upalna ili neutrofilna upala. U pasa s eozinofilnom bronhopneumonijom opaža se povećanje broja eozinofila (od 20% do 450%). Također, mješovita upala često se nalazi u prisutnosti gljivičnih infekcija.

Neutrofilna upala sa ili bez intracelularnih bakterija može se vidjeti u mačaka s upalom pluća. Mačke s bronhitisom ili astmom često imaju povišene eozinofile. Međutim, neutrofilna i eozinofilna upala nisu patognomonične za infektivni ili imunološki proces, budući da se i eozinofilna i neutrofilna upala također mogu uočiti u neoplaziji.

Teško je dijagnosticirati neoplazije iz BAL uzoraka. Sve stanice treba ispitati na kriterije malignosti. U maloj studiji, mačke s histološki dijagnosticiranim karcinomom pokazale su neutrofilnu upalu, ali u citologiji BAL tekućine nisu pronađeni dokazi raka. Drugo istraživanje pokazalo je značajno preklapanje u diferencijalnom broju stanica kod mačaka s upalom pluća, bronhitisom i neoplazijom. Iz tih razloga, broj BAL stanica treba tumačiti zajedno s kliničkim znakovima te radiografskim i bronhoskopskim nalazima.

Normalno, dišni putovi nisu sterilni, pa kvantifikacija bakterijskih stanica može pomoći u razlikovanju kontaminacije od stvarne infekcije dišnog trakta. Sadržaj veći od 1,7 * 10 3 jedinica koje stvaraju kolonije po mililitru karakterističan je za prisutnost bakterijska bronhopneumonija. Sve dobivene uzorke treba analizirati na prisutnost aeroba i mikoplazme. Testiranje na prisutnost gljivica treba provoditi u endemskim područjima.

Prijavljena je uporaba PCR-a u dijagnostici vrsta Mycoplasma, Bordetella bronchiseptica I Toxoplasma gondii. Rezultate PCR-a treba tumačiti s oprezom zbog činjenice da Mycoplasma i Bartonella mogu normalno biti prisutne u orofarinksu pasa i mačaka. Stoga pozitivni rezultati ne jamče da ti patogeni uzrokuju struju Klinički znakovi kod pacijenta. Osim toga, negativan rezultat ne isključuje prisutnost infekcije. Iako mikroorganizam može biti prisutan u respiratornom traktu, možda ga neće biti u malom uzorku korištenom za ekstrakciju DNK, što rezultira lažno negativnim rezultatom.

Stol 1.

Citologija nakon BAL-a

.

Riža. Slika 7. Segmentirani neutrofili i alveolarni 8. Trepetavičasti respiratorni epitel

makrofagi na pozadini sluzi

Riža. Slika 9. Segmentirani neutrofili na pozadini 10. Konglomerat epitelnih stanica

eozinofilni

ružičasta međutvar – sluz

zaključke

Dijagnostičku vrijednost ovog postupka ne treba precijeniti jer pacijenti s respiratornim bolestima imaju povećane rizike povezane s anestezijom i respiratornim zahvatima. Rizik postupka uvijek treba procijeniti u smislu očekivanih rezultata. Također, studije pokazuju da BAL, uz bronhoskopiju, ima manje komplikacija i veću dijagnostičku vrijednost dobivenih uzoraka. Odabir metodologije može se izvršiti i na temelju materijalne baze veterinarske ustanove, ali u svakom slučaju provođenje BAL-a treba biti tehnički regulirano i provoditi ga educirani stručnjaci.

Književnost

1. Carol R. Reinero, DVM, PhD, Diploma ACVIM (interna medicina), Sveučilište Missouri–Columbia. Prikupljanje tekućine bronhoalveolarne lavaže slijepom tehnikom.

2. Standardizacija tehnika aspiracije bronhoalveolarne lavaže za optimizaciju dijagnostičkog prinosa uzoraka donjeg respiratornog trakta pasa od strane Katharine Sarah Woods.

3. Mills PC, Lister AL. Korištenje razrjeđenja uree za standardizaciju staničnih i nestaničnih komponenti tekućina pleuralne i bronhoalveolarne lavage (BAL) u mačke. J. Fel. Med. Surg. 2006.; 8:105-110. Mordelet-Dambrine M., Arnoux.

4. Melamies MA, Jarvinen AK, Seppala KM, Rita HJ, Rajamaki MM. Usporedba rezultata za tehnike prilagođene težini i fiksne količine bronhoalveolarne lavage u zdravih Biglova. Am. J. Vet. Res. 72:694-698, 2011.

5. Chalker VJ, Owen WM, Paterson C, et al. Mikoplazme povezane sa zaraznim respiratornim bolestima pasa. Microbiology 150:3491-3497, 2004.

6 Creevy K.E. Procjena dišnih putova i fleksibilni endoskopski postupci kod pasa i mačaka: laringoskopija, transtrahealno ispiranje, traheobronhoskopija i bronhoalveolarna lavaža. Vet Clin North Am Small Anim Pract 2009; 39: 869-880

7. Spector D, Wheat J, Beamis D, Rohrbach B, Taboada T, Legendre AM. Testiranje antigena za dijagnozu blastomikoze. J Vet Intern Med 20:711-712, 2006.

8. Egberink H, Addie D, Belak S, et al. Infekcije Bordetella bronchiseptica u mačaka. J Fel Med Surg 11:610-614, 2009.

9. Anfray P, Bonetti C, Fabbrini F, Magnino S, Mancianti F, Abramo F. ​​Mačja kožna toksoplazmoza: prikaz slučaja. Vet Dermat 16:131-136, 2005.

10. Američko torakalno društvo. Smjernice za bronhoalveolarnu lavažu. 8. srpnja 2012

11. Hawkins EC, Berry Cr. Upotreba modificirane želučane sonde za bronhoalveolarnu lavažu kod pasa. J Am Vet Med Assoc 1999; 215(11):1635-1638.

12. Hawkins EC, Davidson MG, Meuten DJ, et al. Citološka identifikacija Toxoplasma gondii u tekućini bronhoalveolarnog ispiranja eksperimentalno zaraženih mačaka. J Am Vet Med Assoc 1997; 210(5):648-650.

13. Hawkins EC, DeNicola DB. Citološka analiza uzoraka ispiranja dušnika i bronhoalveolarne tekućine u dijagnostici gljivičnih infekcija u pasa. J Am Vet Med Assoc 1990a; 197(1):79-83.

14. Hawkins EC, DeNicola DB, Kuehn NF. Bronhoalveolarna lavaža u evaluaciji plućne bolesti u pasa i mačaka: stanje tehnike. J Vet Intern Med 1990b; 4: 267-274.

15. Hawkins EC, DeNicola DB, Plier ML. Citološka analiza tekućine bronhoalveolarne lavaže u dijagnostici spontane bolesti dišnog sustava u pasa: retrospektivna studija. J Vet Intern Med 1995; 9: 386-392.

16. Johnson LR, Drazenovich TL. Fleksibilna bronhoskopija i bronhoalveolarna lavaža u 68 mačaka (2001.-2006.). J Vet Int MEd 2007; 21:219-225.

17. Silverstein DC, Drobratz KJ. Klinička procjena respiratornog trakta. U: Ettinger SJ, Feldman EC, ur. Udžbenik veterinarske interne medicine. 7. izd. Saunders Elsevier: St. Louis, 2010:1055–1066.

18. Yoneda KY, Morrissey BM. Tehnika fleksibilne bronhoskopije odraslih: 1. dio. J Respir Dis 2008; 29(11):423-428.

19. Hawkins EC. bronhoalveolarni ispiranje. U: King LG, ur. Udžbenik respiratornih bolesti pasa i mačaka. Saunders Elsevier: St. Louis, 2004:118-128.

20. Cooper ES, Schober KE, Drost WT. Teška bronhokonstrikcija nakon bronhoalveolarne lavaže u psa s eozinofilnom bolešću dišnih putova. J Am Vet Med Assoc 2005; 227(8):1257-1262.

21. Johnson LR, Queen EV, Vernau W, et al. Mikrobiološka i citološka procjena bronhoalveolarne tekućine ispiranja pasa s infekcijom donjeg dišnog sustava: 105 slučajeva (2001.-2011.). J Vet Intern Med 2013;27(2):259-267.

22. Kirschvink N, Leemans J, Delvaux F, et al. Bronhodilatatori u bronhoskopiji inducirali su ograničenje protoka zraka u mačaka osjetljivih na alergene. J Vet Intern Med 2005;19:161-167.

23. Padrid P.A. Laringoskopija i traheobronhoskopija pasa i mačaka. U: Tams TR, Rawlings CA, ur. Endoskopija malih životinja. Sv. Louis, MI: Elsevier Mosby, 2011:331-359.

24. Fluoroskopski vođena bronhoalveolarna lavaža (F-Bal) za uzorkovanje donjih dišnih putova mačaka Hooi KS1, Defarges A1, Nykamp S1, Weese S2, Bienzle D2. Odjeli za kliničke studije1 i patobiologiju2, Sveučilište Guelph, ON.

Uz umjerene i teške stupnjeve opstruktivnih poremećaja ventilacije, nije dovoljno koristiti bronhodilatatore i lijekove koji potiču odbacivanje mukoznih čepova.U nekim slučajevima prikazano je mehaničko čišćenje bronhijalnog stabla, ciljano vizualno ispiranje bronha.

Svaki segmentni bronh moguće je isprati samo bronhoskopijom. U lokalnoj anesteziji to nije izvedivo, a za provedbu bronhoskopije u anesteziji konvencionalne metode ventilacije nisu prikladne. Potrebna nam je metoda mehaničke ventilacije koja će ne samo spriječiti daljnji porast hipoksije i hiperkapnije, već i omogućiti optimalnu izmjenu plinova, unatoč istovremenoj provedbi endobronhalnih intervencija kroz lumen bronhoskopa. Ovu metodu ventilacije predložio je Sanders (1967). Upravo primjenom ove metode ubrizgavanja moguće je dosljedno temeljito pranje svih segmenata. U slučaju kada se koristi dvolumenska Carlensova cijev, takvi uvjeti nisu ostvarivi, pranje se provodi naslijepo i nekontrolirano.

Pravo uvođenje ispiranja bronha u kliniku povezano je s prijedlogom Thompsona i Pryora (1964., 1966.). Kako bi se deblokirali mali i srednji bronhi, Triton je u uvjetima bronhoskopije pod anestezijom kateterizirao segmentalne bronhe redom ubrizgavajući u njih 50 ml tekućine pod pritiskom i odmah je isisavao kroz isti kateter. Injekcija tekućine omogućila je mehaničko uklanjanje ugrušaka iz bronha. Cijeli lavaž je zahtijevao 800-1500 ml, trećina se mogla usisati, a ostatak se apsorbirao. Thompson je koristio fiziološku otopinu, dodao natrijev bikarbonat, proteolitičke enzime i deterdžente za normalizaciju pH.

Najteže stanje bolesnika, prema Thompsonu i suradnicima (1966), nije kontraindikacija za ispiranje bronha, budući da se najbolji rezultati postižu kod gotovo umirućih pacijenata. Vlastita iskustva s primjenom modifikacije bronhalnog ispiranja u potpunosti potvrđuju pozitivnu ocjenu ovakvog bronhološkog pomagala. Međutim, rutinska tehnika bronhoskopije, čak ni s respiratornim bronhoskopom, ne daje pouzdane uvjete. Glavni nedostatak je što segmentalno bronhijalno ispiranje zahtijeva ponovnu depresurizaciju dišnog kruga zbog otvaranja prozora za gledanje bronhoskopa. Uz astmatični status i hipoksičnu komu, bilo kakve pauze u mehaničkoj ventilaciji su neprihvatljive. Ventilirajte pacijente tijekom status asthmaticus, stvaranje visokotlačni na udisaj s respiratornim bronhoskopom, teško je.

Pretraga provedena u našoj klinici omogućila je odabir varijante koja u potpunosti zadržava sve prednosti izvornog Thompsonovog prijedloga, ali u uvjetima kontinuirane i učinkovite mehaničke ventilacije, uključujući razdoblja produljene depresurizacije sustava pacijent-bronhoskop-uređaj.

Pri provedbi ove metode zadatak je izbjeći curenje plina kroz otvoreni prozor za gledanje bronhoskopa. Sandersov prijedlog uključivao je stvaranje usmjerenog mlaza kisika u ovojnici bronhoskopa (slika 11). Da bi se to postiglo, kisik se upuhuje kroz injekcijsku iglu ugrađenu u proksimalni dio cijevi. Otpor tanke igle je visok, stoga je za stvaranje dovoljno snažnog mlaza kisika koji može podići intratrahealni tlak za nekoliko desetaka centimetara vodenog stupca potrebno stvoriti tlak od nekoliko atmosfera na ulazu u injekciju. igla. Cijev bronhoskopa djeluje kao difuzor. Upuhani plinski mlaz ne samo da ide prema plućima, već i nosi zrak (injekcija), stoga tijekom udisaja ne samo da nema istjecanja kisika, već se, naprotiv, atmosferski zrak usisava i razrjeđuje respiratornu smjesu. . Dotok kisika se povremeno prekida i tada dolazi do pasivnog izdisaja u atmosferu.

Riža. 11. Smjer protoka plina tijekom injekcijske metode umjetne ventilacije pluća tijekom bronhoskopije: 1- opskrba kisikom kroz injekcijsku iglu cijevi bronhoskopske cijevi; 2-usis zraka iz atmosfere; bronhoskop s 3 cijevi; 4-glotis; 5-dušnik.

Zajedno s inženjerom L. B. Taflinsky dizajnirali smo poseban injekcijski bronhoskop i automatski injekcijski respirator s promjenom faza tijekom vremena. Korištena modificirana metoda injekcijske ventilacije predviđa obvezno mjerenje intratrahealnog tlaka, kao i blokadu za sprječavanje pretjeranog povećanja tlaka, odvojeno podešavanje trajanja udisaja i izdisaja, zaštitu lica bronhologa od ulaska zraka koji izdahne pacijent. .

IVL metodom ubrizgavanja provodi se "ručno" zatvaranjem kanala za dovod kisika, za koji se stisne crijevo za kisik ili se koristi pneumatski tumbler ugrađen u crijevo - prekidač ili poseban respirator.

Kada se koristi ova metoda, endoskopske manipulacije praktički ne utječu na parametre mehaničke ventilacije, a bronholog dobiva priliku kontinuirano raditi sa stalno otvorenim prozorom bronhoskopa. Tijekom udisaja intratrahealni tlak može se povećati na 15-40 cm vode. Art., iako je moguće dobiti veći tlak. Što je bolesnikovo stanje teže zbog statusa asthmaticus, to je veći tlak potrebno stvoriti tijekom inspirija. Frekvencija disanja-10-15 u 1 min. Potrebno je regulirati sadržaj kisika u inhaliranoj smjesi: kod izrazitog stupnja ventilacijsko-opstruktivnih poremećaja potrebna je ventilacija čistim ovlaženim kisikom, kod ostalih bolesnika sadržaj kisika u inhaliranoj smjesi može se smanjiti na 50-70% (Sl. 12).

Riža. 12. Plinovi u krvi tijekom ispiranja bronha u uvjetima injekcijske ventilacije. A - početni; B - prije intubacije i tijekom ventilacije čistim O 2; B - nakon 5 min. IVL maska; D - nakon 10 min. IVL; D - nakon 15 minuta inženjer IVL; E - odmah nakon završetka bronhoskopije i ekstubacije

Tijekom injekcijske ventilacije, pO2 arterijske krvi odmah se značajno povećava, a hiperkapnija se smanjuje. U trenutku umetanja bronhoskopa često postoji arterijska hipertenzija, ali tijekom bronhoskopije zabilježena je tendencija normalizacije krvni tlak, prethodno postojeća srčana aritmija često nestaje.

Bronhoskopiju i ispiranje treba provesti pod intravenskom barbiturnom anestezijom s relaksansima, ponekad dodatno uvodeći seduksen. Ako je bronhospastična komponenta izražena, a prethodno udisanje halotana olakšava stanje bolesnika, tada se kod takvih bolesnika za uvodna anestezija a održavanje treba koristiti halotan. Ekstubaciju treba provesti nakon što se pojave početni znakovi respiratornog oporavka. Za ispiranje bronha dovoljno je 15-25 minuta.

Bronhe treba ispirati toplim fiziološka otopina ili otopina furagina-K pomiješana s fiziološkom otopinom. Obično se konzumira do 800 ml tekućine; može se isisati otprilike trećina tekućine. U nekim slučajevima tekućina se tako brzo apsorbira da je njezin obrnuti tok zanemariv.

Vodom za pranje u pravilu se uklanja veliki broj malih kobasičastih bijelih ugrušaka u obliku bronhalnih odljeva (slika 13). Oslobađanje tekućine iz pluća ponekad se nastavlja tijekom prvih dana nakon pranja, olakšavajući kašalj i iscjedak sputuma.

Riža. 13. Odljevci bronha isprani tijekom endobronhalnog bronhoskopskog ispiranja

Za ublažavanje statusa asthmaticus potrebno je jedno, rjeđe dva ispiranja. Najveće olakšanje pacijenti primjećuju nekoliko sati nakon završetka intervencije.

Za fiksiranje pozitivni rezultati liječenje nakon različitih razdoblja treba ponoviti ispiranje. Korištenje ispiranja bronha omogućuje smanjenje doze hormona kod pacijenata koji su navikli na njih, au nekim pacijentima napuštanje uporabe steroida. Također je zabilježeno smanjenje otpornosti na bronhodilatatore.

U liječenju bolesnika s teškim oblicima bronhijalne astme i statusom asthmaticus trenutno je neizostavna bronhijalna lavaža, točnije segmentalna lavaža, namjensko ispiranje začepljenih malih bronha tekućinom pod pritiskom, a ne „ispiranje nasumično“.

Lat. lavo pranje, ispiranje)

bronhoskopska metoda dobivanja ispiranja s površine najmanjih bronha (bronhiola) i alveolarne strukture pluća za citološke, mikrobiološke, biokemijske i imunološke studije. Lb, koji je dijagnostički postupak, treba razlikovati od ispiranja bronha - terapeutskog ispiranja velikih i malih bronha u raznim bolestima (na primjer, s gnojnim bronhitisom, alveolarnom proteinozom, Bronhijalna astma).

Proučavanje bronhoalveolarnog ispiranja citološkim i imunološkim metodama omogućuje vam utvrđivanje određenih promjena u održivosti stanica, njihovoj funkcionalnoj aktivnosti i odnosu između pojedinih staničnih elemenata, što omogućuje procjenu etiologije i aktivnosti patološkog procesa u plućima. Kod bolesti karakteriziranih stvaranjem specifičnih stanica i tijela (npr. maligna pluća, hemosideroza, X), sadržaj informacija citološkog pregleda bronhoalveolarnih ispiranja može se izjednačiti sa sadržajem informacija biopsije. Na mikrobiološka istraživanja bronhoalveolarni ispiranje može identificirati patogene tuberkuloze, pneumocistoze; u biokemijskom - ovisno o prirodi bolesti i njegovoj aktivnosti, promjenama u sadržaju proteina, lipida, disproporcijama u omjeru njihovih frakcija, kršenju aktivnosti enzima i njihovih inhibitora. Posebno je informativna kompleksna primjena navedenih metoda za proučavanje bronhoalveolarnih ispiranja.

Najveća vrijednost L.b. ima za dijagnozu diseminiranih procesa u plućima; sarkoidoza (u medijastinalnom obliku sarkoidoze bez radioloških promjena i pluća, proučavanje bronhoalveolarne lavage omogućuje u mnogim slučajevima otkrivanje plućnog tkiva); diseminirana tuberkuloza; metastatski tumorski procesi; azbestoza; pneumocistoza, egzogeni alergijski i idiopatski fibrozni alveolitis; rijetke bolesti (histiocitoza X, idiopatska hemosideroza, alveolarna mikrolitijaza, alveolarna proteinoza). L. b. može se uspješno koristiti za razjašnjenje dijagnoze i s ograničenim patološkim procesima u plućima (na primjer, maligni tumori, tuberkuloza), kao i s kroničnim bronhitisom i bronhijalnom astmom.

Budući da je L.b. izvodi se tijekom bronhoskopije (bronhoskopije) , treba uzeti u obzir za to. Rizik studije ne bi trebao premašiti njegovu potrebu za razjašnjavanjem dijagnoze. Zapravo L.b. kontraindiciran sa značajnom količinom gnojnog sadržaja u bronhijalno stablo utvrđuje se klinički i endoskopski.

Bronhoalveolarna lavaža izvodi se i rigidnim bronhoskopom u općoj anesteziji i fibrobronhoskopijom u lokalnoj anesteziji, nakon vizualnog pregleda dušnika i bronha. Tekućina za pranje se ubrizgava u odabrani segment uz njegovu naknadnu vakuumsku aspiraciju. Tehnički je praktičnije infundirati tekućinu u III (pacijent ležeći) i IV, V i IX segment (pacijent sjedeći).

Prilikom provođenja L.b. pomoću rigidnog bronhoskopa riža. 1 ) kroz nju se umetne metalna vodilica (pod kutom od 20 ° ili 45 °, ovisno o odabranom segmentnom bronhu) i kroz nju - radiokontaktna br. 7 ili br. 8, pomičući ga naprijed za 3-4 cm do bronhija 5-6. reda ili, kako bi se reklo, uklinjavajući ih. Položaj katetera može se pratiti na ekranu rendgenskog televizora. Kroz kateter do odabranog segment pluća pomoću štrcaljke u obrocima od 20 ml uliti izotoničnu otopinu natrijevog klorida s pH 7,2-7,4 i temperaturom od 38-40 °.

Volumen tekućine za ispiranje ovisi o količini bronhoalveolarnog ispiranja potrebnog za planirane studije. Primijeni manje od 20 ml otopina za pranje je nepraktična, jer istovremeno se ne postiže odgovarajuće ispiranje iz bronhoalveolarnih struktura. Obično, ukupno otopina je 100-200 ml. Nakon unošenja svakog dijela otopine, provodi se vakuumska aspiracija ispiranja pomoću električnog uređaja za usisavanje u sterilnu graduiranu posudu. Kod fibrobronhoskopije se tekućina za ispiranje primjenjuje kroz fibrobronhoskop instaliran na ušću odabranog segmentnog bronha u dozama od 50 ml; aspiracija se provodi kroz biopsijski kanal fibrobronhoskopa.

Bronhoalveolarna lavaža je atraumatska, dobro se podnosi i tijekom njezine provedbe nisu zabilježene komplikacije opasne po život. Otprilike 19% bolesnika nakon L.b. promatrano tijekom dana. U rijetkim slučajevima razvija se aspiracija.

Dobiveni bronhoalveolarni lavaž mora se brzo dostaviti u odgovarajuće laboratorije na istraživanje. Ako to nije moguće, ispiranje se može čuvati nekoliko sati u hladnjaku na temperaturi od -6° do +6°; pranje namijenjeno proučavanju nestaničnih komponenti može se dugo zamrzavati.

Za citološki pregled 10 ml bronhoalveolarni lavaž se odmah po primitku filtrira kroz 4 sloja sterilne gaze ili fine mrežice u epruvetu za centrifugu. Zatim se 10 kapi filtrirane tekućine pomiješa na satnom staklu s 1 kapi Samsonove tekućine i napuni komoru za brojanje. Brojeći stanične elemente u cijeloj komori, postavite njihov broj na 1 ml ispiranje. Stanični sastav bronhoalveolarnog ispiranja (endopulmonalni citogram) određen je mikroskopski pregled sediment tekućine za ispiranje dobiven centrifugiranjem, na temelju brojanja od najmanje 500 stanica korištenjem imerzijskog objektiva. Ovo uzima u obzir alveolarne makrofage, limfocite, neutrofile, eozinofile,. Stanice bronhijalnog epitela se ne broje zbog malog broja u ispiranjima.

Bronhoalveolarni lavaž u zdravih nepušača sadrži u prosjeku 85-98% alveolarnih makrofaga, 7-12% limfocita, 1-2% neutrofila i manje od 1% eozinofila i bazofila; ukupni broj stanica varira od 0,2․10 6 do 15,6․10 6 u 1 ml. U pušača je značajno povećan ukupan broj stanica i postotak leukocita, alveolarni makrofagi su u aktiviranom (fagocitnom) stanju,

Promjene u endopulmonalnom citogramu imaju određeni smjer ovisno o etiologiji i aktivnosti plućne bolesti. Utvrđeno je da je umjereno povećanje broja limfocita (do 20%) uz istodobno smanjenje broja alveolarnih makrofaga moguće kod primarne tuberkuloze dišnih organa (bronhoadenitis, milijarna plućna tuberkuloza) i akutni oblici sekundarna plućna tuberkuloza (infiltrativna tuberkuloza). Kod bolesnika kronični oblici plućne tuberkuloze u bronhoalveolarnom lavažu dolazi do povećanja broja neutrofila (do 20-40%) uz smanjen ili normalan sadržaj limfocita.

Kod sarkoidoze pluća u bronhoalveolarnom ispiranju uočeno je značajno povećanje razine limfocita (do 60-80% u aktivnoj fazi bolesti) uz smanjenje sadržaja alveolarnih makrofaga. U kroničnom tijeku i relapsu bolesti povećava se i broj neutrofila. U slučaju obrnutog razvoja procesa na pozadini terapije glukokortikosteroidima, sadržaj limfocita se smanjuje, dok se broj alveolarnih makrofaga obnavlja. Povećanje broja neutrofila je prognostički nepovoljno i ukazuje na razvoj pneumofibroze.

U citološkoj studiji bronhoalveolarnog ispiranja u bolesnika s egzogenim alergijskim alveolitisom utvrđuje se povećanje broja limfocita do 60% ili više. Najizraženiji se opaža u akutnoj fazi bolesti i nakon inhalacijskog provokativnog testa s alergenom.

Za idiopatski fibrozni alveolitis karakteristično je povećanje sadržaja neutrofila u bronhoalveolarnom ispiranju (do 39-44%). Kod bronhijalne astme broj eozinofila u bronhoalveolarnom ispiraku doseže 30-80%, što je objektivno dijagnostički kriterij alergijska upala bronhijalne sluznice.

U bolesnika s kroničnim bronhitisom povećan je broj neutrofila u bronhoalveolarnom lavažu, sadržaj alveolarnih makrofaga je smanjen, razina limfocita i eozinofila ostaje unutar normalnog raspona. U fazi egzacerbacije kroničnog opstruktivnog i neobstruktivnog bronhitisa u bronhoalveolarnom lavažu sadržaj neutrofila se povećava na prosječno 42%, au fazi početne remisije broj neutrofila se smanjuje. U bolesnika s pogoršanjem gnojnog bronhitisa, broj neutrofila naglo raste (do 76%). smanjuje se razina alveolarnih makrofaga (do 16,8%).

S malignim tumorima pluća. hemosideroza, histiocitoza X. azbestoza, ksantomatoza u bronhoalveolarnim ispircima tijekom citološke pretrage mogu se otkriti specifični za ove bolesti: kompleksi tumorskih stanica ( riža. 2 ), hemosiderofagi ( riža. 3 ), histiociti, ksantomske stanice.

Bakteriološki pregled bronhoalveolarnih ispiranja u bolesnika s plućnom tuberkulozom omogućuje dobivanje Mycobacterium tuberculosis u 18-20% slučajeva. Mikroskopski se u bronhoalveolarnim ispiranjima s Papanicolaou bojanjem i impregnacijom srebrom može utvrditi Pneumocystis carinii, uzročnik pneumonije u bolesnika s imunodeficijencijskim stanjima.

Na biokemijska istraživanja bronhoalveolarni ispirci u bolesnika s plućnom tuberkulozom, sarkoidozom pluća, egzogenim alergijskim alveolitisom, kroničnim bronhitisom, prosječna aktivnost proteaza (elastaza, kolagenaza) prelazi normu. inhibitora proteolize (α 1 -antitripsina) naglo je smanjen ili ga nema. Visoka elastaza prati razvoj distrofičnih procesa u plućima (emfizem i pneumoskleroza). Studija elastaze otkriva početne faze razvoj tih procesa i provoditi ih na vrijeme. U bolesnika s plućnom tuberkulozom i kroničnim bronhitisom, bronhoalveolarni ispiranja pokazuju smanjenje sadržaja fosfolipida, koji čine osnovu površinski aktivnog sloja alveolarne ovojnice. U malim oblicima plućne tuberkuloze to može poslužiti kao dodatni test za aktivnost određenog procesa.

Proučavanje drugih komponenti bronhoalveolarnih ispiranja, uključujući T- i B-limfocite, imunološke komplekse, provodi se uglavnom u znanstvene svrhe.

Bibliografija: Avtsyn A.P. i dr. Endopulmonalni citogram, Sove. med., broj 7, str. 8, 1982, bibliogr., Gerasin V.A. i dr. Dijagnostička bronhoalveolarna lavaža. ter. ., broj 5, str. 102, 1981, bibliogr.; Dijagnostička bronhoalveolarna lavaža, ed. I G. Khomenko. M., 1988, bibliografija.

bojenje prema Wright - Romanovsky; ×1200">

Riža. 3. Mikropreparat bronhoalveolarnog ispiranja u plućnoj hemosiderozi: strelice označavaju hemosiderofage; bojenje prema Wright - Romanovsky; ×1200.

Riža. 1. Shema bronhoalveolarne lavaže pomoću krutog bronhoskopa: 1 - tijelo bronhoskopa; 2 - cijev bronhoskopa umetnuta u desni glavni bronh; 3 - vodič; 4 - radiokontaktni kateter instaliran na ušću prednjeg segmentnog bronha; 5 - cijev za prikupljanje bronhoalveolarnog ispiranja, spojena cijevi (6) s električnim usisavanjem za vakuumsku aspiraciju; strelice pokazuju smjer protoka tekućine za pranje.

1. Mala medicinska enciklopedija. - M.: Medicinska enciklopedija. 1991-96 2. Prvo zdravstvene zaštite. - M.: Velika ruska enciklopedija. 1994 3. Enciklopedijski rječnik medicinskih pojmova. - M.: Sovjetska enciklopedija. - 1982-1984.

• Labrocit

Pogledajte što je "bronhoalveolarna lavaža" u drugim rječnicima:

LAVAŽA BRONHOALVEOLARNA- (bronchoalveolar lavage, BAL) metoda za dobivanje staničnog materijala iz pluća; Koristi se uglavnom u pregledu pluća i praćenju plućnih bolesti, kao iu proučavanju plućnih infiltrata u bolesnika sa smanjenom funkcijom ... ... Objašnjavajući rječnik medicine

Metoda dobivanja staničnog materijala iz pluća; koristi se uglavnom u pregledu pluća i praćenju plućnih bolesti, kao iu proučavanju plućnih infiltrata u bolesnika sa smanjenom funkcijom imunološki sustav. Studij…… medicinski pojmovi

Bronhoalvolarna lavaža (BAL, također terapijska bronhoskopija) je dijagnostički i terapijski medicinski postupak koji uključuje uvođenje neutralne otopine u bronhije i pluća, njeno naknadno uklanjanje, proučavanje stanja respiratornog ... ... Wikipedia

I Pluća (pulmones) parni organ smješten u prsnoj šupljini, koji vrši izmjenu plinova između udahnutog zraka i krvi. Glavna funkcija L. je respiratorna (vidi Disanje). Potrebne komponente za njegovu provedbu su ventilacija ... ... Medicinska enciklopedija

I Iskašljaj (sputum) je patološki promijenjen traheobronhalni sekret koji se izlučuje tijekom iskašljavanja s primjesom sline i sekreta sluznice nosa i paranazalnih sinusa. Normalno, traheobronhijalni sekret sastoji se od sluzi, ... ... Medicinska enciklopedija

I (pneumoskleroza; grčki pneumon pluća + zbijanje skleroze; sinonimi: pneumofibroza, skleroza pluća) proliferacija vezivnog tkiva u plućima zbog upalnog ili distrofičnog procesa, što dovodi do kršenja elastičnosti i ... ... Medicinska enciklopedija

I (tuberkuloza; lat. tuberculum tubercle + ōsis) je bolest koju uzrokuje Mycobacterium tuberculosis. Najčešće su zahvaćeni dišni organi (vidi Tuberkuloza dišnih organa (Tuberkuloza dišnih organa)), među ostalim organima i sustavima uglavnom ... Medicinska enciklopedija